血细胞自动化分析后要强调血涂片镜检复核
血细胞分析前质量控制
血细胞分析前质量控制山西焦化集团公司职工医院（041606）赵新莹 医学检验分析前阶段又称检验前过程。此阶段从临床医生申请检验开始，包括检验科人员素质水平及血细胞分析仪工作状态，检验项目的正确选择，生理学因素影响，患者在采集样本前的准备，标本的正确采集、保存和运送至检验科及在检验科内部的传递，检验师预处理等过程[1]。近几年来，临床实验室普遍开展了室内质量控制和室间质量评价活动，这些质量控制多注意到了分析中和分析后的影响因素，据统计，分析前误差约占46%~63%，因此分析前的质量保证，对减少实验误差，提高检验质量尤为重要。 1检验科工作人员素质及仪器设备状态 检验科工作人员必须经过良好的技术培训，了解仪器工作原理、操作规程、使用注意事项，血细胞直方图的意义，异常警报的含义，引起实验误差的因素及仪器维护，注意患者生理或病理因素对实验结果的影响或服用药物对结果的干扰作用，能随时监控仪器的工作情况。另外检验人员的医德素质和技能素质也很重要，必须要有高尚的医德、熟练的技能和高度的责任心。 血细胞分析仪是精密电子仪器，由于测量电压低，易受各种干扰，应该远离电磁源和热源，防潮，防止阳光直射，具有良好通风条件。工作环境清洁。室内温度要求在15~25℃，相对湿度要求<80%。另外还应该做好分析仪日常维护和保养工作，确保血细胞分析仪处于良好的工作状态[2]。 检验人员必须做好严格的室内质量控制，并积极参与室间质量控制的活动，不断提高检验质量的准确性和可靠性。2分析前项目的正确选择 临床医师合理选择实验项目是检验结果发挥临床价值的前提。医师必须对患者说明血细胞检验的目的、采血时间及注意事项，向患者讲清楚采血前服用的药物可能会影响到检验结果。临床科室应与检验科进行信息交流，掌握每个检验项目的实验诊断原理和临床意义，了解诊断实验的敏感度、特异性，掌握如何将检测项目进行优化组合，使患者付出最低的费用，达到最佳的诊治目的。在临床医生还不善于应用这些项目前，检验人员应给予介绍、推荐及必要的提醒。检验项目的选择应遵循以下原则：①安全性；②有效性；③及时性；④经济性。 3标本采集前患者的准备 工作人员应该作好患者的解释工作，以消除患者的顾虑和恐惧心理，指导患者如何进行合作，注意患者的活动情况和精神状态、药物、年龄、性别、种族、标本采集时间及是否吸烟对检测结果的影响。原则上患者应在平静休息正坐位状态下采集标本。采血前，尽量使患者保持平静，避免跑步、骑自行车、爬楼梯等剧烈运动，要求患者休息15min后进行采血。实验表明：立位时水和电解质从血管逸出，血液浓缩，钙、铁、激素血浆蛋白、酶类、血细胞压积、某些药物等浓度增加5%～8%。从立位到坐位，水的再平衡分布需要15min。从坐位到卧位，水和电解质回到血管，血液稀释，血液成分可降低10%～15%。冬季保持血液循环通畅。住院患者应在早晨卧床时采血，化学治疗患者要求在化学治疗前采集血标本，以保证检测结果的准确性[3]。非急诊患者最好固定在某一时间检查，这对于动态观察指标的病例非常重要。 4正确的标本采集 血液标本的正确采集是获得准确、可靠检验结果的关键，也是分析前质量控制的重要环节，很多因素都会影响到血液标本的检测[4]。标本采集必须以保证质量为前提，应避免干扰因素。 采用血细胞分析仪测定通常使用静脉采血法，位于体表的浅静脉几乎均可作为采血部位，通常采用肘部静脉，肘部静脉不明显时，可改用手背静脉或内踝静脉，必要时也可从股静脉采血。 乙二胺四乙酸（EDTA）-K2适用于全血细胞分析及血细胞体积测定，室温下6h，红细胞体积不改变。根据国际血液学标准化委员会（ICSH）1993年文件建议，血细胞计数用EDTA-K2作抗凝剂，用量为EDTA-K21.5~2.2mg/mL血液。 采血容器多采用真空采血系统，为含EDTA-K2抗凝剂的一次性真空采血管，抗凝血2mL。这种封闭式采血减少了溶血现象，能有效保护血液的有形成分，保证待检样本原始性状的完整性，使检验结果更可靠，同时，能有效避免医护人员和患者间交叉感染。 5标本采集注意事项 规范操作，减少误差；防止溶血、减少污染；在无静脉输液时进行静脉采血，确实不能停输时一定要注意远端原则，即在对侧手静脉采血，如两只手都在输液，可以采脚端。采血动作迅速，止血带压迫时间应该<1min，若止血带压迫时间>2min，血液淤滞，局部出现缺氧，大静脉血流受阻而使毛细血管内压上升，可有血管血液与组织液交流，检查结果出现不应该有的增高或减低[5]。建议在针头穿刺进入血管后即可放松止血带。 选用正确的采血管，严格控制抗凝血量为2mL，以采血管的标记刻度为准。采血量不足，EDTA-K2浓度增高，中性粒细胞会肿胀分叶消失，血小板肿胀崩解产生正常血小板大小的碎片，导致错误的检验结果。 采血完毕，立即将采血管轻轻来回颠倒6~8次进行初始混匀，目的是抑制血小板的聚集，防止血液凝固。将真空管上的数字标签撕下贴在检验申请单上，以核对患者标本。 6标本的正确处理 一般情况下，血液标本采集后应立即送检，并尽快进行 万方数据
骨髓细胞学检查图文分析报告单
骨髓细胞学检查图文报告单 姓名XXX年龄XX性别X科别血液科采取日期XXX-XX-XX病案号591965 采取部位髂骨、胸骨涂片号8665临床诊断—-------------------------------————— 骨髓细胞学检查图文报告单 姓名XXX年龄XX性别X科别血液科采取日期 XXX-XX-XX病案号591965 采取部位髂骨、胸骨涂片号8665临床诊断—— —-------------------——— 诊断意见： 检验医师签名： 报告日期： ；
细胞名称血片髓片 % 平均值±标准% 原始血细胞0.08 0.01 粒细胞系统原始粒细胞0.64 0.33 早幼粒细胞 1.57 0.6 中性粒细胞 中幼 1 6.49 2.04 6．5 晚幼 5 7.90 1.97 3．5 杆状核10 23.72 3.5 13 分叶核20 9.44 1.92 9 嗜酸粒细胞 中幼0.38 0.23 晚幼0.49 0.32 杆状核 1.25 0.61 分叶核0.86 0.61 嗜碱粒细胞 中幼0.02 0.05 晚幼0.06 0.07 杆状核0.10 0.09 分叶核0.03 0.05 红细胞系统原始红细胞0.57 0.07 早幼红细胞0.92 0.41 中幼红细胞 3 7.41 1.91 5 晚幼红细胞 5 10.75 2.36 11 早巨红细胞 中巨红细胞 晚巨红细胞 淋巴细胞系统原始淋巴细胞0.05 0.09 幼稚淋巴细胞0.47 0.84 淋巴细胞46 22.78 7.04 15 单核细胞系统原始单核细胞0.01 0.04 幼稚单核细胞0.14 0.19 单核细胞 2 3 0.88 1 浆细胞系统原始浆细胞0.004 0.02 幼稚浆细胞0.104 0.16 1 浆细胞8 0.71 0.42 35 其他细胞网状细胞0.16 0.21 内皮细胞0.05 0.09 巨核细胞0.03 0.06 吞噬细胞0.05 0.09 组织嗜碱细胞0.03 0.09 组织嗜酸细胞0.004 0.03 脂肪细胞0.003 0.02 分类不明细胞0.005 0.04 分裂细胞个个退化细胞个个粒细胞系统：有核红细胞 2.76 0.87 2 血片共数白细胞100个 骨髓片共数有核细胞200个 骨髓有核细胞总数/立方毫米特征： （一）骨髓片 1、取材满意、涂片、染色正常。 2、骨髓有核细胞增生活跃，粒细胞系占全部有核细胞比例为32%，红细胞系为16%，其粒红比值为2:1。 3、粒系增生受抑制，以中性粒细胞杆状核为主。 4、红系增生受抑制，成熟红细胞形（二）血片 1、取材，涂片，染色正常，全片白细胞总数大致正常。 2、成熟粒细胞减少，可见幼稚中性粒细胞。 3、成熟红细胞形态形态大致正常， 诊断意见：多发性骨髓瘤（MM）骨髓象 检验医师签名：
血涂片及骨髓涂片的制片与读片
血涂片及骨髓涂片的制作与读片 潘志强 2006-3-30 实验准备 一．器材： 载玻片：每只动物一块 盖玻片：每只动物一块 滴管：4个 橡皮吸头：4个 中号镊子：4把 大剪刀：4把 眼科镊：4把 玻璃棒：4根 烧杯：1000 ml，2个 量筒：100ml、500 ml、1000 ml各一 蜡笔 棕色小口瓶 碾钵 载玻片处理：一般将载玻片先用洗衣粉水溶液煮沸20分钟，用流水冲洗，再经清洁液浸泡过夜，用流水反复冲洗，最后入95%酒精浸泡约1小时。取出，以洁净布巾夹持玻片边缘擦干备用。 二．试剂： 瑞氏染液240ml 瑞氏染料粉剂0.1g 纯甲醇（AR）60ml 将粉剂放入洁净干燥碾钵内，先加少量甲醇研磨使染料溶解，然后将已溶解的染料倒入洁净的棕色玻璃瓶内，剩下未溶解的再加入少量甲醇研磨，如此反复，直至染料完全溶解为止。新配制的染液需密封保存，室温放置1周后才能使用。染料存放越久，染色效果越好。 磷酸盐缓冲液 1%KH2PO4 30ml 1%Na2HPO4 20ml ，定容至1000ml。 甲醇 鸡蛋清：蒸馏水与鸡蛋清按1/1的比例稀释。 中性树胶：如果中性树胶过于粘稠，可将中性树胶与二甲苯按7/3的比例稀释。 二甲苯
实验步骤 一．涂片 （一）血液涂片的制作 （1）需载玻片2张，分别称为玻片1和玻片2（推片）。 （2）用玻片1一端接约3mm直径的血滴，将此玻片1保持水平。 （3）取另一边缘平整的载玻片2（推片），将其前端放在血滴前，与片1保持30°角并稍向后移与血滴接触，即见血液沿片2（推片）下缘散开，使血液展开并充满整个推片的宽度。 （4）立刻将推片与载玻片呈30°角，边轻压推片边将血液按下图的箭头方向推动涂抹，至血液铺完血膜为止。 （5）挥动片1使血膜吹干，用蜡笔将血膜边缘圈画备染色。 （6）每只动物涂片一张。 （7）一张良好的血片，要求厚薄适宜，头、体、尾分明。 （8）置30min～1hr后较利于观察红细胞的形态。 注意事项： ●如标本本身太短，可观察的部分会受局限，故以在离开载玻片另一端2cm地方涂抹为宜。 ●载玻片、推片的角度越小、血液越薄；涂抹速度越慢、也越薄。在涂抹贫血病人的血液时，将推片稍竖起（不 是30°而是35°～40°左右），以较快的速度推比较好，而对红细胞增高的病人则相反。 ●如用力过猛白细胞容易破损。 （二）骨髓涂片的制作 用手术剪刀剪掉大腿部的肌肉，充分暴露股骨，再用大剪刀从上端剪断第2股骨，用中号 镊子夹股骨以挤出骨髓，如果骨髓不易取出，可用直头眼科镊插入骨髓腔挑出骨髓，置骨髓于 一载玻片上，由于骨髓液的纤维蛋白原含量较高，易于凝固，可先在骨髓液内加5~10倍的稀 释后鸡蛋清，充分混匀，取1滴至另一载玻片上，涂片。涂片方法同血液涂片，但推片要快并 迅速使之干燥。每只动物涂片一张。 二．染色 （一）血液涂片的染色 （1）将待染涂片平放于染色架上。 （2）用滴管将染液滴于涂片上，覆盖整张涂片，放置1～3分钟。 （3）加入等量的磷酸缓冲液或蒸馏水，与染液混匀，可以用滴管从一端吸入，另一端放出，混匀为止，或用嘴来回轻轻吹之，使之混匀，室温下染色5～10分钟（白细胞数多或骨 髓标本时间应长一些，如20～30min）。 （4）染色结束时，先用蒸馏水或缓冲液洗将涂片上的染液直接冲掉。 （5）再将片子用自来水温和冲洗，至血液膜呈淡红色。 （6）甩干或晾干玻片。 （7）封片。 （二）骨髓涂片的染色 同血液涂片。
血涂片与分类流程
血涂片与分类流程Revised on November 25, 2020
血涂片和分类计数的质量控制流程1、目的： 规范血涂片评价和分类计数的质量控制管理流程，确保检验质量。 2、适用范围： 检验科门诊化验室、细胞室 3、职责： 检验科门诊化验室、细菌室检验人员均须熟知并遵守本程序。 4、质量控制流程： 血涂片的制备 玻片：保持中性、洁净、无油腻 制备血涂片：血涂片外观应头、体、尾分明，分布均匀，边缘整齐，两侧留有空隙。血膜外观应厚薄适宜。血膜厚度、长度和血滴的大小、推片与玻片之间的角度、推片时的速度及血细胞比容有关。一般血滴大、角度大、推片速度快则血膜厚；反之，则血膜薄。血细胞比容低于正常时，血液粘度高，宜保持较小的角度，可得满意结果；相反，血细胞比容低于正常时，血液较稀，则需用较大的角度和较快的推片速度，才可得满意的血涂片。良好的血涂片的“标准”为血膜由厚到薄逐渐过渡。 染色：血涂片应在1h内完成染色，或在1h内用无水甲醇固定后染色。 血涂片分类计数质量控制流程
血涂片白细胞分类计数方法：是有血涂片经瑞氏染色后，在油镜下根据白细胞形态特点逐个分类计数（一般计数100-200个白细胞），并观察其形态变化，然后求各种白细胞的比值。 血涂片分类计数注意事项：血涂片进行白细胞分类科稳定6-8h，但2h后粒细胞形态即有变化，故需要镜检分类应及早分血片：正确判断是否需要人工显微镜复查，凡出现以下情况之一者，都应当进行显微镜复查。（1）血细胞计数结果明显异常（WBC<×109/L，WBC>×109/L，Hb<50g/L，PLT<50×109/L）。（2）血细胞直方图异常：红细胞、白细胞、血小板任何一项直方图的峰值出现偏移。（3）出现警示信号。这需要我们操作人员在日常生活中严格执行，注意分析检验结果各参数之间的关系，才能对异常结果做出正确判断。加强与医护人员的联系：对在检测中出现的异常和阳性结果，要及时主动和临床医生取得联系，与临床资料进行相关性分析，对有疑问的做到合理解释。 1 、目的：
探讨血液细胞检验在临床医学检验中的质量控制效果
探讨血液细胞检验在临床医学检验中的质量控制效果 发表时间：2016-08-25T11:55:21.553Z 来源：《健康世界》2016年第13期作者：高秋生 [导读] 在进行临床医学血液细胞检验的过程中，存在诸多的因素会对最终的检验质量造成严重的影响。 黑龙江省鹤岗市萝北县凤翔镇卫生院 154200 摘要：目的：研究分析在进行临床医学检验的过程中，对最终血液细胞的检验质量造成影响的相关因素，最终有效将临床血液细胞的检验质量进行提高。方法：此次研究的对象是选择2013年5月～ 2014年5月血液细胞检验标本总计300份。将其检验标本进行回顾性分析。并根据有关血液标本的放置时间、标本的放置温度以及具体的采血部位来进行相关性分析。对比最终检查结果存在的差异。结果：血液标本放置的时间过长，放置的温度没有达到要求以及具体的采血部位都会对最终的血液细胞检验工作带来一定的影响，对比各个组别之间均存在显著差异（P<0.05）。结论：在进行临床医学血液细胞检验的过程中，存在诸多的因素会对最终的检验质量造成严重的影响，标本放置的温度、采血的部位以及标本的放置时间都会对结果产生影响，因此做好每一个环节的控制工作显得至关重要。 关键词：临床医学；血液细胞检验；质量控制 [Abstract] Objective：To study and analyze the related factors in the process of the clinical medical examination，inspection and quality of the final blood cells impact，and ultimately will be effective to improve the inspection quality of clinical blood cells. Methods：the study was selected from May 2014 to May 2013，300 blood cell test specimens. A retrospective analysis was performed on the samples. According to the placement time of blood samples，the placement temperature of the specimen and the specific blood sampling site，the correlation analysis was carried out. Compare the difference between the final results. Results：blood specimens were placed for too long a period of time，storage temperature did not reach and the specific requirements of the blood collecting location will bring certain influence on the final blood cell inspection work，compared to the various groups there were significant difference（P < 0.05）. Conclusion：in clinical blood cell examination process，there are many factors will cause serious impact on the quality of the final inspection，parts of the specimens were placed in the temperature，blood and specimen storage time will have an impact on the results，so do every link control is crucial. [Key words] Clinical Medicine；blood cell test；quality control 在进行临床医学检验的过程中所实施的血液细胞检验又被称为血常规检验，其主要包括人体血液中RBC（红细胞）、WBC（白细胞）、HGB（血红蛋白）与PLT（血小板）等一系列数据的检验。此项检验在临床检验过程中具有重要的意义，可以有效协助治疗医师完成患者所患病情的诊断工作并对治疗后获得的效果进行评估。但是为了能够有效获得高质量的检验结果，分析对结果会造成影响的相关因素显得至关重要。本文主要选择2013年5月～ 2014年5月血液细胞检验标本总计300份进行具体的研究，研究确保检验质量的有关方法，现将具体的临床研究报告如下。 l资料与方法 1.1 一般资料。本文主要选择2013年5月～ 2014年5月血液细胞检验标本总计300份（300例患者）作为此次的研究对象。其中包括男150例，女150例；患者年龄为15～70岁，平均年龄为39±4.3岁。 1.2方法 1.2.1抗凝剂的有效使用。针对所有患者首先实施静脉采血的方法，最终有效获得实验的血液样本。针对所有患者的血液样本，确定比例对其进行稀释，分别按照l：10000以及1：5000两种比例进行稀释。之后将选择同一稀释比倒的血液混合在一起，平均分成300份，完成检测。 1.2.2有效对血液进行储存。针对所有患者起初进行静脉采血，最终有效取得实验的血液样本。完成混合后平均分成600份，将300份血液样本放在室温下，在不同的时间段进行检测，具体为在30分钟完成100份的检测，在3小时内完成100份的检测，在6小时内完成100份的检测。之后将另外300份血液样本放在温度为22摄氏度的低温环境下，同样在不同时间段进行检测，具体为在30分钟内完成150份的检测，在3小时内完成150份的检测。 1.3统计学方法。在进行本次实验的研究过程中，主要利用统计学软件SPSS15.0对相关数据进行具体分析并统计，利用均数±标准差表示计量资料。利用t检验表示计数资料，在进行率比较的过程中利用卡方检验，α=0. 05。以P>O. 05为不存在差异，无统计学意义。 2结果 2.1抗凝剂的比例对最终检验结果造成的影响：在进行具体检验的过程中，需要完全按照规定的比例对实验的样本有效稀释，如若不然会对最终的检验结果造成非常严重的影响。对比采用比例有所不同抗凝剂的患者最终的检验结果发现，在患者体内的血液样本中，RBC、WBC、HGB以及PLT等相关指标的含量存在着显著的差异（P<0.05）。 2.2放置时间以及放置温度对最终检验结果造成的影响：对比放置时间有所不同的血液样本，完成检验后最终的检验结果有所不同，放置样本的时间越长，最终获得检验结果具有的准确性越低．特别是对RDW的检验结果有着非常大的影响。分析造成此种情况出现的原因应该与血液细胞自身的形态出现了变化存在一定的关系。在此次的研究过程中，样本放置的时间不同．最终获得的检验结果存在着明显的差异（P<0.05）。而对于样本放置的温度也存在着一定的影响，特别是在4摄氏度～8摄氏度对检验的参数会造成非常严重的影响，同室温在18摄氏度与25摄氏度进行比较，仍然存在显著差异。进而得出样本放置的温度不同，最终获得的检验结果也存在明显差异（P<0.05）。 3讨论 3.1准备进行检验前的质量控制方法：在准备对血液样本进行准确测定之前，应该做到以下几方面：①有效将检验人员的综合素质进行提高。②对检验报告单中的相关信息进行科学管理。③对血液采集质量进行有效控制；④对血液分析设备质量进行有效控制。 3.2实施检验过程中的质量控制方法：在对血液样本进行具体测定的过程中应该做到以下几方面：①观察准备使用的试剂与使用的设备是否相配套。②观察设备在工作的过程中有无出现异常。③观察在进行具体检测的过程中，设定的温度是否满足要求。 3.3完成检验后质量控制的方法：在完成血液细胞检验后，要求工作人员不能够只通过最终得出相关指标的数值就对患者临床所患疾病
全血细胞分析报告单
全血细胞分析报告单 姓名：性别：年龄：日期：年月日时间： 项目结果标识参考范围项目结果标识参考范围WBC白细胞数目*10^9/L 4.0-10.0 RBC红细胞数目*10^12/L 3.5-5.5 LYM#淋巴细胞数目*10^9/L 1.0-3.3 HGB血红蛋白9/L 110-160 MID#中间细胞数目*10^9/L 0.2-0.7 HCT红细胞压积L /L 0.350 GRA#中性粒细胞数目*10^9/L 1.8-6.4 MCV平均红细胞体积f L 80-100 LYM%淋巴细胞百分比%20-45 MCH平均血红蛋白含量pg 28-33 MID%中间细胞百分比% 2.0-9.0 MCHC平均血红蛋白浓度g/L 320-360 GRA%中性粒细胞百分比%45-75 RDW-CV红细胞宽度变异系数%11.5-14.4 PDW血小板分布宽度%15.5-18.2 RDW-SD红细胞宽度标准差f L 37-55 PCT血小板压积L /L 0.100-0.282 PL T血小板数目*10^9/L 100-300 P-LCR大血小板百分比%13.0-43.0 MPV平均血小板体积f L 7-12 全血细胞分析报告单 姓名：性别：年龄：日期：年月日时间： 项目结果标识参考范围项目结果标识参考范围WBC白细胞数目*10^9/L 4.0-10.0 RBC红细胞数目*10^12/L 3.5-5.5 LYM#淋巴细胞数目*10^9/L 1.0-3.3 HGB血红蛋白9/L 110-160 MID#中间细胞数目*10^9/L 0.2-0.7 HCT红细胞压积L /L 0.350 GRA#中性粒细胞数目*10^9/L 1.8-6.4 MCV平均红细胞体积f L 80-100 LYM%淋巴细胞百分比%20-45 MCH平均血红蛋白含量pg 28-33 MID%中间细胞百分比% 2.0-9.0 MCHC平均血红蛋白浓度g/L 320-360 GRA%中性粒细胞百分比%45-75 RDW-CV红细胞宽度变异系数%11.5-14.4 PDW血小板分布宽度%15.5-18.2 RDW-SD红细胞宽度标准差f L 37-55 PCT血小板压积L /L 0.100-0.282 PL T血小板数目*10^9/L 100-300 P-LCR大血小板百分比%13.0-43.0 MPV平均血小板体积f L 7-12 全血细胞分析报告单 姓名：性别：年龄：日期：年月日时间： 项目结果标识参考范围项目结果标识参考范围WBC白细胞数目*10^9/L 4.0-10.0 RBC红细胞数目*10^12/L 3.5-5.5 LYM#淋巴细胞数目*10^9/L 1.0-3.3 HGB血红蛋白9/L 110-160 MID#中间细胞数目*10^9/L 0.2-0.7 HCT红细胞压积L /L 0.350 GRA#中性粒细胞数目*10^9/L 1.8-6.4 MCV平均红细胞体积f L 80-100 LYM%淋巴细胞百分比%20-45 MCH平均血红蛋白含量pg 28-33 MID%中间细胞百分比% 2.0-9.0 MCHC平均血红蛋白浓度g/L 320-360 GRA%中性粒细胞百分比%45-75 RDW-CV红细胞宽度变异系数%11.5-14.4 PDW血小板分布宽度%15.5-18.2 RDW-SD红细胞宽度标准差f L 37-55 PCT血小板压积L /L 0.100-0.282 PL T血小板数目*10^9/L 100-300 P-LCR大血小板百分比%13.0-43.0 MPV平均血小板体积f L 7-12
用显微镜观察植物细胞结构实践活动
用显微镜观察植物细胞结构实践活动 一、活动目标 知识目标：1、认识显微镜的结构，并熟悉显微镜的使用方法，会制作洋葱鳞片叶内表皮细胞的临时装片。 2、通过显微镜观察洋葱鳞片叶内表皮细胞，并按观察绘制出它们的形态、结构示意图，并学会辨别植物细胞。 技能目标：1 、学会运用观察的基本方法。 2、学会运用生物学的研究工具。 3、尝试相互交流探究观察结果。 4、学会编写实验观察记录。 情感态度价值观：1、亲身体验微观世界，养成实事求是的科学探究态度。 2、养成人与人分工合作、与人交流的习惯，形成强烈的集体感。 二、活动内容 通过对理论知识的学习，进入生物实验室，实际操作显微镜，并用显微镜观察洋葱鳞片叶内表皮细胞的结构，并进行总结和交流。 （一）活动准备 （1）调查问卷、动态的评价标准、评价表、方案表。 （2）分组。老师根据活动内容和学生具体情况，列出分组原则和注意事项。 （3）提前一周实验理论辅导，小组长培训 （二）、具体活动实施方案 活动一：认识显微镜的结构及其使用方法 1、提问： （1）同学们知道我们研究生物学要用到哪些工具吗？我们怎样去观察一些我们肉眼看不到的微小结构呢？ （2）同学们认识显微镜吗？你能说出显微镜的结构和使用方法吗？ 2、认识显微镜结构及使用方法活动 （1）结合实物讲解显微镜结构： 普通光学显微镜的构造主要分为三部分：机械部分、照明部分和光学部分。 ◆机械部分 镜座：是显微镜的底座，用以支持整个镜体。 镜柱：是镜座上面直立的部分，用以连接镜座和镜臂。
镜臂：一端连于镜柱，一端连于镜筒，是取放显微镜时手握部位。 镜筒：连在镜臂的前上方，镜筒上端装有目镜，下端装有物镜转换器。 物镜转换器(旋转器)：接于棱镜壳的下方，可自由转动，盘上有3－4个圆孔，是安装物镜部位，转动转换器，可以调换不同倍数的物镜，当听到碰叩声时，方可进行观察，此时物镜光轴恰好对准通光孔中心，光路接通。转换物镜后，不允许使用粗调节器，只能用细调节器，使像清晰。 镜台(载物台)：在镜筒下方，形状有方、圆两种，用以放置玻片标本，中央有一通光孔，我们所用的显微镜其镜台上装有玻片标本推进器(推片器)，推进器左侧有弹簧夹，用以夹持玻片标本，镜台下有推进器调节轮，可使玻片标本作左右、前后方向的移动。调节器：是装在镜柱上的大小两种螺旋，调节时使镜台作上下方向的移动。 ①粗调节器(粗螺旋)：大螺旋称粗调节器，移动时可使镜台作快速和较大幅度的升降，所以能迅速调节物镜和标本之间的距离使物象呈现于视野中，通常在使用低倍镜时，先用粗调节器迅速找到物象。 ②细调节器(细准焦螺旋)：小螺旋称细调节器，移动时可使镜台缓慢地升降，多在运用高倍镜时使用，从而得到更清晰的物象，并借以观察标本的不同层次和不同深度的结构。 ◆照明部分 装在镜台下方，包括反光镜,集光器。 反光镜：装在镜座上面，可向任意方向转动，它有平、凹两面，其作用是将光源光线反射到聚光器上，再经通光孔照明标本，凹面镜聚光作用强，适于光线较弱的时候使用，平面镜聚光作用弱，适于光线较强时使用。 集光器(聚光器)位于镜台下方的集光器架上，由聚光镜和光圈组成，其作用是把光线集中到所要观察的标本上。 ①聚光镜：由一片或数片透镜组成，起汇聚光线的作用，加强对标本的照明，并使光线射入物镜内，镜柱旁有一调节螺旋，转动它可升降聚光器，以调节视野中光亮度的强弱。 ②光圈(虹彩光圈)：在聚光镜下方，由十几张金属薄片组成，其外侧伸出一柄，推动它可调节其开孔的大小，以调节光量。 ◆光学部分 目镜：装在镜筒的上端，通常备有2－3个，上面刻有5×、10×或15×符号以表示其放大倍数，一般装的是10×的目镜。 物镜：装在镜筒下端的旋转器上，一般有3－4个物镜，其中最短的刻有“10×”符号的为低倍镜，较长的刻有“40×”符号的为高倍镜，最长的刻有“100×”符号的为油镜，此外，在高倍镜和油镜上还常加有一圈不同颜色的线，以示区别。 显微镜的放大倍数是物镜的放大倍数与目镜的放大倍数的乘积，如物镜为10×，目镜为10×，其放大倍数就为10×10=100。 （2）显微镜的使用方法及步骤 ★取镜和安放 ①右手握住镜臂，左手托住镜座。
血细胞分析检验报告单完整版
血细胞分析检验报告单 HEN system office room 【HEN16H-HENS2AHENS8Q8-HENH1688】
血细胞分析检验报告单 姓名：性别：男年龄： 79 门诊号：住院号： 送检科室：荣康科床号： 02 标本类型：全血标本状态：样本编号： 临床诊断： 项目名称结果单位参考范围项目名称结果单位参考范围 白细胞↑109/L4-10血红蛋白浓度113g/L110-150 淋巴细胞109/L红细胞压积% 中性粒细胞109/L平均红细胞体积fL 单核细胞109/L平均血红蛋白含量pg 嗜酸性粒细胞109l/L平均血红蛋白浓度320g/L318-347 嗜碱性粒细胞109l/L红细胞分布宽度SD fL 淋巴细胞比率umol/L红细胞分布宽度CV% 中性粒细胞比率%血小板337109/L100-300 单核细胞比率%血小板压积% 嗜酸性粒细胞比率%平均血小板体积fL 嗜碱性粒细胞比率%血小板分布宽度fL 红细胞1012/L大型血小板比率% 送检医师：送检时间： 2017-08-11 08:10 检验医师：检验日期：2017-08-11 08:10 报告时间：2017-08-11 09:24 审核医师： 本报告仅对本标本负责，结果供医师参考，如有疑问请及时与检验科联系。 云南省荣誉军人康复医院血细胞分析检验报告单 姓名：洪文贵性别：男年龄： 79 门诊号：住院号： 送检科室：荣康科床号： 02 标本类型：全血标本状态：样本编号： 临床诊断： 项目名称结果单位参考范围项目名称结果单位参考范围 白细胞↑109/L4-10血红蛋白浓度119g/L110-150 淋巴细胞109/L红细胞压积% 中性粒细胞109/L平均红细胞体积fL 单核细胞109/L平均血红蛋白含量pg 嗜酸性粒细胞109l/L平均血红蛋白浓度330g/L318-347 嗜碱性粒细胞109l/L红细胞分布宽度SD fL 淋巴细胞比率umol/L红细胞分布宽度CV% 中性粒细胞比率%血小板289109/L100-300 单核细胞比率%血小板压积% 嗜酸性粒细胞比率%平均血小板体积fL 嗜碱性粒细胞比率%血小板分布宽度fL 红细胞1012/L大型血小板比率% 送检医师：林娜送检时间： 2017-08-16 09:17 检验医师：朱丹检验日期：2017-08-16 09:18 报告时间：2017-08-16 09:25 审核医师：谢树芝 本报告仅对本标本负责，结果供医师参考，如有疑问请及时与检验科联系。 云南省荣誉军人康复医院血细胞分析检验报告单 姓名：洪文贵性别：男年龄： 79 门诊号：住院号： 送检科室：荣康科床号： 02 标本类型：全血标本状态：样本编号： 临床诊断： 项目名称结果单位参考范围项目名称结果单位参考范围 白细胞109/L4-10血红蛋白浓度131g/L110-150
用显微镜观察人的口腔上皮细胞
用显微镜观察人的口腔上皮细胞 一、制作口腔上皮细胞的临时装片 1、用洁净的纱布把载玻片和盖玻片擦试干净，在载玻片中央滴一滴生理盐水--2分得 分 2、漱口，用消毒牙签的一端在口腔侧壁上轻刮几下--------2分得分 3、把牙签附有碎屑的一端在载玻片上的水滴中涂抹几下--1分得分 4、用镊子夹起洁净的盖玻片，将它的一端先接触水滴， 然后轻轻放下，要求无明显气泡产生----------------------------4分得分 5、在盖玻片的一侧滴一滴稀碘液，用吸水纸从另一侧吸引， 使染液浸润到标本的全部，然后把多余的水擦干净----------4分得分 二、用显微镜观察临时装片 1、正确取放显微镜，安好目镜-----------------------------------1分得分 2、转动转换器，选取低倍物镜-----------------------------------1分得分 3、对光：选用合适的光圈，并转动反光镜，通过目镜可以 看到明暗合适的视野-------------------------------------------------2分得分 4、观察：①标本对准通光孔，②下降镜筒直到物镜接近 玻片标本，③下降时眼睛看着物镜，④左眼注视目镜内，⑤同时上升镜筒，⑥视野中有清晰的的物像-------------------6分得分 三、绘图 1、一边观察一边绘图，按生物绘图的要求画一个口腔 上皮细胞，细胞结构各部分的比例合适-------------------------3分得分 2、注出各部分名称（错一个扣一分，错两个不得分。）----2分得分 四、整理仪器 1、擦净器具和桌面，废物放入垃圾筒--------------------------1分得分 2、显微镜的整理、复原-（镜筒、物镜、反光镜）--------------------------------1分得分 （一）用显微镜观察人的口腔上皮细胞 一、实验用品： 凉开水或清水一次性杯子塑料吸管显微镜载玻片盖玻片镊子消毒牙签烧杯吸管0.9％生理盐水稀碘液吸水纸纱布 二、实验要求： 1、会制作临时装片。 2、会使用显微镜观察。 3、认识人体细胞的基本结构。 4、会按生物绘图要求画口腔上皮细胞结构简图。
血涂片的制备
实验二血涂片的制备 Preparation of Blood Smear 实验原理 使用推片将血液在载玻片制成血膜。 试剂器材 载玻片（清洁、干燥、无尘、无油脂、25cm×75cm，厚度0.8mm~1.2mm）、推片。 操作步骤 （1）采血静脉采血后，使用玻璃棒、毛细管、注射针头等在距载玻片一端1cm处加1滴（约0.05ml）抗凝血，如果使用手指采血则直接用洁净玻片蘸 1 滴血。 （2）推片左手平执载玻片，或放在类似桌子等平 坦地方，右手持推片从后方或前方接近血滴，使血液沿 推片边缘展开成适当的宽度，立即将推片与载玻片呈 30。~45。角，轻压推片边缘将血液推制成厚薄适宜的血 涂片（图1-6），血涂片应呈舌状，头、体、尾清晰可见。 （3）干燥将推好的血涂片在空气中晃动，使其迅 速干燥。天气寒冷或潮湿时，应于37 ℃温箱中保温促 干，以免细胞变形缩小。 图1-6 推片（4）标记在载玻片的一端用记号笔编号。 注意事项 1．要制备良好的血细胞涂片，玻片必须干净。新购置的载玻片常带有游离碱质，必须用约1mol/L HCl浸泡24h后，再用清水彻底冲洗，擦干后备用。用过的载玻片可放入含适量肥皂或其他洗涤剂的清水中煮沸20min，洗净，再用清水反复冲洗，蒸馏水最后浸洗后擦干备用。边缘破碎、玻面有划痕的玻片不能再用。使用玻片时，只能手持玻片边缘，切勿触及玻片表面，以保持玻片清洁、干燥、中性、无油腻。 2．最好使用非抗凝血制备血涂片，也可用EDTA抗凝血制备。使用抗凝血标本时，应充分混匀后再涂片。抗凝血标本应在采集后4h内制备血涂片，时间过长可引起中性粒细胞和单核细胞的形态学改变。制片前标本不宜冷藏。涂片的厚度、长度与血滴的大小、推片与载玻片之间的角度、推片时的速度及红细胞比容有关。一般认为血滴大、血粘度高、推片角度大、速度快则血膜厚，反之则血膜薄。故针对不同病人应有的放矢，对血细胞比容高、血粘度高的病人应采用小血滴、小角度、慢推；而贫血患者则应采用大血滴、大角度、快推。 3．血膜应厚薄均匀适度，头尾及两侧有一定的空隙。如血膜面积太小，可观察的部分会受到局限，故应以在离开载玻片另一端2cm的地方结束涂抹为宜。一些体积特大的特殊细胞常在血膜的尾部出现，因此画线应注意保存血涂片尾部细胞。 4．血涂片必须充分干燥后方可固定染色，否则细胞尚未牢固地吸附在玻片上，在染色过程中容易脱落。 实验评价 血涂片制备是血液学检查的重要基本技术之一。一张良好的血片，厚薄要适宜，头体尾要明显，细胞分布要均匀，膜的边缘要整齐，并留有一定的空隙。 血涂片制备时手工推片法用血量少、操作简单，是最广泛应用的方法。除可
血常规检验的质量控制流程
血常规检验的质量控制流程 1目标 使血常规检验的受到全程质量控制，确保检测结果准确性。 2质量控制 血常规检验质量控制分为：分析前、分析中和分析后3个方面。 2.1血常规检验分析前的质量控制 2.1.1检验单的申请：检验申请单中应包含足够的信息，如患者的姓名、年龄、性别、住院科室、床号、疾病的诊断，可能干扰实验结果的服药史、特殊的病理变化，与血常规检验有关的既往史等患者信息，以便检验人员查对。申请的检验项目应准确无误，如需特殊检验应注明。 2.1.2患者的准备：许多生理因素可引起血细胞数的改变，如剧烈运动、饱餐、饥饿、紧张等，常使白细胞数增加，所以在采血前应尽量避免这些生理因素的影响。在采血前患者应把自己的生理状态、病理状态告知医生，以便确定最佳的采血时间。 2.1.3标本的制备：高质量的标本是保证检验结果准确、可靠的前提，其最基本的要求是保证血液标本中各项细胞形态的完整。 2.1.4标本的采集 2.1.4.1详见《检验科标本采集手册》 2.1.4.2抗凝剂：血常规标本必须经抗凝剂抗凝处理。 2.143标本采集后，立即将抗凝标本轻轻180度混匀8-10次。最后再次核对 病人姓名和号码。 2.1.5标本的运输和储存：采血完成后应尽快检测，，尽量减少运输和储存的时间。因为标本储存过程中，血细胞的代谢活动、蒸发作用和升华作用、化学反应、微生物降解等因素会直接影响标本的质量。如不能及时送检的标本，应在4-8 C 低温保存，但不要超过4小时。 3血常规检验分析中的质量控制 3.1测定时间对标本的影响 3.1.1标本取好后，放置的时间长短会对标本的质量产生影响。有研究表明，用EDTA抗凝的静脉血标本,在标本收集后的8h内（室温）检测,可以得到最佳的检测
血液检验报告单
血液检验报告单 1、红细胞计数(RBC) 男：×10 ×10 12个/L(400万-550万个/mm3)。 女：×10 ×10 12个/L(350万-500万个/mm3)。 儿童：×10 ×10 12个/L(400万-530万个/mm3)。 红细胞减少多见于各种贫血，如急性、慢性再生障碍性贫血、缺铁性贫血等。 红细胞增多常见于身体缺氧、血液浓缩、真性红细胞增多症、肺气肿等。 2、血红蛋白测定(Hb) 男：120-160g/L(12-16g/dL)。 女：110-150g/L(11-15g/dL)。 儿童：120-140g/L(12-14g/dL)。 血红蛋白减少多见于各种贫血，如急性、慢性再生障碍性贫血、缺铁性贫血等。 血红蛋白增多常见于身体缺氧、血液浓缩、真性红细胞增多症、肺气肿等。 3、白细胞计数(WBC)
成人：4×109-10×109/L(4000-10000/mm3)。 新生儿：15×109-20×109/L(15000-XX0/mm3)。 生理性白细胞增高多见于剧烈运动、进食后、妊娠、新生儿。另外采血部位不同，也可使白细胞数有差异，如耳垂血比手指血的白细胞数平均要高一些。 病理性白细胞增高多见于急性化脓性感染、尿毒症、白血病、组织损伤、急性出血等。 病理性白细胞减少再生障碍性贫血、某些传染病、肝硬化、脾功能亢进、放疗化疗等。 4、白细胞分类计数(DC) 中性秆状核粒细胞：(1%-5%)。 中性分叶核粒细胞：(50%-70%)。 嗜酸性粒细胞：(%-5%)。 淋巴细胞：(20%-40%)。 单核细胞：(3%-8%)。 中性杆状核粒细胞增高见于急性化脓性感染、大出血、严重组织损伤、慢性粒细胞膜性白血病及安眠药中毒等。 中性分叶核粒细胞减少多见于某些传染病、再生障碍性
血涂片制作
血涂片制作 将血标本均匀地涂抹在清洁干燥的载玻片上，经染色后在显微镜下检查，这是血细胞形态学检查的基本方法，临床应用很广，特别是对各种血液病的形态学诊断很有价值。但是，如果血徐片制备不良，染色不佳，常使血细胞的形态学鉴别和诊断发生困难，甚至导致错误的结论。如血膜过厚，细胞重叠缩小；血膜太薄，白细胞多集中于边缘。因此，制备厚薄适宜、分布均匀的血涂片是血液学检验的基本技术之一。 一、载玻片的清洁 新载玻片上常有游离碱质，必须用约lmol／L HCI浸泡24h 后，再用清水彻底冲洗，干燥备用。用过的载玻片可放入含适量肥皂或合成洗涤剂的清水中煮沸20min，再用热水将肥皂和血膜洗净，用清水反复冲洗，干燥备用。如急用载玻片，可将其置0、9乙醇中浸泡lh，用蒸馏水洗净后，擦干或烘干备用。使用载玻片时，只能手持玻片边缘，切勿用手触及玻片表面，以保持玻片清洁、干燥、中性、无油腻。 二、制作血涂片的标本 血涂片既可由非抗凝的静脉血和毛细血管血制备，也可由
EDTA抗凝血制备。EDTA抗凝血中，钙离子被螫合后，能阻止血小板聚集，推片时血小板均匀平铺，显微镜下易于对血小板进行观察评价。但有时可观察到因EDTA引起的红细胞皱缩及白细胞丛集现象。但随着血液分析仪的逐步普及，血标本多为EDTA抗凝血，除作全血细细胞计数及多参数分析外，制备血涂片也非常方便，虽有上述弊端，但显微镜下易于发现。 三、血涂片的制备 血涂片的制备方法很多，如手工推片法、自动推片法、载（盖）玻片压拉法、旋转涂片法、棕黄层（buffy－coat）涂片法及厚血膜涂片法等，现介绍如下。 1、手工推片法取血标本一滴置载玻片的一端，以边缘平滑的推片一端，从血滴前沿方向接触血液，使血液沿推片散开，推片与载玻片保持25～30o的平面夹角，平稳地将血向前推动，血液即在载玻片上形成一薄层血膜。将制成的血膜在空气中挥动，使迅速干燥，以免血细胞皱缩。 一张良好的涂片，要求厚薄适宜，头体尾分明，边缘整齐，两侧应留有空隙。玻片的一端应留有贴标签的地方。涂片的好坏与血滴大小、推片与载片之间角度、推片时的速度有关。血滴大、角度大、速度快，则血膜厚；反之则血膜薄。血膜分布不匀，主要是推片边缘不齐、用力不匀或载玻片不清洁
最经典总结--用显微镜观察细胞
用显微镜观察细胞 1.实验原理 (1)放大倍数的计算：显微镜的放大倍数等于目镜放大倍数与物镜放大倍数的乘积。 (2)放大倍数的实质：放大倍数是指放大的长度或宽度，不是指面积或体积。2.实验步骤 (1)认识显微镜 (2)显微的使用 ①低倍镜：取镜→安放→对光→压片→调焦→观察。 ②高倍镜使用的“四字诀” 1.若所观察视野中有“污物”，应如何判断“污物”的位置？ 提示
2.针对下图，请思考： (1)甲图中属于目镜的是①②，属于物镜的是③④，判断的依据是有无螺纹。 (2)甲图中放大倍数较大的目镜和物镜分别是②和④。 (3)从图中的乙转为丙，正确的调节顺序是：移动标本―→转动转换器―→调节光圈―→转动细准焦螺旋。 (4)若使物像放大倍数最大，甲图中与玻片标本最接近的是④。 【典例】如图表示用显微镜观察植物细胞有丝分裂的部分操作过程，其中叙述错误的是() A.图①视野中的图像是在低倍镜下观察到的 B.利用图①视野中的图像，要看清处于分裂期的细胞，应将装片适当向左移动 C.图②表示将显微镜镜头由甲转换成乙，视野中观察到的细胞数目减少 D.图②中显微镜镜头由甲转换成乙的过程中，为了方便操作，可以将镜筒升高[慧眼识图获取信息]
答案 D 【对点小练】 (2016·经典高考)下列关于测量蚕豆叶下表皮保卫细胞长度的实验操作，错误的是() A.从低倍镜转到高倍镜时，两眼必须从显微镜侧面注视 B.从低倍镜转到高倍镜时，轻轻地转动物镜使高倍镜到位 C.从低倍镜视野中，需将进一步放大观察的物像移至视野中央 D.为了使高倍镜下的视野亮一些，可使用更大的光圈或凹面反光镜 解析从低倍镜转到高倍镜时应转动转换器使高倍镜到位。 答案 B 有关显微镜使用的6个易错点 (1)调节粗准焦螺旋使镜筒下降时，双眼要从侧面注视物镜与玻片标本之间的距离，到快接近时(距离约为0.5 cm)停止下降。 (2)必须先用低倍物镜观察，找到要观察的物像，移到视野中央，然后再换用高倍物镜。 (3)换用高倍物镜后，不能再转动粗准焦螺旋，只能用细准焦螺旋来调节。 (4)换用高倍物镜后，若视野太暗，应先调节遮光器(换大光圈)或反光镜(用凹面反光镜)使视野明亮，再调节细准焦螺旋。 (5)显微镜下所看到的物像是物体放大后的倒像。“实物”与“像”之间的关系是：“实物”旋转180°就是“像”。例如实物为字母“b”，则视野中观察到的为“q”，若物像在左上方，则装片应向左上方移动。