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革兰氏染色液配制

革兰氏染色液配制
革兰氏染色液配制

革兰氏染色液

保质期:2-8度一年.

革兰氏染色法是细菌学中广泛使用的一种鉴别染色法,媒染剂碘液进入菌体后与结晶紫结合,革兰氏阳性菌对碘与结晶紫摄取量多且牢固,不易被酒精脱色。革兰氏阴性菌对碘与结晶紫摄取量少,不牢固,易被酒精脱色。为观察方便,脱色后再用一种红色染料如碱性蕃红进行复染。阳性菌仍带紫色,阴性菌则被染上红色。

操作步骤:

1、标本处理:

(1).有菌部位的标本,如痰液、粪便、各种拭子、创面等可直接涂片。(2).无菌部位的标本,如脑脊液、胸水、腹水、胆汁、尿液、关节液等,应取适量标本(最高可达5-7ml),经3000rpm 离心10min.,取沉渣涂片染色。

2、涂片制作:菌液涂片时,用接种环沾取菌液点在载玻片上,标本可直接在玻片上涂布;菌落涂片时,先取生理盐水一滴,置玻片上,用接种针挑取菌落在盐水中涂布。制作的涂片应自然干燥,并经火焰固定,固定的温度不宜过高,以玻片背面接触手背不烫为准,否则可能使细菌形态改变。将固定后的涂片进行染色。

3、染色方法:

革兰氏染色的关键在于严格掌握酒精脱色程度,如脱色过度,则阳性菌可被误染为阴性菌;而脱色不够时,阴性菌可被误染为阳性菌。此外,菌龄也影响染色结果,如阳性菌培养时间过长,或已死亡及部分菌自行溶解了,都可能会呈阴性反应。

(1).加上结晶紫后,染色1分钟,水洗。

(2).加上碘液后染色1分钟,水洗。

(3).加上95%酒精,摇动玻片,根据涂片厚度,脱色约30-60秒,水洗,吸去水分。

(4).加上蕃红后,染色1分钟,水洗。

(5).吸干或在空气中凉干后,油镜镜检。

4.结果观察:紫色为革兰氏阳性,红色为革兰氏阴性。

注意事项:

1.标本涂片不能太厚,严格按操作要求进行。

2.玻片通过火焰温度不能太高。

3.若涂片较厚,应延长脱色时间,直至不再出现紫色为止。

4.碘液变透明,则不能使用。

5.水洗时动作要轻柔,沿载玻片对角线方向用洗瓶冲洗,以免把菌体冲掉。

革兰氏染色液如果用量少,买现成的比较话算,如果用量大,自己配起来也溶液,就是试剂种类多了点。其配制方法如下:

(1)结晶紫(crystal violet)液:结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL,1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。

(2)卢戈(Lugol)氏碘液:碘0.33g,碘化钾0.66g,蒸馏水100mL。先将碘化钾溶于少量蒸馏水中,然后加入碘使之完全溶解,再加蒸馏水至100mL即成。配成后贮于棕色瓶内备用,如变为黄色即不能使用。

(3)95%乙醇:用于脱色,脱色后可选用以下(4)或(5)的其中一项复染即可。

(4)番红溶液:番红O(safranine,又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL,溶解后可贮存于密闭的棕色瓶中,用时取20mL与80mL蒸馏水混匀即可。

常用染色剂及配制

常用染色剂及配制 供组织学诊断用的优秀常规染色剂,不仅须使细胞核和细胞浆有选择性着染,也要使结缔组织着色。苏木素-伊红染色的切片适当分色,可使这些结构得以区分,胞核表现为蓝色,胞浆和结缔组织纤维呈各种色调的粉红,因此这是一种最常用的常规染色剂。 一、苏木素-伊红染色的基本原理 苏木素是最早用于生物学上的天然染色剂之一,百余年来,一直是生物学实验室最常用的组织学中细胞核的染料,它是从苏木树的树心中提炼出来的,为浅褐色结晶或淡黄褐色的粉末状物。易溶于乙醇、甘油,也可溶于热水。苏木素本身没有染色能力,它经过氧化后,能产生具有染色能力的苏木红,苏木红又称为氧化苏木素或苏木因。 苏木素变成苏木红的过程叫作“成熟”。成熟的方法一般有两种:一种是把配制好的苏木素液在开口瓶中放置两个月以上,让其在日光和空气中的氧的作用下使之氧化。故一般地盛苏木素的瓶子放在向阳处,时间愈长,染色的效果愈好。常配制一大瓶,备长期使用。另一种方法是在苏木素液中加入氧化剂,如磺酸钠,过锰酸钾,氧化汞,双氧水等。用这种方法成熟与用第一种方法者不同的是,它放置时间愈长,染色的效果愈低。这是因为苏木红被继续氧化可生成无色的化合物,故一次不宜配制过多,还应放置40C冰箱内避光保存以延长使用时间。它的优点是配制后即可使用。 成熟的苏木素对组织并无亲和力,须加入含金属离子的媒染剂,才能达到染色的目的。一般用于明矾苏木素的媒染剂为钾明矾或氨明矾。主要是利用明矾中的铝离子和苏木红结合形成的铝沉淀色素为紫蓝色,对染色质有很大的亲和力,水和酒精都不能使其褪色。用于铁苏木素的媒染剂是三价铁离子,苏木红的铁沉淀色素为黑蓝色,不溶于水,因此,故不能配制大量含媒染剂的混合液,一般用时现配,或在染色过程中,先用铁明矾媒染,然后再染苏木素,如磷钨酸苏木素染色即是。 常规苏木素染色的对比染色是用伊红,也有采用焰红,因为焰红比伊红色泽更鲜明,此外还有采用橘黄G,比布里希猩红,波尔多红等作为对比染色。 苏木素-伊红染色,在组织病理学中,是一种日常使用最为广泛的常规染色方法。一张优质的染色切片,可以清晰地观察到各种不同的组织结构以此作为病理诊断的确切依据。再根据此染色切片所见,分别进行不同的特殊染色。 二、染液的配制 在实验室内常用的苏木素染液有以下几种,不同的仅是染色时间以及比较每种染色方法彼此的优缺点,不过各有优劣。 (一)苏木素染液的配制方法如下 1.Harris氏苏木素液 甲液:苏木素1g 无水酒精10ml 乙液:硫酸铝钾20g 蒸馏水200ml 丙液:一氧化汞0.5g 经典的配制方法是,先将甲液加热溶解后,密封待用,再将乙液加热溶解至沸,去火,待溶液仍处于小沸腾状态时再将甲液徐徐倾入其中,全部混合后,再使溶液在短时间内加热至沸腾,去火,最后,将氧化汞缓慢倾入溶液中(氧化汞一定要慢慢少量分次加入,切忌急躁。因氧化汞倒入后,溶液会迅速膨胀易沸出容器外而发生危险。)此时液体变为深紫色,待氧化汞全部放入后,再将溶液加温至沸腾片刻,立即将溶液放入流动的冷水中,并缓缓地连续摇晃至溶液完全冷却为止。隔夜后过滤,加入冰醋酸(按5%比例)混匀,再过滤后保存于

常用染色液配方

实验室常用染色液配方 1、吕氏(Loeffler)美蓝染色液 A液:美蓝(Methylene blue) 0.3 克95%酒精毫升 B液:氢氧化钾(KOH) 0.01 克蒸馏水100 毫升分别配制A液和B液,然后混合即成。 2、齐氏(Ziehl)石炭酸复红染色液 A液:碱性复红(Basic fuchsin) 0.3 克95%酒精10.O 毫升 B液:石炭酸(苯酚) 5.0 克蒸馏水95 毫升 将碱性复红溶于95%酒精中,配成A液。将石炭酸溶于蒸馏水中,配成B液。将两者混合即成。 3、结晶紫染色液(Huclker改订)A液:结晶紫(Crystai violet) 2.5 克95%酒精25.0 毫升 B液:草酸铵(NH4)2C2O4H2O 1.0 克蒸馏水100 毫升 将结晶紫研细后,加入95%酒精,使之溶解,配成A液。将草酸铵溶于蒸馏水,配成B液。两液混合即成。 4、路戈氏(LugoI)碘液(革氏鉴别染色用)碘1.0克碘化钾2.0克蒸馏水300毫升 先将碘化钾溶于少量蒸馏水中,再将碘溶于碘化钾溶液中,溶时可稍加热,最后加足蒸馏水量。 5、番红染色液(革氏鉴别染色用)番红O(Safranin O) 2.0克蒸馏水100毫升 6、孔雀绿染色液(芽孢染色用)孔雀绿(Malachite green) 5.0克蒸馏水100毫升先将孔雀绿研细,加少许95%酒精溶解,再加蒸馏水。 7、Dorner黑素液(英膜染色用)黑素(Nigrosin) 10.0克蒸馏水100毫升福尔马林(40%甲醛) 0.5毫升将黑素在蒸馏水中煮沸5分钟,加入福尔马林作为防腐剂,用玻璃棉过滤。 8、刚果红染色液刚果红(Congo red) 2.0克蒸馏水100毫升 9、稀释结晶紫染液(放线菌染色用)结晶紫染色液(同3) 5.0毫升蒸馏水95.0 10、乳酸石碳酸棉蓝染色液(真菌制片,短期保存)石炭酸10.0克甘油20.0毫升乳酸(比重l.21) 10.0毫升棉蓝0.02克蒸馏水10.0毫升将碳酸加在蒸溜水中加热溶化,加入乳酸和甘油,最后加入棉蓝,溶解即成。 11动物组织石蜡切片染色方法 苏木精-伊红(HE)染色:二甲苯Ⅰ, Ⅱ各10 min,依次进入无水乙醇、950 mL/L, 900 mL/L, 800 mL/L及700 mL/L的酒精各5 min,蒸馏水洗;入苏木精染液10 min,盐酸酒精分色4 s,自来水洗10 min;依次入700 mL/L, 800 mL/L及900 mL/L酒精各5 min,入伊红染液染色 10 min;入950 mL/L及无水乙醇Ⅰ, Ⅱ各5 min, 以二甲苯透明,中性树脂封片. 一、常用染色液的配制 ⒈碘-碘化钾(I2-KI)溶液能将淀粉染成蓝紫色,蛋白质染成黄色,也是植物组织化学测定的重要试剂。 配方:碘化钾2g ;蒸馏水300ml ;碘1g 先将碘化钾溶于少量蒸馏水中,待全溶解后再加碘,振荡溶解后稀释至300mL,保存在棕色玻璃瓶内。用时可将其稀释2-10倍,这样染色不致过深,效果更佳。 ⒉苏丹Ⅲ(sudanⅢ或Ⅳ)能使木栓化、角质化的细胞壁及脂肪、挥发油、树脂等染成红色或淡红色,是著名的脂肪染色剂。 配方:(1)苏丹III或苏丹Ⅳ干粉0.1g ;95%酒精10ml ;过滤后再加入10ml甘油(2)先将0.1g苏丹III或IV溶解在50ml丙酮中,再加入70%酒精50ml。 (3)苏丹III 70%乙醇的饱和溶液。 ⒊1%醋酸洋红(aceto carmine)酸性染料,适用于压碎涂抹制片,能使染色体染成深红色,细胞质成浅红色。

伊红染色液溶液的配制方法

伊红染色液配制方法 溶液的配制方法如下: 华越洋伊红染色液:100ml 伊红染料配方较多在常规配方中,有的染色效果好,但操作较繁琐,且消耗较多试剂。有的操作简单,但染色时间长,染液有效期短,常需加入冰醋酸,但加入剂量不易掌握,量少达不到促染作用,加入过多染液易沉淀,且引起色调不正,特别是容易褪色,染色结果不能长期保存。为此,对伊红Y染色液配制进行了改进。改进后的方法具有操作简便、经济、染色性质稳定、着色力强且持久颜色鲜艳等优点; 制备方法:伊红Y1G,蒸馏水90ML,苦味酸饱和水溶液10ML。将蒸馏水加入伊红,待其全部溶解后,加入苦味酸饱和水溶液。 染色结果观察:染色时间0.5-1分钟。伊红所着的颜色鲜艳,层次分明,与蓝色的细胞核对比突出。 伊红Y(四嗅荧光素二钠盐,分子式:C20-H6O5Br4NO2)是一种酸性红色胞浆性染料,室温下,在水中的溶解度度远大于在酒精中的溶解度。它在溶液反应中,由于钠离子的存在而呈碱性状态。苦味酸[分子式:(NO2)3C6HOH]是一种较强的酸性染料,它的颜色是由硝基发色团所致,染色性能是由羟基助色团产生的。苦味酸具有三种作用:1本身是一种胞浆染料,具有染色作用。2又是一种酸,加入伊红Y染色液中,使染色造成比胞浆等电点略为酸性的环境,抑制了部分氨基酸中羟基官能团,从而使氨基酸中氨基官能团和酸性染料结合,增加了染液与组织间的亲和力,起到促染作用。3苦味酸又是一种氧化剂,在染色体中经过氧化物作用后,使染色剂与组织成份结合的更牢固。组织着色鲜艳,染色后不易褪色,因而切片可长期保存。 华越洋伊红染色液操作简单,不使用汞、甲醇等有毒试剂,可以用于组织切片或培养细胞的染色。 本伊红染色液染色后细胞浆呈粉红色或红色。 本染色液可以和免疫荧光染色或免疫组化染色配合使用。一方面可以在本伊红染色液染色后进行免疫荧光染色或其它染料的染色,另一方面也可以在免疫组化染色后再进行伊红复染。 本染色液可以重复使用,直至认为效果不佳时再换用新的染色液。一个包装的本染色液至少可以染色200个样品。

常用染色液配制

常用染色液配制 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020

1.草酸铵结晶紫染色液 A液:结晶紫,95%乙醇25mL。 B液:草酸铵,蒸馏水1000mL。 制备时,将结晶紫研细,加入95%乙醇溶解,配成A液。将草酸铵溶于蒸馏水,配成B液。两液混合静止48h后,过滤后使用。 2.鲁格尔氏(路戈氏)碘液 碘,,蒸馏水300mL。先用3~5mL蒸馏水溶解KI,再加入碘片,稍加热溶解,加足水过滤后使用。 3.脱色液:95%乙醇;或丙酮乙醇溶液:95%乙醇70mL,丙酮30mL 4.沙黄(番红)染色液 %沙黄(番红)乙醇溶液:沙黄(番红),95%乙醇100mL。 此母液存放于不透气的棕色瓶中,使用时取20mL母液加80mL蒸馏水使用。 5.%美兰染色液 溶解于100mL蒸馏水中。 6.吕氏碱性美蓝色染色液 A液:美蓝,95%乙醇30mL。 B液:,蒸馏水100mL,分别配制A液和B液,混合即可。 7.瑞氏染色液 瑞氏染料粉未,甘油3mL,甲醇97mL。将染料放乳钵内研磨,先加甘油,后加甲醇,过夜后过滤即可。 8.5%孔雀绿水溶液(芽孢染色用) 孔雀绿,蒸馏水100mL。先将孔雀绿放乳钵内研磨,加少许95%乙醇溶解,再加蒸馏水。 9.黑色素水溶液(荚膜负染色用) 黑色素10g,蒸馏水100mL,40%甲醛(福尔马林)。将黑色素溶于蒸馏水中,煮沸5min,再加福尔马林作防腐剂,用玻璃棉过滤。 10.硝酸银鞭毛染色液 A液:单宁酸,,福尔马林(15%),1%,蒸馏水100mL。 B液:,蒸馏水100mL。 将AgNO3溶解后,取出10mL备用,向其它的90mL硝酸银液中加浓氢氧化铵,则形成很厚的沉淀,再继续滴加氢氧化铵到刚刚溶解沉淀成为澄清溶液为之。再将备用的硝酸银慢慢滴入,则出现薄雾,但轻轻摇动后,薄雾状的沉淀又消失,再滴入硝酸银,直到摇动后,仍呈现轻微而稳定的薄雾状沉淀为之。如雾重,则银盐沉淀出,不宜使用。 11.改良利夫森(Leifson’s)鞭毛染色液 A:20%单宁(鞣酸);B:饱和钾明矾液(20%);C:5%石炭酸;D:碱性复红酒精(95%)饱和液。 将以上各液于染色前1~3d,按B加到A中,C加到A、B混合液中,D加到A、B、C混合液中的顺序,混合均匀,马上过滤15~20次,2~3d内使用效果较好。 12.石炭酸复红染色液 A液:碱性复红,95%乙醇10mL;B液:石炭酸(苯酚)5g,蒸馏水95mL。 先将染料溶解于乙醇,将苯酚溶于水,AB两液混合即可。

液体配制及实验方法

(一)液体配制 1.完全培养基 DMEM+10%FBS+1%双抗+(1%HAPS液) 若放置时间长于2周加1%谷氨酰胺 2.PBS 1000ml去离子水中溶解8.0gNaCl、0.2gKCl、2.89gNa2HPO4、0.26gNaH2PO4 3.胰酶 用之前调节PH值至7.6 4.CaCl2 将0.165gCaCl2粉末溶于10ml去离子水中配制成50X的溶液 每5ml胶原酶中加入100μl CaCl2溶液(终浓度3μmol/L)用于激活胶原酶的活性 5.双抗 终浓度:青霉素100万U/100ml 链霉素100万U/100ml 青霉素0.6μg为1个单位链霉素 1.2195μg为一个单位 称取青、链霉素粉末各0.6、1.2195g溶于10mlPBS中再定容至100ml 6.两性霉素B 100mg两性霉素B粉末溶于40mlPBS中,制成浓度为2.5mg/ml(1000X)的浓缩液 每100ml完全培养基中加入100μl 浓缩液,稀释为终浓度2.5μg/ml 7.细胞冻存液 20%DMSO+80%FBS(1mlDMSO+4mlFBS) 8STZ溶液 STZ溶于柠檬酸和柠檬酸三钠的盐溶液中 称取柠檬酸0.105g溶于5mlPBS 称取柠檬酸三钠0.145g溶于5mlPBS中混合两者制成10毫升的溶解液. 再将100mgSTZ粉末溶于该溶解液中制成浓度1%的STZ溶液,调节PH值至4.5,4°避光保存,由于STZ水溶性不稳定,溶液最好在半小时内使用完毕. 9油红O 原液:油红O 0.6g溶于异丙醇(99% )100ml 。 稀释液:油红O 原液20ml ,蒸馏水20ml ,过滤后使用。 10茜素红 称取0.1g茜素红粉溶于100mlPBS,调节PH值到7.2,过滤后使用.

常用染色液的配制

常用染色液的配制 1.吕氏(Loefflev)美蓝染色液 A液:2%美蓝(Methylene blue)95%酒精溶液 B液:10%KOH溶液 取A液30ml、B液0.1ml与100ml蒸馏水混合。 2.石炭酸复红染色液 A液:4%碱性复红(basic fuchsin)95%酒精溶液 将碱性复红在研钵中研磨后,逐渐加入95%酒精,继续研磨使其溶解、 配成A液。 B液:5%石炭酸溶液 取A液10ml、B液90ml混合即可。一般可将此溶液稀释5-10倍使用。 但稀释液易变质失效,一次不宜多配。 3.革兰氏(gram)染色液 (1)草酸铵结晶紫染液: A液:1%结晶紫(Crystal violet)95%酒精溶液 B液:1%草酸铵(Ammonium oxalate)溶液 取A液20mlB液80ml,静置48/小时后使用。 (2)路哥氏(Lugol)碘液: 碘片1.0g、碘化钾2.0g、蒸馏水300ml 先将碘化钾溶解在少量水中,再将碘片溶解在碘化钾溶液另,待碘全部 溶解后,加够水即成。 (3)95%酒精溶液 (4)蕃红(沙黄)复染液: 2.5%蕃红(Safranlne O)95%酒精溶液。 取此液10ml与90ml蒸馏水混匀即成。 4.芽孢染色液 (1)5%孔雀绿(Malachite green)溶液。 (2)0.5%蕃红溶液。 (3)苯酚品红溶液 称取11g碱性品红溶于100ml无水酒精中。 再取上述溶液10ml与100ml 5%的苯酚溶液混合,过滤备用。 (4)黑色素(nigrosin)溶液 10%黑色素溶液,置沸水浴中30min后,滤纸过滤二次,补加水到100ml,

几种常用的染色方法精编版

几种常用的染色方法公司标准化编码 [QQX96QT-XQQB89Q8-NQQJ6Q8-MQM9N]

几种常用的染色方法 1.美蓝染色法在已干燥、固定好的抹片上,滴加适量的美蓝染色液,经1—2min,水洗,沥去多余的水分,吸干或烘干,镜检。 2.革兰氏染色法 (1)在已干燥、固定好的抹片上,滴加草酸铵结晶紫染色液,经1—2min,水洗。 (2)加革兰氏碘溶液于抹片上媒染,作用1—3min,水洗。 (3)加95%酒精于抹片上脱色,约30s---1min,水洗。 (4)加碱性复红液(或沙黄或稀释石炭酸复红液)复染10---30s,水洗。(5)吸干或烘干,镜检。革兰氏阳性菌呈蓝紫色,革兰氏阴性菌呈红色。3.抗酸性染色法 (1)在已干燥、固定好的抹片上,滴加较多量的石炭酸复红染色液,在玻片下以酒精灯火焰缓缓加热,至发生蒸汽即止,维持微微发生蒸汽,经3—5min,水洗。 (2)用3%盐酸酒精脱色,直至标本无色脱出为止,充分水洗。 (3)用美蓝染色液复染约1min,水洗。 (4)吸干或烘干,镜检。抗酸性细菌呈红色,非抗酸性细菌呈蓝色。 以下方法也可:即在干燥、固定好的抹片上,滴加石炭酸复红染色1min,水洗,用1%美蓝染色液复染约20s,水洗。 对光观察,标本务必全呈蓝色,在火焰上烘干、镜检。抗酸性细菌呈红色,非抗酸性细菌和背景呈蓝色。 4.瑞氏染色法

(1)抹片自然干燥后,滴加瑞氏染色液于其上,为了避免很快变干,染色液可稍多加些,或看情况补充滴加,经1—3min,加约与染液等量的中性蒸馏水或PBS液,轻轻晃动玻片,使与染液混匀,约3min左右,直接用水冲洗(不可先将染液倾去),吸干或烘干、镜检。细菌染成蓝色,组织、细胞等物呈其它颜色。 (2)另一方法抹片自然干燥后,按涂抹点大小,盖上一块略大的清洁滤纸片,在其上轻轻滴加染色液,至略浸过滤纸,并看情况进行补滴,维持不使变干;染色3--5min,直接用水冲洗,吸干或烘干、镜检。此法使染色液经滤纸过滤,可大大避免沉渣粘附于抹片上影响镜检观察。 5.姬姆萨染色法 (1)于5ml新煮过的中性蒸馏水中滴加5—10滴姬姆萨氏染色液原液,即稀释成为常用的姬姆萨氏染色液。 (2)抹片经甲醇固定干燥后,在其上滴加足量的染色液或将抹片浸入盛有染色液的染色缸中,染色30min,或者染色数小时至24h,取出水洗,吸干或烘干、镜检。细菌呈蓝青色,组织、细胞等呈其它颜色。视野常呈淡红色。 6.克利特氏荚膜染色法 (1)染色液配制 ①美蓝溶液美蓝1g,95%酒精10ml,蒸馏水100ml。将美蓝溶于酒精内,再加蒸馏水混合。 ②碱性复红溶液碱性复红0.03g,95%酒精1ml,蒸馏水99ml。将碱性复红溶于酒精内,再加蒸馏水混合。 (2)染色法 ①涂片经火焰固定后,滴加美蓝溶液,将玻片至火焰上面加热至发生蒸汽为止。 ②水洗,以碱性复红溶液复染15—30s。 ③水洗后、吸干、镜检。

GUS染色液配制

G U S染色液配制 Prepared on 24 November 2020

一染色液配制 1)X-Gluc母液:X-Gluc,用N-N-二甲基酰胺(DMF)配成20mM的贮存液,分装成每管100μL,保存于-20℃。 2)X-Gluc基液(50mM PBS,)。配制方法: 50mM NaH2PO4·100ml; 50mM Na2HPO4 100ml共同溶解; Na2EDTA (10mM,372mg), Triton-100(%,100μl), K3 [Fe(CN) 6] (铁氰化钾)(,) K4 [Fe(CN) 6] (亚铁氰化钾)(,) 染色液:50μl X-Gluc母液+450μl基液 需要试剂:5-溴-4-氯-3-吲哚-β-葡萄糖苷酸酯(X-Gluc); N-N-二甲基甲酰胺(DMF) ; NaH2PO4; Na2HPO4 ; Na2EDTA ;Triton-100; K3 [Fe(CN) 6] (铁氰化钾); K4 [Fe(CN) 6] (亚铁氰化钾) 二染色方法: 1.将准备好的试材浸泡在染液,于25—37℃保温1小时至过夜。 2.叶片等绿色材料转入70%乙醇中脱色2—3次,至阴性对照材料呈白色。 3.肉眼或显微镜下观察,白色背景上的蓝色小点即为Gus表达位点。

三实验原理 适宜的反应条件下,β- 葡萄糖苷酸酶(GUS)可将X-Gluc水解成蓝色物质,因此具有GUS活性的部位或位点呈现蓝色或蓝色斑点,可用肉眼或显微镜观察到。 gus基因是目前常用的一种报告基因,是β-D-葡萄糖苷酸酶(gus)基因,其表达产物β-葡萄糖苷酸酶 (GUS)能催化裂解一系列的β-葡萄糖苷酸,它可以将5-溴-4-氯-3-吲哚-β-葡萄糖苷酸酯(X-Gluc)分解为蓝色的物质,也可以将4-甲基-伞形花酮-β-D-葡萄糖苷酯(4-MUG)分解为蓝色物质。其检测方法简单、快速、灵敏、稳定,且背景活性低。 gus基因的最大优点是它能测定外源基因表达的具体细胞和组织部位,这是其它报告基因所不能及的。 四注意事项 用于染色的植物材料的制备方法要因涉及的特定组织和器官的不同而异。例如,拟南芥的根、花和叶片以及烟草幼苗的根就可以不作任何预处理而直接染色。但是像烟草和马铃薯这些植物的茎和叶就必须在染色前切成薄片(1- 3mm)。当操作大的组织和样品时,可以选用真空渗入法来帮助底物和酶渗入细胞。

革兰氏染色液配制

革兰氏染色液 保质期:2-8度一年. 革兰氏染色法是细菌学中广泛使用的一种鉴别染色法,媒染剂碘液进入菌体后与结晶紫结合,革兰氏阳性菌对碘与结晶紫摄取量多且牢固,不易被酒精脱色。革兰氏阴性菌对碘与结晶紫摄取量少,不牢固,易被酒精脱色。为观察方便,脱色后再用一种红色染料如碱性蕃红进行复染。阳性菌仍带紫色,阴性菌则被染上红色。 操作步骤: 1、标本处理: (1).有菌部位的标本,如痰液、粪便、各种拭子、创面等可直接涂片。(2).无菌部位的标本,如脑脊液、胸水、腹水、胆汁、尿液、关节液等,应取适量标本(最高可达5-7ml),经3000rpm 离心10min.,取沉渣涂片染色。 2、涂片制作:菌液涂片时,用接种环沾取菌液点在载玻片上,标本可直接在玻片上涂布;菌落涂片时,先取生理盐水一滴,置玻片上,用接种针挑取菌落在盐水中涂布。制作的涂片应自然干燥,并经火焰固定,固定的温度不宜过高,以玻片背面接触手背不烫为准,否则可能使细菌形态改变。将固定后的涂片进行染色。 3、染色方法: 革兰氏染色的关键在于严格掌握酒精脱色程度,如脱色过度,则阳性菌可被误染为阴性菌;而脱色不够时,阴性菌可被误染为阳性菌。此外,菌龄也影响染色结果,如阳性菌培养时间过长,或已死亡及部分菌自行溶解了,都可能会呈阴性反应。 (1).加上结晶紫后,染色1分钟,水洗。 (2).加上碘液后染色1分钟,水洗。 (3).加上95%酒精,摇动玻片,根据涂片厚度,脱色约30-60秒,水洗,吸去水分。

(4).加上蕃红后,染色1分钟,水洗。 (5).吸干或在空气中凉干后,油镜镜检。 4.结果观察:紫色为革兰氏阳性,红色为革兰氏阴性。 注意事项: 1.标本涂片不能太厚,严格按操作要求进行。 2.玻片通过火焰温度不能太高。 3.若涂片较厚,应延长脱色时间,直至不再出现紫色为止。 4.碘液变透明,则不能使用。 5.水洗时动作要轻柔,沿载玻片对角线方向用洗瓶冲洗,以免把菌体冲掉。 革兰氏染色液如果用量少,买现成的比较话算,如果用量大,自己配起来也溶液,就是试剂种类多了点。其配制方法如下: (1)结晶紫(crystal violet)液:结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL,1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。 (2)卢戈(Lugol)氏碘液:碘0.33g,碘化钾0.66g,蒸馏水100mL。先将碘化钾溶于少量蒸馏水中,然后加入碘使之完全溶解,再加蒸馏水至100mL即成。配成后贮于棕色瓶内备用,如变为黄色即不能使用。 (3)95%乙醇:用于脱色,脱色后可选用以下(4)或(5)的其中一项复染即可。 (4)番红溶液:番红O(safranine,又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL,溶解后可贮存于密闭的棕色瓶中,用时取20mL与80mL蒸馏水混匀即可。

附录一 染色液的配制 免费

附录一染色液的配制 1、吕氏(Loefflev)美蓝染色液 A液:2%美蓝(Methylene blue)95%酒精溶液 B液:10%KOH溶液 取A液30ml、B液0.1ml与100ml蒸馏水混合。 2、石炭酸复红染色液 A液:4%碱性复红(basic fuchsin)95%酒精溶液 B液:5%石炭酸溶液 将碱性复红在研钵中研磨后,逐渐加入95%酒精,继续研磨使其溶解、配成A液。 取A液10ml、B液90ml混合即可。一般可将此溶液稀释5-10倍使用。但稀释液易变质失效,一次不宜多配。 3、革兰氏(gram)染色液 (1)草酸铵结晶紫染液: A液:1%结晶紫(Crystal violet)95%酒精溶液 B液:1%草酸铵(Ammonium oxalate)溶液 取A液20mlB液80ml,静置48/小时后使用。 (2)路哥氏(Lugol)碘液: 碘片1.0g、碘化钾2.0g、蒸馏水300ml 先将碘化钾溶解在少量水中,再将碘片溶解在碘化钾溶液另,待碘全部溶解后,加够水即成。 (3)95%酒精溶液 (4)沙黄(蕃红)复染液: 2.5%沙黄(Safranlne O)95%酒精溶液。 取此液10ml与90ml蒸馏水混匀即成。 4、芽孢染色液 (1)5%孔雀绿(Malachite green)溶液。 (2)0.5%沙黄溶液。 5、荚膜染色液 将黑色素在蒸馏水中煮沸5min,配成5%溶液,然后加入福尔马林(40%甲醛)0.5%(V/V)作防腐剂。 (2)沙黄染色液 与革兰氏染色液中的沙黄复染液相同。

6、鞭毛染色液 A液:单宁酸5.0g、FeC131.5g、蒸馏水100ml,福尔马林(15%)2.0ml、NaOH(1%)1.0ml。 配好后应当日使用,次日即效果差,第三日则不能使用。 B液:2%AgNO3溶液 待AgNO3溶解后,取出10ml备用。向其余的90ml AgNO3中滴入浓NH4OH,使之成为很浓厚的悬浮液,再继续滴加NH4OH,直到新形成的沉淀又重新刚刚溶解为止。再将10ml德用的AgNOa溶液慢慢滴入。此时会出理薄雾,轻轻摇动后,薄雾状沉淀又消失,再滴入AgNO3溶液直到摇动后仍呈现轻微而稳定的薄雾状沉淀为止。如所呈雾不重,此染液可使用一周;如雾重,则银盐沉淀出,不宜使用。 7、乳酸石炭酸棉蓝染色液 石炭酸2.0g、甘油40ml、乳酸(密度1.21)20ml、蒸馏水20ml、棉蓝(Cotton blue)0.05g 石炭酸在蒸馏水中加热溶解,然后加入乳酸和甘油,最后加入棉蓝,使其溶解即成。 8、富尔根氏(Feulgen)核染色液 (1)Schiff氏试剂:将1g碱性复红加于200ml煮沸的蒸馏水中,振荡5分钟,冷却至50℃左右过滤。加入1.0NHC120ml,摇匀。待冷至25℃时,加Na2S2O5(偏重亚硫酸钠)3g,摇匀后装在棕色瓶中,用黑纸包好,放于暗处过夜,此时试剂应为淡黄色(如为粉红色则不能用)。再用中性活性炭过滤,其滤液振荡1分钟后再过滤,滤液置于冷暗处备用。注意:过滤需在避光条件下进行。 在整个操作过程中所用的一切器皿都需十分洁净、干燥,以消除还原性物质。 (2)Schandium 固定液 取50ml升汞水溶液加95%酒精25ml。 B液:冰醋酸 取A液9ml加B液1ml,混匀后加热至60℃。 (3)亚硫酸水溶液 10%偏重亚硫酸钢水溶液5ml、1MHC115ml、蒸馏水100ml。 9、Albert氏异染颗粒染色液 A液:甲苯胺蓝0.15g、孔雀绿0.2g、95%酒精2ml、蒸馏水

常用染色液的配制

附录二:常用固定液和染色液的配制 常用染色液的配制 1. 番红水液 番红0.1g溶入蒸馏水,定溶至100ml。 2. 番红酒液 番红0.5g或1g溶入50%酒精,定溶至100ml。 3. 固绿染液 固绿0.1g溶入95%酒精,定溶至100ml。 4. 碘-碘化钾染液 碘化钾溶入100ml蒸馏水,再加入1g碘,溶解后即可使用。 5. 苏丹Ⅲ(或Ⅳ)染液 将0.1g苏丹Ⅲ或Ⅳ溶解在50ml丙酮中,再加入70%酒精50ml。6.改良苯酚品红染液 原液A:将3g碱性品红溶入100ml 70%酒精,此液可长期保存。原液B:将10mlA液加入到90ml 5%苯酚水溶液中。 原液C:将55mlB液加入到6ml的冰醋酸和6ml的38%的甲醛中。染色液:取C液20ml,加45%冰醋酸80ml,充分混匀,再加入1g 山梨醇,放置14天后使用,可保存3年。 7. 间苯三酚染液 将5g间苯三酚溶入100ml 95%酒精(若溶液呈黄色,即为失效)。 8. 中性红染液

将0.1g中性红溶入100ml蒸馏水,用时稀释10倍。 9. 钌红染液 将5~10mg钌红溶入25~50ml蒸馏水,现用现配。 10.龙胆紫染液 将0.2g龙胆紫溶入100ml蒸馏水。现常用结晶紫代替。必要时可将医用紫药水稀释5倍后代用。 11.铁醋酸洋红染液 先将100ml 45%醋酸水溶液置入200ml的锥形瓶中煮沸,移去火苗,然后慢慢地分多次加入1g洋红粉末(切记不可一次倒入)。待全部倒入后,再煮沸1~2min,并悬入一生锈的小铁钉于染液中,过1min 后取出,使染色剂略含铁质,以增加染色性能。静置12h后过滤于棕色瓶中备用(置于避光处)。 12.苏木精染液 苏木精的配方很多,常用的有如下3种: 配方Ⅰ:苏木精水溶液 0.5g苏木精溶入100ml煮沸的蒸馏水中,静置24h后可使用。 配方Ⅱ:代氏苏木精(Delarfield’s haematoxylin) 甲液:苏木精1g + 无水酒精6ml 乙液:硫酸铝铵(铵矾)10g + 蒸馏水100ml 丙液:甘油25ml + 甲醇25ml 分别配制甲、乙两液,将甲液一滴滴地加入乙液中,充分搅拌后,放入广口瓶中用纱布蒙住瓶口,置于温暖和光线充足处7~10天,再加

丽春红(Ponceau S)染色液的配制及使用

丽春红(Ponceau S)染色液的配制及使用 丽春红(Ponceau S)也称猩红,可以用于PVDF膜、硝酸纤维素膜(nitrocellulose membrane)和醋酸纤维素膜(cellulose acetate membrane)上的蛋白的检测。丽春红带负电荷,可以与带正电荷的氨基酸残基结合,同时丽春红也可以与蛋白的非极性区相结合,从而形成红色的条带。丽春红染色的灵敏度不及考马斯亮蓝染色。 丽春红对蛋白的染色是可逆的,染色后可以用蒸馏水,PBS或其它适当溶液洗去。因此,蛋白质N端测序时将SDS-PAGE胶上的蛋白转移到PVDF膜,用丽春红染色后将目的条带切下用于测序。 注意:丽春红染色液不适用于尼龙膜上的蛋白的检测。 使用说明 将PVDF膜、硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜浸没在丽春红染色液中,摇动5-10分钟或更长时间;取出印迹膜,用蒸馏水,PBS或其它适当溶液漂洗2-3次,可出现清晰条带,记录结果;用蒸馏水,PBS或其它适当溶液漂洗2-3次,每次3-5分钟,去除丽春红,进行后续的WB 检测。 补充:丽春红染色液也可以直接用来染PAGE胶,不过,在染色之前最好用甲醇-乙酸溶液浸泡一下PAGE胶,起到固定蛋白的作用。 丽春红染色液的配制 常用的丽春红染色液有两种:一种用乙酸配制,另外一种用三氯乙酸(TVA)和5-磺基水杨酸(5-Sulfosalicylic acid)配制。配制方法如下: 一、用乙酸配制成分:0.1%(w/v)丽春红,5%(v/v)乙酸,ddH2O。 4 ℃保存,不要冻上。也可以配成“0.2%(w/v)丽春红,3%(v/v)乙酸,ddH2O”。

二、用三氯乙酸和5-磺基水杨酸成分:2% (w/v)丽春红,30%的三氯乙酸,30%的5-磺基水杨酸。

常用染色剂的配方

常用染色剂的配方 常用染色剂的配方 (一)天然染料 1、苏木精(Hematoxylin)苏木精是从南美的苏木(Haematoxylon campechianum)干枝中用乙醚浸制出来的一种色素,是最常用的染料之一。苏木精不能直接染色,必须暴露在通气的地方,使他变成氧化苏木精(又叫苏木素)后才能使用,这叫做“成熟”。苏木精的“成熟”过程需时较长,配置后时间愈久,染色力愈强。被染材料必须经金属盐作媒剂作用后才有着色力。所以在配制苏木精染剂时都要用媒染剂。常用的媒染剂有硫酸铝按、钾明矾和铁明矾等。苏木精是淡黄色到锈紫色的结晶体,易溶于酒精,微溶于水和甘油,是染细胞核的优良材料,他能把细胞中不同的结构分化出各种不同的颜色。分化时组织所染的颜色因处理的情况而异,用酸性溶液(如盐酸—酒精)分化后呈红色,水洗后仍恢复青蓝色,用碱性溶液(如氨水)分化后呈蓝色,水洗后呈蓝黑色。 2、洋红(Carmine)洋红又叫胭脂红或卡红。一种热带产的雌性胭脂虫干燥后,磨成粉末,提取出胭脂红,再用明矾处理,除去其中杂质,就制成洋红。单纯的洋红不能染色,要经酸性或碱性溶液溶解后才能染色。常用的酸性溶液有冰醋酸或苦味酸,碱性溶液有氨水、硼砂等。洋红使细胞核的优良染料,染色的标本不易褪色。用作切片或组织块染都适宜,尤其适宜于小型材料的整体染色。用洋红配成的溶液染色后能保持几年。洋红溶液出现浑浊时要过滤后再用。 3、靛蓝洋红(Indigo carmine)是由木蓝(Indigofera)提出的靛蓝(Indigo)加上亚硫酸钠而成。为蓝色酸性染料,作为细胞质的染色剂。常与苦味酸合成苦味酸靛蓝洋红(picro-indigo-carmine),呈绿色,可与碱性品红作对比染色。 4、地衣红(Orcein)是由地衣(Lecanora parella)中取得的染料,可在酸性或碱性溶液中染色。植物细胞学中应用较多,尤其对于某些植物的染色体染色,效果比醋酸洋红更好。配制方法与洋红相似,通常也多溶入醋酸中(2.2%)染色。现在已多用其人工合成染料。 (二)人工染料 人工染料,即苯胺染料或煤焦油染料,种类很多,应用极广。它的缺点是经日光照射容易褪色,苯胺蓝、亮绿、甲基绿等更易褪色。在制片中注意掌握酸碱度,并避免日光直射,也能经几年不褪色。 1、酸性品红(Acid fuchsin)酸性品红是酸性染料,呈红色粉末状,能容于水,略溶于酒精(0.3%)。是良好的细胞制染色剂,在动物制片上应用很广,在植物制片上用来染皮层、髓部等薄壁细胞和纤维素壁。它跟甲基绿同染,能显示线粒体。组织切片在染色前先浸在带酸性的水中,可增强它的染色

染色剂配制

常用染色液的配制 1.草酸铵结晶紫染色液 A液:结晶紫2.5g,95%乙醇25mL。 B液:草酸铵1.0g,蒸馏水1000mL。 制备时,将结晶紫研细,加入95%乙醇溶解,配成A液。将草酸铵溶于蒸馏水,配成B液。两液混合静止48h后,过滤后使用。 2.鲁格尔氏(路戈氏)碘液 碘1.0g,KI 2.0g,蒸馏水300mL。先用3~5 mL蒸馏水溶解KI,再加入碘片,稍加热溶解,加足水过滤后使用。 3.脱色液:95%乙醇;或丙酮乙醇溶液:95%乙醇70mL,丙酮30mL 4.沙黄(番红)染色液 2.5%沙黄(番红)乙醇溶液:沙黄(番红)2.5g,95%乙醇100mL。 此母液存放于不透气的棕色瓶中,使用时取20mL母液加80mL蒸馏水使用。 5.0.1%美兰染色液 0.1g溶解于100mL蒸馏水中。 6.吕氏碱性美蓝色染色液 A液:美蓝0.3g,95%乙醇30mL。 B液:KOH 0.01g,蒸馏水100mL,分别配制A液和B液,混合即可。 7.瑞氏染色液 瑞氏染料粉未0.3g,甘油3mL,甲醇97mL。将染料放乳钵内研磨,先加甘油,后加甲醇,过夜后过滤即可。 8.5%孔雀绿水溶液(芽孢染色用) 孔雀绿5.0g,蒸馏水100mL。先将孔雀绿放乳钵内研磨,加少许95%乙醇溶解,再加蒸馏水。 9.黑色素水溶液(荚膜负染色用)

黑色素10g,蒸馏水100mL,40%甲醛(福尔马林)0.5mL。将黑色素溶于蒸馏水中,煮沸5min,再加福尔马林作防腐剂,用玻璃棉过滤。 10.硝酸银鞭毛染色液 A液:单宁酸5.0g,FeCL3 1.5g,福尔马林(15%) 2.0mL,1%NaOH 1.0mL,蒸馏水100mL。 B液:AgNO3 2.0g,蒸馏水100mL。 将AgNO3溶解后,取出10mL备用,向其它的90mL硝酸银液中加浓氢氧化铵,则形成很厚的沉淀,再继续滴加氢氧化铵到刚刚溶解沉淀成为澄清溶液为之。再将备用的硝酸银慢慢滴入,则出现薄雾,但轻轻摇动后,薄雾状的沉淀又消失,再滴入硝酸银,直到摇动后,仍呈现轻微而稳定的薄雾状沉淀为之。如雾重,则银盐沉淀出,不宜使用。 11.改良利夫森(Leifson’s)鞭毛染色液 A:20%单宁(鞣酸)2.0mL;B:饱和钾明矾液(20%) 2.0mL;C:5%石炭酸2.0mL;D:碱性复红酒精(95%)饱和液1.5mL。 将以上各液于染色前1~3d,按B加到A中,C加到A、B混合液中,D加到A、B、C混合液中的顺序,混合均匀,马上过滤15~20次,2~3d内使用效果较好。 12.石炭酸复红染色液 A液:碱性复红0.3g,95%乙醇10mL;B液:石炭酸(苯酚)5g,蒸馏水95mL。 先将染料溶解于乙醇,将苯酚溶于水,AB两液混合即可。 13.乳酸石炭酸棉蓝染色液 石炭酸(苯酚)10g,乳酸(比重1.21)10mL,甘油20mL,棉蓝(苯胺蓝)0.21g,蒸馏水10mL。 将石炭酸加入蒸馏水中,加热溶解,再加入乳酸和甘油,最后加棉蓝。 附录Ⅴ:常用缓冲液的配制 1.pH7.0磷酸盐缓冲液(PBS)(20℃pH值7.0~7.1) 甲液:KH2PO4 34.0g,蒸馏水1000mL;乙液:K2HPO4 43.6g,蒸馏水1000mL。 甲液二份和乙液三份混合即可。

常用染液的配制

附录I 染色液的配制 一、吕氏(Loeffler)碱性美蓝染液 (实验6,53) A液:美蓝(methylene blue) 0.6g 95%酒精 30ml B液:KOH 0.01g 蒸馏水 100ml 分别配制A液和B液,配好后混合即可。 二、齐氏(Ziehl)石炭酸复红染色液 (实验6) A液:碱性复红(basic fuchsin) 0.3g 95%酒精 10ml B液:石炭酸 5.0g 蒸馏水 95ml 将碱性复红在研钵中研磨后,逐渐加入95%酒精,继续研磨使其溶解,配成A液。 将石炭酸溶解于水中,配成B液。 混合A液及B液即成。通常可将此混合液稀释5—10倍使用,稀释液易变质失效,一次不宜多配。 三、革兰氏(Gram)染色液 (实验7) 1.草酸铵结晶紫染液 A液:结晶紫(crystal violet) 2g 95%酒精 20ml B液:草酸铵(ammonium oxalate) 0.8g 蒸馏水 80ml 混合A、B二液,静置48小时后使用。 2.卢戈氏(Lugol)碘液 碘片 1.0g 碘化钾 2.0g 蒸馏水 300ml 先将碘化钾溶解在少量水中,再将碘片溶解在碘化钾溶液中,待碘全溶后,加足水分即成。 3.95%的酒精溶液。 4.番红复染液 番红(safranine O) 2.5g 95%酒精 100ml 取上述配好的番红酒精溶液10ml与80ml蒸馏水混匀即成。 四、芽孢染色液 (实验8) 1.孔雀绿染液 孔雀绿(malachite green) 5g 蒸馏水 100ml 2.番红水溶液 番红 0.5g 蒸馏水 100ml 3.苯酚品红溶液 碱性品红 11g

HE染色程序及相关溶液配制

HE染色程序 1.取材与固定:一般取0.5立方米,基木不用再次修形。置于4%甲醛溶液中,至少固定24小时。室温保存即可。 2.水洗:视组织块大小而定。一般与固定时间相等或至少水洗 24小时。 3、脱水:70%酒精(过夜或2h) ->80%酒精(过夜或lh) -90% 酒精 (lh) ->95%酒精I (lh) -95%酒精(lh) 11-100%酒精I (5)-100%酒精II (lh), 梯度酒精脱水 注:当酒精浓度逐渐升高时,特别是100%的酒精,注意观察组织 块情况,不能脱水脱过了,如果拖过了,切片时,组织易碎。如果水 脱的不彻底,则浸蜡时,蜡不能完全浸入,也会影响后期切片。 4、透明:二甲苯I (lOmin)—二甲苯II(lOmin)。 5、浸蜡:58°C 1.5-2h (一般用新蜡) 6、包埋:叠好的蜡槽,一般深lcm,宽lcm,长7cm,放4个组织块为 宜。注:包埋一般采用旧蜡,避免产生气泡。包埋时用来夹取组织块 的银子,要同时放在蜡箱里预热。先向蜡槽内倒蜡,然后用预热的蹑 子夹取浸蜡缸中的组织,放到蜡槽底部,尽量避免漂浮。包埋后,就 不要挪动蜡槽了,否则组织漂浮在蜡槽的表面。 7、常规切片,一般组织3-5微米,神经组织切7微米。展片温度 为52摄氏度。捞片时刻直接从95%的酒精中取载玻片直接捞片,不必 擦干载玻片上的洒精。捞好片后,置于37度温箱恒温干燥过夜。

8、切片脱蜡:二甲苯I (5min)—二甲苯JI(8min), 9、水化:100%酒精(lmin)-90%酒精(lmin)-80%酒精(lmin) -70% 酒精(lmin) 10、水洗2-5min 11、苏木素染色15-20min 12、水洗至灰黄色 13、分化:1%盐酸酒精分化30s至桃粉色, 14^水洗返蓝:2-3h 15、伊红染色:15min 16、脱水:70%酒精(10s) ->80%酒精(20s) -90%酒精(30s) -95%洒精(lmin) -100%酒精(2min)-100%酒精(2min) 17>二甲苯透明:二甲苯I (5min)—二甲苯II(5min) 18、中型树胶封片,镜检。 相关液体的配制: 1、4%甲醛固定液:40%的甲醛溶液10ml + 90ml蒸憾水,摇匀即可。 2、处理载玻片用的盐酸酒精:95%酒精100ml+ 36-38%盐酸1 ml摇匀即可。 3、分化用1%盐酸酒精:注:1%盐酸酒精配制:75%酒精99ml+36-38%HCL lml 即可。 4、二甲苯:无需配制,用商品化得即可。

革兰氏染色液配制

革兰氏染色液配制 文稿归稿存档编号:[KKUY-KKIO69-OTM243-OLUI129-G00I-FDQS58-

革兰氏染色液 保质期:2-8度一年. 革兰氏染色法是细菌学中广泛使用的一种鉴别染色法,媒染剂碘液进入菌体后与结晶紫结合,革兰氏阳性菌对碘与结晶紫摄取量多且牢固,不易被酒精脱色。革兰氏阴性菌对碘与结晶紫摄取量少,不牢固,易被酒精脱色。为观察方便,脱色后再用一种红色染料如碱性蕃红进行复染。阳性菌仍带紫色,阴性菌则被染上红色。 操作步骤: 1、标本处理: (1).有菌部位的标本,如痰液、粪便、各种拭子、创面等可直接涂片。 (2).无菌部位的标本,如脑脊液、胸水、腹水、胆汁、尿液、关节液等,应取适量标本(最高可达5-7ml),经3000rpm?离心10min.,取沉渣涂片染色。

2、涂片制作:菌液涂片时,用接种环沾取菌液点在载玻片上,标本可直接在玻片上涂布;菌落涂片时,先取生理盐水一滴,置玻片上,用接种针挑取菌落在盐水中涂布。制作的涂片应自然干燥,并经火焰固定,固定的温度不宜过高,以玻片背面接触手背不烫为准,否则可能使细菌形态改变。将固定后的涂片进行染色。 3、染色方法: 革兰氏染色的关键在于严格掌握酒精脱色程度,如脱色过度,则阳性菌可被误染为阴性菌;而脱色不够时,阴性菌可被误染为阳性菌。此外,菌龄也影响染色结果,如阳性菌培养时间过长,或已死亡及部分菌自行溶解了,都可能会呈阴性反应。 (1).加上结晶紫后,染色1分钟,水洗。 (2).加上碘液后染色1分钟,水洗。 (3).加上95%酒精,摇动玻片,根据涂片厚度,脱色约30-60秒,水洗,吸去水分。 (4).加上蕃红后,染色1分钟,水洗。 (5).吸干或在空气中凉干后,油镜镜检。 4.结果观察:紫色为革兰氏阳性,红色为革兰氏阴性。 注意事项:

染色液配制方法

常用染色液的配制 1.骆氏美蓝染色液 甲液:美蓝0.3g 95%酒精溶液 30ml 乙液:0.01%氢氧化钠溶液 100ml 甲液与乙液相混合即成。 2.1%美蓝酒精溶液美蓝1g 95%酒精溶液 100ml,充分混合溶解即可。 3.革兰氏染色液 (1)草酸铵结晶紫染液 甲液:结晶紫2.0g 95%酒精20ml 乙液:草酸铵0.8g 蒸馏水80ml 用时先以蒸馏水将甲液稀释5倍,然后加20ml于80ml乙液中,混合即成。 (2)革兰氏碘溶液碘片 1g 碘化钾 2g 蒸馏水 300ml 先将碘化钾置于干净的乳钵中,加入蒸馏水少许(约5ml),待碘化钾完全溶解后,再加入碘片,略作研磨,使碘片完全溶解,然后徐徐加水,充分混合,直至足量。切忌将碘片与碘化钾一起直接加入瓶中,一次加水配制。否则,碘片往往不能完全溶解而影响碘的浓度。(3)95%酒精 (4)复染色液可用碱性复红或沙黄液及稀释的石炭酸复红液。 碱性复红液:碱性复红0.1g 蒸馏水100ml,混合即成。 沙黄液:3.41%沙黄酒精溶液10ml、蒸馏水90ml。 稀释石炭酸复红液:石炭酸复红液10ml、蒸馏水90ml,混合即成。4.抗酸染色液 (1)石炭酸复红液 3%碱性复红酒精溶液10ml、5%石炭酸水溶液90ml,二液混合即成。 (2)盐酸酒精溶液浓盐酸3ml、95%酒精溶液97ml,二液混合即成。

5.瑞氏染色液瑞氏染料粉0.1g、纯甘油1.0ml、中性甲醇60ml。置染料粉于乳钵中,加入甘油,充分研磨,再徐徐加入甲醇,边研磨边搅拌,促其溶解,然后盛于棕色瓶中,置暗处过夜,次日以滤纸滤过后,仍盛于棕色瓶中,保存于暗处备用。 磷酸盐缓冲液: 溶液一:Na2HPO4.12H2O(磷酸二氢钠)23.864g、蒸馏水1000ml。溶液二:KH2PO4(磷酸二氢钾)9.078g、蒸馏水1000ml。 用时以溶液一4份与溶液二1份混合即成。 6.姬姆萨氏染色液取姬姆萨氏染料粉0.6g,加入甘油50ml,置于55—60度温度中1.5—2h,再加入甲醇50ml,静置一日以上,滤过后即可作染料原液用。 或者取姬姆萨氏染料粉0.75g、纯甲醇65ml、纯甘油35ml,盛于有玻璃珠的玻璃瓶内,充分摇匀;滤过后,贮存于有色玻璃瓶中,盖紧,备作原液用。 7.乳酸石炭酸液石炭酸20g、乳酸20ml、甘油40ml、蒸馏水20ml。按量将上述各成分依次放入玻璃瓶内,于水浴中加热溶解。 8.乳酸石炭酸棉蓝染色液在乳酸石炭酸溶液中加入棉蓝0.05%混合即成。 9.纽曼氏染色液美蓝粉1.12g、乙醇54ml、四氯乙烷40ml、冰醋酸6ml。 将乙醇及四氯乙烷先混合于一大玻璃瓶内(注意温度不可高于70度),加入美蓝,并充分溶化,再徐徐加入冰醋酸,滤过,保存备用。10.方吞那氏染色液 (1)媒染料鞣酸5g 石炭酸1g 蒸馏水100ml。 (2)染色液浓硝酸盐5g于蒸馏水100ml中,取出3—5ml,徐徐滴入浓氨水,至其生成黑色沉淀摇匀后又消失为止,再徐徐滴入5%硝酸盐溶液,至液体略呈混浊振后仍不消失为度。

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