2014-7-22正确采集临床微生物检验标本-蒋晓飞

临床检验标本采集手册精编WORD版

临床检验标本采集手册精编W O R D版 IBM system office room 【A0816H-A0912AAAHH-GX8Q8-GNTHHJ8】

临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动，并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证，必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制尤其重要。分析前质量管理是一个最薄弱的环节，试验误差中60～70%来自实验前，而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。实验前质量控制主要包括：⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1．患者的状态： 一般需在安静状态下采集标本，如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。运动后，由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸，可造成许多检验结果的变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高，还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 2. 患者的饮食： 2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右)，最好是早晨空腹采血。研究表明，餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物，可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高；进食高脂肪食物，可引起TG的大幅度增高。餐后

采集的血液样本，其血清常出现乳糜状，影响到许多检验测定的正确性。一些饮料如咖啡，也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。 2.2 禁食过久也会影响检测结果。通常血糖浓度呈下降趋势；胆红素清除速率降低，引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源，因此血清中酮体、脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。禁食48小时后，血清甘油三酯增加20％，此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加，尿排钾增加引起血清钾降低。 2.3 素食者：长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低，总脂质和磷脂浓度也会减少，胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之二。 2.4 咖啡因：咖啡、可乐、茶、以及多种药物都含有咖啡因，它是一种温和的刺激物和微弱的利尿剂。能刺激肾上腺髓质，促使儿茶酚胺分泌增加，使血糖浓度轻微上升、甘油三脂上升；但是血清胆固醇浓度会下降。 2.5 乙醇：长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶（GGT）活性会上升，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。中度酒精量会伤害骨骼肌细微结构，因此会使血清肌酸激酶(CK)活性上升。有报道喝酒会使ALT和AST测定值上升，不过少量饮酒的影响效应很低。 2.6 吸烟：吸烟者会引起白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、红细胞数和血红蛋白增加、平均红细胞体积偏高。抽烟者血浆β脂蛋白、胆固醇、甘油三脂等浓度高于未抽烟者，而高密度脂蛋白胆固醇低于未抽烟者。 3．药物的影响：

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

临床微生物检验标本的采集

临床微生物检验标本的采集及微生物检验报告的解读 一临床微生物检验标本的采集 1.临床微生物检验的思路和原则 确保标本可靠（（分析前质量） 保证检验质量 全面了解机体的正常菌群 快速准确提供信息 微生物学的定性、定量和定位分析 结合病情，与临床联系 2.微生物结果的影响因素 2.1针对性的检验申请、病人准备、标本的采集、标本的运输标本的保存和处理（46~68.2%）；标本检验（ 4-15% ）；结果审核和批准、危急值报告（18.5-47%） 2.2正确采集、转运与保存微生物标本直接关系到致病微生物培养的正确性与阳性率，是从临床微生物检验获得正确结果的最关键一步。 2.3Garbage-In- Garbage-Out 不合格的标本-不正确的检验结果-错误的诊断-错误的治疗-卫生资源的浪费、病人费用增加、耐药菌株增加 2.4成功治疗感染症的重要前提:正确的微生物学检验始自标本采取。否则工作人员水平再高也不可能得到正确的结果，临床医师、护士及检验人员都必须通晓其要领 3.标本采集前临床医师及护士要考虑的问题 3.1是否感染？细菌感染？真菌感染还是病毒、寄生虫感染？ 3.2何时采集样本？ 3.3采集什么样的标本？怎样采集？样本是否足量？ 3.4采用哪种无菌容器或运送培养基采集标本？ 3.5如何完善的填写标本申请单？针对某些特殊致病菌的排查要求应怎样写？（申请单信息越详尽，越有助于实验室出具符合临床情况的结果报告，如疑似诊断、准确的取材部位、甚至取样时用抗菌药物。） 3.6关键需要特别重视的问题：标本采集是否规范；标本保存、运送是否规范？；无菌体液培养重视与否？ 4.微生物检查的样本收集原则： 4.1收集样本时应使用严格的无菌技术，将污染情形降至最低。

临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。 2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内，应在申请检验单上注明。 3.不管临床症状经历的严重程度，但患者血液中病原菌浓度水平相当低，因此临床应多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次，成人每次血量10~20ml，可提高检出率。二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子：用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。 B.口腔内溃疡：用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。 C.鼻拭子：用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm，接触鼻黏膜采集。 2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法：A.患者早上起床后用清水漱口，不要刷牙，收集从下呼吸道咳出的第二口痰，吐在塑料痰盒中。 B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液，使痰液易于排出。 C.对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。②气管镜下采集法：用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本，但这种方法患者有一定痛苦。三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染，但多次重复导尿可造成逆行感染，因此多采用中段尿，简单易行，又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。 2.女性：成年女性外阴部以肥皂水清洗，再用无菌水洗净，用无菌纱布擦拭，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿3毫升，置于无菌容器内。 3.男性：用肥皂水清洗尿

道口，后用清水洗后取中段尿。包皮过长者为防止包皮内细菌污染，可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。4.儿童：采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多，高度怀疑尿路感染，无细菌则可否定，细菌数中度增加时，有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。 5.为确定菌尿是否来自肾脏，可通过膀胱镜，输尿管插管采集左右肾盂尿。四 .大便标本1.自然排便采集法：自然排便后，可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克，粘液状大便取絮状物，盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。 2.直肠拭子法：适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，然后插入肛门约4-5cm（幼儿约2-3cm）处，轻轻在直肠内旋转，檫取直肠表面粘液后取出，置于无菌试管或保存液中送检。 3.采集大便标本应在急性期，使用抗生素前进行，并要采集新鲜粪便。五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口，采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。 2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。 3.女性则用窥器扩张阴道，用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。当创伤出血时，敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。标本采集需注意无菌操作，及时送检。 1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

临床检验标本采集、运输、保存操作规程

临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。

3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。

微生物检验标本采集运送程序

微生物检验标本采集运送程序 1．目的 规范微生物检验标本采集、运送，保证实验检测前标本质量。 2．范围 微生物检验标本。 3．职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。 3.3 标本运送人员负责及时送到检验科细菌室，急诊检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送到细菌室（备注：周一至周五8：00AM～5：30PM、节假日8：00AM-12：00AM 送细菌室，余下时间送门诊检验室）。 4．程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作。包括核对医嘱，打印条形码，选择合适的标本容器，粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请是否一致，严防差错。 4.3 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备来采集标本，注意避免自身正常菌群的污染，各标本采集技术、设备和方法参见微生物标本采集指南。 4.4 采集厌氧菌培养标本时一般情况下不要使用拭子，最好选择活检或抽吸物；厌氧菌培养标本的运输应避免接触空气，立即送检，切不可冷藏；厌氧标本采集与需氧标本采集均参见微生物标本采集指南。 4.5 收集足够量的标本，量少可能导致假期阴性结果。 4.6 在每份标本容器上贴上条形码标识，标识中包含有病人基本信息与检验项目，有时还需标明标本来源、采集部位、采集时间。 4.7 将标本放置于合适的密封容器中。 4.8 采集样品所用材料需按照废弃物处理程序处置，参见《废弃物处理程序》）。 4.9 采集标本后，运送人员及时送到检验科细菌室。 4.10 标本运送人员收集标本时，需核对标本数，用硬质、密闭防泄漏的二级容器将标本安全送抵细菌室，参见微生物标本采集指南。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

(完整版)临床常见微生物标本的采集与运送

临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药 物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防 腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存， 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会 影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4 度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织

（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送 1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的

临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题

临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题一填空（15分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿＿套血培养，一套血培养包括一个＿＿＿＿ ＿和＿＿＿＿＿，“双侧双套”是指＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿。 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿＿＿＿＿；若从导 管取血，必需同时从＿＿取血。 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿＿小时以上，所以夜间 最好＿饮水。尿液培养标本宜立即送检，＿小时内接种。 4、抽血培养时的皮肤消毒程序：首先＿＿＿＿擦拭静脉穿刺部位30秒，再用＿＿ 30秒或＿＿60秒；最后用＿＿脱碘并待干。 5、婴幼儿采血量不能超过全血量的（）不能少于（）ML. 6、空气细菌培养（自然沉降法） （1）、采样时间:选择后与进行之前采样。 (2)、采样高度:与地面垂直高度米（洁净手术室等除外）。 (3)、布点方法（洁净手术室除外） （3、1）、室内面积，设一条对角线取三点，即中间一点，两端各距墙1米处各取一点。 （3、2）、室内面积，设两条对角线，于东、西、南、北、中取五点，其中东、西、南、北距墙均1米。 （4）、采样方法及培养时间:用直径普通琼脂平皿放置各采样点，打开后盖面朝＿＿斜扣到底盘，在采样点准确暴露规定时间后盖上平皿盖，及时送检。 （5）、要求标准: （5、1）门诊手术室、美容科手术室、宫腔镜室、介入科、新生儿室、烧伤病房、重症监护病房、血液病病区空气中的细菌菌落总数。 （5、2）儿科病房、母婴同室、妇产科检查室、人流室、注射室、治疗室、换药室、输血科、消毒供应中心、血液透析室、急诊室、化验室、各类普通病室、感染疾病科门诊及其病房等，空气中的细菌菌落总数。 7、物体表面细菌培养 （7、1）、采样时间：在后或有关时进行采样。

临床检验标本采集指南

临床检验标本采集指南 工人医院（中德西南人民医院） 检验科 质量方针 准确及时，方便快捷； 科学管理，优质服务； 满足临床，持续改进。

质量目标 1、服务围：本科向服务对象提供临床基础检验，临床生化检验，临床免疫检验，临床血液学检验等本专业相关的检验报告，并提供相应的咨询服务，最大程度地满足病人和临床需求。 2、服务标准：本科严格按照医疗机构《临床实验室管理办法》，《ISO 15189》标准，为服务对象提供高效、优质的服务，追求服务对象尽量满意。 3、质量要求：以ISO 15189标准为准则，不断完善质量体系，确保检测结果的公正性、科学性和权威性，及时准确地为病人和服务对象提供可靠的检验报告，确保室间质评和室质控VIS值成绩优秀。 4、服务相关承诺：本科严格按照ISO 15189标准建立质量控制体系，并保证持续有效运行，并严格按照质量体系文件从事各项质量活动和技术活动，按期实现质量目标。 科室主任寄语： 此质量方针和质量目标是检验科服务、质量和技术管理的宗旨，其特点可操作性、可评价性和可控制性。 1、准确及时：就是质量第一，精益求精。检验科将通过建立和实施质量管理体系和持续改进体系，准确及时地发出检验报告。 2、方便快捷：就是以病人为中心，关爱生命。每一位病人和诊治病人的临床医生都希望开出检验申请单后能立即得到检测结果。在保证检验质量的前提下，尽可能缩短报告周期。特别是急诊检验和危急值报告。我们必须实现检验科是为临床服务的，而方便就是服务之涵。 检验科服务咨询： 检验科： 0

血液检验标本采集指南 检验项目标本要求采血管类别颜色采血 量 混匀放置送检要求 全血细胞分析+五分类静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管 2ml 采血要快，见血立即混匀 5-8次，竖放，2小时送检 ABO、RH血型、交叉合血静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管 2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 糖化血红蛋白静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血凝检验静脉无脂血全 血兰色管（枸橼酸钠 1:9抗凝） 2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血沉检验静脉随机全血黑色管（枸橼酸钠 1:4抗凝）2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血流变学检验空腹静脉全血绿色管（肝素钠抗凝）3-5ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 急诊生化如电解质、肾功淀粉酶、心梗三项定量等静脉随机全血绿色管（肝素钠抗凝）3-5ml 立即混匀5-8次，竖放， 及时送检 肝肾功、血脂、电解质、心肌酶谱、风湿三项等生化类项目空腹静脉全血 （最好上午） 红头生化类普通管， 无抗凝剂 3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 免疫类项目空腹静脉全血红头生化类普通管， 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 输血前检查空腹静脉全血红头生化类普通管， 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 下图为美国临床及实验室标准研究院(CLSI)[原美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）]推荐采血顺序，在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，则应首先考虑凝血1（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因 为这两管要求严格。

病原微生物标本采集、运送

病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送

1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本

微生物标本采集大全

微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集

临床检验标本采集指南

临床检验标本采集指南 Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】

临床检验标本采集指南 宜宾工人医院（中德西南人民医院） 检验科 质量方针 准确及时，方便快捷； 科学管理，优质服务； 满足临床，持续改进。 质量目标 1、服务范围：本科向服务对象提供临床基础检验，临床生化检验，临床免疫检验，临床血液学检验等本专业相关的检验报告，并提供相应的咨询服务，最大程度地满足病人和临床需求。 2、服务标准：本科严格按照医疗机构《临床实验室管理办法》，《ISO 15189》标准，为服务对象提供高效、优质的服务，追求服务对象尽量满意。 3、质量要求：以ISO 15189标准为准则，不断完善质量体系，确保检测结果的公正性、科学性和权威性，及时准确地为病人和服务对象提供可靠的检验报告，确保室间质评和室内质控VIS值成绩优秀。 4、服务相关承诺：本科严格按照ISO 15189标准建立质量控制体系，并保证持续有效运行，并严格按照质量体系文件从事各项质量活动和技术活动，按期实现质量目标。 科室主任寄语： 此质量方针和质量目标是检验科服务、质量和技术管理的宗旨，其特点可操作性、可评价性和可控制性。 1、准确及时：就是质量第一，精益求精。检验科将通过建立和实施质量管理体系和持续改进体系，准确及时地发出检验报告。 2、方便快捷：就是以病人为中心，关爱生命。每一位病人和诊治病人的临床医生都希望开出检验申请单后能立即得到检测结果。在保证检验质量的前提下，尽可能缩短报告周期。特别是急诊检验和危急值报告。我们必须实现检验科是为临床服务的，而方便就是服务之内涵。 检验科服务咨询电话： 检验科： 血液检验标本采集指南

试题微生物标本采集与运送

《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分（每题5分） 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分（每题5分） 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙（不用牙膏）或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则

【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范（试行）临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中 较为薄弱的环节，严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病 菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控，也影响临床诊断， 合理选用抗菌药物，降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率，而且 对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院 感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等，均具有 十分重要的意义。严格实施正确的微生物标本送检和检验方法，是 做好医院感染病原体监测的关键。鉴此，希望临床各科能按照本操 作规范采样送检。 一、医院感染标本的采集和运送基本原则 1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。 2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。 3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。 6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。 7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法 1．血液与骨髓 ①通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。 ②采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存，不必 置冰箱保存。 ③每次采血量成人5～10ml，婴幼儿l～5ml，培养基与血液之比以lO：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 ④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下 次用药前采血。 ⑤每例病人至少采血两次，间隔0．5～lh，以利于提高阳性率和 区分感染菌与皮肤污染菌。 ⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。 2．尿液 ①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗 外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用O．1％新洁尔灭消毒尿 道口．灭菌纱布擦干后收集标本。 ②导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。或消毒后解开

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求 一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。 二、临床标本的采集 （一）下呼吸道分泌物（痰液） 令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。 （二）、尿液（中段尿） 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。 （三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。 （四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。 （五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。 （六）、： 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml； 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀， 4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。 （七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液： 严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 （八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。 （九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。 （十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。（十一）、烧伤标本：以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. （十二）、支原体（解脲、人型）培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差，标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性：用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。 三、临床标本的保存 细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理，不得保存。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范 一血常规检验标本 1 用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。 2 注意事项： A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 二红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 1 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。 2 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 三凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 1 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸 橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。 四血型与交叉配合标本 1 用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 五血流变检查标本 1 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽） 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 六尿液常规检查标本 1 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。 2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。 3 尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。 标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 七尿液特殊检查标本 1 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。 A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间 分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。 B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。 C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。 2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚 上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。 八粪便常规检查标本 1 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。 2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。 3 粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。 4 做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。 九浆膜腔积液检查标本