愈创木酚法测定过氧化物酶活性

愈创木酚法测定过氧化物酶活性

一、实验目的

过氧化物酶是植物体内普遍存在的?活性较高的一种酶，它与呼吸作用?光合作用及生长素的氧化等都有密切关系，在植物生长发育过程中，它的活性不断变化，可以反映某一时期植物体内代谢的变化?

二、实验原理

在过氧化物酶(peroxidase POD)催化下，H2O2将愈创木酚氧化成茶褐色产物?此产物在470 nm处有最大光吸收值，故可通过测470 nm 下的吸光度变化测定过氧化物酶的活性?

三、实验材料

海滨锦葵叶片

四、实验设备与试剂

1、实验设备

①可见光分光光度计；②离心机；③研钵；④容量瓶；⑤量筒；⑥试管；⑦吸管?

2、实验试剂

0.05 mol/L的磷酸缓冲液(pH 5.5)；

0.05 mol/L愈创木酚溶液；

2% H2O2；

20%三氯乙酸

五、实验步骤

(一)酶液的制备

取 1.0~5.0 g 洗净的海滨锦葵叶片，切碎，放入研钵中，加适量的磷酸缓冲液研磨成匀浆。将匀浆液全部转入离心管中，于3000rmp离心10 min，上清液转入25 mL容量瓶中。沉淀用5 mL 磷酸缓冲液再提取两次，上清液并入容量瓶中，定容至刻度，低温下保存备用。

(二)过氧化物酶活性测定

酶活性测定的反应体系包括: 2.9 mL 0.05 mol/L磷酸缓冲液；1.0 mL 2% H2O2；

1.0 mL 0.05 mol/L愈创木酚和0.1 mL 酶液。用加热煮沸5 min 的酶液为对照，反

应体系加入酶液后，立即于37℃水浴中保温15min，然后迅速转入冰浴中，并加入20%三氯乙酸2.0mL终止反应，然后过滤（或5000r/min离心10min），适当稀释，470nm波长下测定吸光度。

六、实验结果

以每分钟内A470变化0.01 为1 个过氧化物酶活性单位(U)?

过氧化物酶活性U

=

△A470×V T

S

式中:△A470——反应时间内吸光度的变化；

W——马铃薯鲜重(g)；

t——反应时间(min)；

V T——提取酶液总体积(mL)；

V S——测定时取用酶液体积(mL)?

七、注意事项

酶液的的提取过程要尽量在低温温条件下进行?H2O2要在反应开始前加，不能直接加入?

SOD酶活性测定方法

SOD酶活性测定 所需药品： （1）0.1mol/l pH7.8的磷酸钠缓冲液： A液：0.1mol/l磷酸氢二钠液 B液：0.1mol/l磷酸二氢钠液 1毫升B+10.76毫升A （2）0.026mol/l蛋氨酸液（Met）：现用现配 称取0.3879克蛋氨酸，用1号液定容至100毫升。 （3）75*10-5mol/l氯化硝基四氮唑蓝（NBT）液：现用现配 称取0.1533克NBT，先用少量蒸馏水溶解，然后定容至250毫升。 （4）1umol/lEDTA-2钠和2*10-5mol/l核黄素混合液 （5）0.05mol/l pH7.8的磷酸钠缓冲液 （6）石英砂 实验步骤： 1.酶液制备：称取0.5克鲜叶，放入研钵中，加入3毫升5号液和少量石英砂，于冰浴中研成匀浆。然后用5号液定容至8毫升，于0～4℃、13000g时离心15分钟，上清液即为酶提取液。酶液可在低于0℃下的环境中保存。 2.按下表加入试剂： 试剂摇匀后，迅速遮光处理1号杯，其余杯在25℃、光强为4000勒克司的条件下照光处理15分钟，然后立即遮光。接着在560nm下，以1号杯作为空白测定其余杯中溶液的光密度。假定2、3号杯中溶液抑制NBT光还原的相对百分率为100%，然后按下式分别计算其余杯中溶液抑制NBT光还原的相对百分率。 M/N=100/X M——2、3号杯中溶液的光密度的平均值 N——其余杯中溶液的光密度值 X——其余杯中溶液抑制NBT光还原的相对百分率 然后以酶液量为横坐标，以其余杯中溶液抑制NBT光还原的相对百分率（X）为纵坐标制作曲线，根据线性好的曲线所得出的函数关系计算抑制NBT光还原的相对百分率为50%时所加入的酶液量，以该酶液量作为1个酶活单位。 结果计算：SOD活力按下式计算： A=V*1000*60/（B*W*T）

植物脱氢酶(PDHA)活性检测试剂盒说明书 微量法

植物脱氢酶(PDHA)活性检测试剂盒说明书微量法 注意：正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定。 货号:BC3125 规格:100T/48S 产品内容： 试剂一：粉剂×2瓶。使用前加少量水溶解，定容至50mL，避光、4℃保存（尽量现配现用）。 试剂二：液体100mL×2瓶，4℃保存。 试剂三：乙酸乙酯，自备。 产品说明： 生物体的脱氢酶(Plant dehydrogenase,PDHA)的活性在很大程度上反映了生物体的活性状态，能直接表示生物细胞对其基质降解能力的强弱。 受氢体2,3,5-氯化三苯基四氮唑（2,3,5-Triphenyl Tetrazolium Chloride，即TTC）在细胞呼吸过程中接受氢以后，其还原产物三苯基甲替（TriphenylFormazone，即TFF）呈现红色，在波长485nm处有最大吸收峰，采用分光光度法于485nm测定其吸光值，即得植物脱氢酶活性。 试验中所需的仪器和试剂： 台式离心机、可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、微量玻璃比色皿/96孔板（非聚苯乙烯/聚丙烯材质）、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰、蒸馏水、乙酸乙酯（不允许快递，请用户自备）。 操作步骤： 一、样品处理： 称取0.1g的植物组织，用双蒸水清洗3-4次，用滤纸吸干水分，备用。 二、测定步骤： 1、可见分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长至485nm，乙酸乙酯调零。 2、操作表：取5mLEP管依次加入

对照管测定管 样品（g）0.10.1 试剂一（mL）1 试剂二（mL）21 充分混匀，37℃，暗培养3h，取出后立即冰浴5min，去滤液，尽量用滤纸吸干样品，置于研钵/匀浆器中。 试剂三（mL）11 充分研磨（建议在通风橱操作）后全部移至于离心管中，用少量试剂三冲洗研钵，一起加入离心管，用试剂三定容至2mL，10000rpm/min，4℃，离心5min，取200μL上清至微量 玻璃比色皿或96孔板中，测定485nm下的吸光值。计算ΔA=A测定-A对照。 三、脱氢酶活力计算 A:用微量玻璃比色皿（光径，1cm）测定的计算公式如下 酶活单位定义：在37℃时，每小时每克组织样品使反应体系吸光值每增加0.01为一个酶活单位。 脱氢酶活性（U/g/h）=ΔA÷0.01÷T÷W=33×ΔA÷W。 B:用96孔板（光径，0.5cm）测定的计算公式如下 酶活单位定义：在37℃时，每小时每克组织样品使反应体系吸光值每增加0.005为一个酶活单位。 脱氢酶活性（U/g/h）=ΔA÷0.005÷T÷W=66.7×ΔA÷W。 T：反应时间，3h；W：样品鲜重，g。 注意事项： 1.配制好的试剂一避光保存于4℃，尽量在一周内使用，若出现红色，则不能使用。 2.试剂三易挥发，有毒，为了您的健康，请穿实验服，戴口罩，戴乳胶手套操作。 3.反应完成后立即冰浴以终止反应，并去除干净残留的反应液。 4.如果测定出来的吸光值较大，需把样品适当稀释再进行测定，注意计算公式乘以稀释倍数。 5.如果用96孔板进行检测，建议不要使用聚苯乙烯/聚丙烯材质的96孔板。

乙醇脱氢酶(ADH)活性检测试剂盒说明书 紫外分光光度法

乙醇脱氢酶（ADH）活性检测试剂盒说明书紫外分光光度法 货号：BC1080 规格：50T/48S 产品内容： 提取液：液体50mL×1瓶，4℃保存。 试剂一：液体40mL×1瓶，4℃保存。临用前把试剂二转移到试剂一中，分装保存于-20℃。 试剂二：粉剂×1瓶，-20℃保存。 试剂三：液体5mL×1瓶，4℃保存。 产品说明： ADH是生物体内短链醇代谢的关键酶，催化乙醇与乙醛可逆转换，在很多生理过程中起着重要作用。哺乳动物ADH主要在肝脏生成，肝脏损伤导致ADH释放到血清中。血清ADH活性高低反映了肝功能是否异常。 ADH催化NADH还原乙醛生成乙醇和NAD+，NADH在340nm处有吸收峰，而NAD+没有；测定340nm吸光度下降速率，来计算ADH活性。 自备仪器和用品： 研钵、冰、低温离心机、紫外分光光度计、1mL石英比色皿、可调式移液器和蒸馏水。 操作步骤： 一、粗酶液提取： 1、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提 取液）进行冰浴匀浆。16000g，4℃离心20min，取上清置冰上待测。 2、细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞 加入1mL提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；16000g，4℃离心20min，取上清液置冰上待测。 3、血清等液体：直接测定。 二、ADH测定操作：

1.分光光度计预热30min，调节波长到340nm，蒸馏水调零。 2.试剂一在25℃水浴中保温30min以上。 3.空白管：在1mL石英比色皿中依次加入100μL蒸馏水、800μL试剂一和100μL试剂三，迅速混匀后于 340nm测定吸光值变化，分别记录15s和75s时吸光值，分别记为A1和A2。△A空白管=A1-A2。空白管只需做1~2个。 4.测定管：在1mL石英比色皿中依次加入100μL上清液、800μL试剂一和100μL试剂三，迅速混匀后于 340nm测定吸光值变化，分别记录15s和75s时吸光值，分别记为A3和A4。△A测定管=A3-A4。 三、ADH活性计算： （1）按照蛋白浓度计算 活性单位定义：25℃中每毫克蛋白每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。 ADH(μmol/min/mg prot)=[(△A测定管–△A空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(Cpr×V样)÷T =1.61×(△A测定管–△A空白管)÷Cpr （2）按照样本质量计算 活性单位定义：25℃中每克组织每分钟氧化1μmolNADH为1个酶活单位。 ADH(μmol/min/g)=[(△A测定管–△A空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(W×V样÷V样总)÷T =1.61×(△A测定管–△A空白管)÷W （3）按细胞数量计算 活性单位定义：25℃中每104个细胞每分钟氧化1μmolNADH为1个酶活单位。 ADH(μmol/min/104cell)=[(△A测定管–△A空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T=1.61×(△A测定管–△A空白管)÷细胞数量 （4）按液体体积计算 活性单位定义：25℃中每毫升样品每分钟氧化1μmol NADH为1个酶活单位。 ADH(μmol/min/mL)=[(△A测定管–△A空白管)÷ε÷d×V反总×106]÷V样÷T =1.61×(△A测定管–△A空白管) ε：NADH摩尔消光系数，6.22×103L/mol/cm；d：比色皿光径，1cm；

土壤酶活性测定方法综合

土壤酶活性测定方法 1、土壤脲酶的测定方法（苯酚钠—次氯酸钠比色法） 一、原理 脲酶存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和二氧化碳、水。土壤脲酶活性，与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。 土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法以尿素为基质，根据酶促产物氨与苯酚—次氯酸钠作用生成蓝色的靛酚，来分析脲酶活性。 二、试剂 1）甲苯 2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。 3）柠檬酸盐缓冲液（）：184g柠檬酸和氢氧化钾（KOH）溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至，用水稀释定容至1000ml。 4）苯酚钠溶液（L）：苯酚溶于少量乙醇，加2ml甲醇和丙酮，用乙醇稀释至100ml （A液），存于冰箱中；27gNaOH溶于100ml水（B液）。将A、B溶液保存在冰箱中。使用前将A液、B液各20ml混合，用蒸馏水稀释至100ml。

5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为%，溶液稳定。 6）氮的标准溶液：精确称取硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有氮的标准液；再将此液稀释10倍（吸取10ml标准液定容至100ml）制成氮的工作液（ml）。 三、操作步骤 称取5g土样于50ml三角瓶中，加1ml甲苯，振荡均匀，15min后加10ml10% 尿素溶液和20ml PH 柠檬酸盐缓冲溶液，摇匀后在37℃恒温箱培养24小时。培养结束后过滤，过滤后取1ml滤液加入50ml容量瓶中，再加4ml苯酚钠溶液和3ml次氯酸钠溶液，随加随摇匀。20min后显色，定容。1h内在分光光度计与578nm波长处比色。（靛酚的蓝色在1h内保持稳定）。 标准曲线制作：在测定样品吸光值之前，分别取0、1、3、5、7、9、11、13ml 氮工作液，移于50ml容量瓶中，然后补加蒸馏水至20ml。再加入4ml苯酚钠溶液和3ml次氯酸钠溶液，随加随摇匀。20min后显色，定容。1h内在分光光度计上于578nm波长处比色。然后以氮工作液浓度为横坐标，吸光值为纵坐标，绘制标准曲线。 注意事项: 1、每一个样品应该做一个无基质对照，以等体积的蒸馏水代替基质，其他操作 与样品实验相同，以排除土样中原有的氨对实验结果的影响。 2、整个实验设置一个无土对照，不加土样，其他操作与样品实验相同，以检验 试剂纯度和基质自身分解。

乙醛脱氢酶(ALDH)活性检测试剂盒说明书微量法

乙醛脱氢酶（ALDH）活性检测试剂盒说明书微量法 注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。 货号：BC0755 规格：100T/96S 产品内容： 提取液：液体100mL×1瓶，4℃保存。 试剂一：液体10mL×1瓶，4℃保存。 试剂二：粉剂40mg×1瓶，-20℃避光保存。临用前加入3mL蒸馏水溶解，-20℃分装保存；或者按比例现用现配。 试剂三：液体0.5mL×1支，4℃避光保存。 试剂四：液体1mL×1支，4℃保存。 试剂五：液体2mL×1瓶，4℃保存。 产品说明： 乙醛脱氢酶(EC 1.2.1.10)是醛脱氢酶的一种，广泛存在于各种动物、植物和微生物体内。在辅酶I 的存在下，它催化乙醇在内的某些一级或二级醇、醛或酮的脱氢反应。在人类和许多动物体内，线粒体乙醛脱氢酶能把对生物体有害的醇类转化，所以在细胞解毒研究中乙醛脱氢酶受到高度关注；同时，乙醛脱氢酶在分子生物学以及相关疾病的检测方面有较广泛的研究应用。 乙醛脱氢酶催化乙醛和NAD+转化为乙酸和NADH，利用NADH在340nm处吸光值的变化即可计算得到乙醛脱氢酶的活性。 试验中所需的仪器和试剂： 紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。 操作步骤： 一、粗酶液提取：

组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液）进行冰浴匀浆，然后，10000g，4℃，离心20min。 细胞：按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL 提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后10000g，4℃，离心20min，取上清置于冰上待测。 液体：直接检测。 二、测定步骤： 1、紫外分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零。 2、将试剂一37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）预热15min。 3、操作表： 试剂名称空白管测定管 样本（μL）40 蒸馏水（μL）10060 试剂一（μL）6060 试剂二（μL）2020 试剂三（μL）44 试剂四（μL）66 试剂五（μL）1010 在微量石英比色皿/96孔UV板中分别加入上述试剂，充分混匀后于340nm处测定30s时的吸光值A1，迅速置于37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）水浴或培养箱1min（酶标仪有控温功能可将温度调至37℃或25℃），拿出迅速擦干测定90s时的吸光值A2，计算△A测定管=A2测定-A1测定，△A空白管=A2空白-A1空白，△A=△A测定管-△A空白管。空白管只需做一次。 三、ALDH酶活计算 1、按微量石英比色皿计算： （1）按蛋白浓度计算 酶活定义：每毫克蛋白每分钟催化还原1nmol NAD+的酶量为1个酶活单位。 ALDH酶活（U/mg prot）=△A÷（ε×d）×109×V反总÷（V样×Crp）÷T=804×△A÷Cpr （2）按样本质量计算

青岛湾环境质量现状与生物生态调查评价方案

青岛湾环境质量现状与生物生态调查评价方案 一、调查意义 综合运用《环境监测》课程所学知识与方法，对青岛市海湾生态系统进行野外观测，阐明海湾水质状况与生态系统的结构功能并对海湾环境与生态现状做出评价。 二、相关资料搜集 1.地质与生物分布资料 青岛湾栈桥附近属岩石海滩，潮间带各个潮带之间分界明显。高潮带生物以藤壶、滨螺为主，短滨螺个体较小、分布广泛；藤壶为高潮带优势种，密集分布于岩石上部，有的地方覆盖率高达100%。中潮带生物附着于岩石上，以牡蛎（褶牡蛎）、笠贝、贻贝为主，也有少量滨螺分布。牡蛎为中潮带优势种，有的地方覆盖率达100%。笠贝个体较小，附着在岩石上或牡蛎壳上。低潮带生物种类丰富，多种藻类和动物分布在岩石低洼处及水石临界处。鼠尾藻低潮带为优势种，广泛分布。叉枝藻、角叉藻、酸藻等也有分布。动物有朝鲜花冠小月螺、石鳖、贻贝等。 2..历年的水质资料 2007年，全省近岸海域水质以一、二类海水为主。其中一类海水测点占27.0％，二类海水测点占58.0％，三类、四类海水测点分别占10.0％和2.0％，劣四类海水测点占3.0％。全省近岸海域水质功能区达标率为83.7％，海水中主要污染物为无机氮、化学需氧量、石油类和活性磷酸盐。与2006年相比，全省近岸海域水质基本持平。 三、工作思路 污染源调查与评价 (1）采样 a.两个排污口取样，容积法、浮标法测流量。 b.以排污口为放射中心，按扇形布设。 水质站位：与排污口距离由近到远取6组。 沉积物质量站位：从水质站位中选取3组。 海洋生物站位：从沉积物质量站位中选取3组。 c.同时，在附近未受污染海域设2个对照站位。 （2）检测项目 特征污染物； 水质：水温、盐度、pH、SS、DO、COD（碱性高锰酸钾法）、 BOD（碘量瓶法）、氨氮（靛酚蓝分光光度法）、硝酸盐（锌镉还原法）、亚硝酸盐（盐酸萘乙二胺分光光度法）、活性磷酸盐（磷钼蓝法）海洋生物：底栖生物、潮间带生物； 沉积物质量：沉积物类型、石油类（荧光分光光度法）、重金属（原子吸收分光光度法）等。 （3）污染源评价 a.计算各污染物日排放量； b.应用等标污染指数法，确定主要污染物； c.根据相关标准确定水质、沉积物质量、生物体污染物残留量的超标情况及类别；

纤维素酶活力测定方法_张瑞萍

测试与标准 纤维素酶活力测定方法 张瑞萍 南通工学院(226007) 摘　要　用DN S 为显色剂,分别以滤纸和CM C 为底物,以滤纸糖酶活性(FP A )和羧甲基纤维素酶活性(CM C a se )表征纤维素酶活力。确定酶活测定用波长为530nm,参比溶液应为失活酶、底物和DN S 等共热的反应物;比较了两种底物的酶活力测定方法。结果表明,CM C a se 比FP A 高,说明酶对水溶性底物有较高的活力,也表明吸附对酶的活性部位与纤维素分子链段的结合及催化均有很大影响;对于不同牌号的纤维素酶,织物的酶减量率与CM C 酶活力关系密切。 叙　词:　测试　纤维素酶　活度中图分类号:　TS197 纤维素酶是多组分复合物,各组分的底物专一性不同。纤维素酶作用的底物比较复杂,反应产物不同,致使纤维素酶活力测定方法很多,各国的方法亦不统一。我们选择滤纸、CM C 为底物,原理系利用纤维素酶催化水解纤维素,产生纤维多糖、二糖及葡萄糖等还原糖,与显色剂反应,求出还原糖的浓度,间接求出酶的活力。由不同底物测得的酶活力分别称作FPA (滤纸糖酶活力)和CM C ase (羧甲基纤维素酶酶活力)。本文分析确定酶活力测定的主要条件,比较两种底物的酶活力测定方法的结果,探讨纤维素酶活力与织物减量率的关系,为酶在生产中的利用提供依据。 1　实验方法 1.1　化学药品、材料 纤维素酶(工业品),DNS 试剂(自配),冰醋酸,醋酸钠,葡萄糖(均为分析纯),滤纸(定性),羧甲基纤维素酶CM C (试剂级),纯棉针织物半制品(南通针织厂)。 1.2　FPA 滤纸酶活力和CMC 酶活力的测定 取适当稀释的酶液,分别以滤纸或1%的CM C 溶液为底物,于50℃恒温水解反应1h ;然后加入显色剂DNS,沸水浴中煮沸5min;再加入蒸馏水,于530nm 测定吸光度OD 值。 酶活可定义为:每毫升酶液1min 产生1mg 葡萄糖为一个单位( )。 1.3　针织物酶减量率的测定 将酶处理前后的试样在烘箱中105℃烘至恒重。减量率= 处理前织物干重-处理后织物干重 处理前织物干重 ×100% 2　结果与讨论 2.1　显色剂的选择 选用DNS ,在碱性条件下与还原糖反应,生成有色化合物,用分光光度计比色,确定低分子糖含量。 碱性条件下DNS 与还原糖共热反应如下: O 2N OH O 2N CO OH +还原糖 　H 2N OH CO OH O 2N DN S(黄色) 3-氨基-5-硝基水杨酸(棕红色) 生成的棕红色氨基化合物系比色法测定基础。2.2　最大吸收波长的确定 选取490～580nm 波长对显色液进行比色。由图1可知,不同浓度的葡萄糖溶液在490～500nm 处有最大吸收,DNS 在此波长下也有较明显的吸收。为了排除DNS 的干扰,选择在波长 530nm 处进行测定,此波长下的葡萄糖吸收虽有所降低,然而符合“吸收最大、干扰最小”的原则。 图1　D NS 与葡萄糖的吸收曲线 2.3　底物及酶本身含糖量的影响 在实验过程中发现,底物特别是滤纸,也含有一定的还原糖,在碱性的DNS 试剂中也会发色。而且,试验所用的纤维素酶是一种工业级的复合酶,品种不同,其本身含糖量也不同。为了排除这类还原糖的干扰,参比溶液取失活后的酶、底物、DNS 等共热的反应物。2.4　葡萄糖标准曲线 用不同浓度的葡萄糖溶液作为标准溶液,与DNS 共热反应显色后,测出其吸光度OD 值(见图2)。标准曲线的线性相关系数R 2为0.9991(见图2),线性相当好,可以用于酶活力的测定。 38 印　染(2002No .8) www .cdfn .com .cn

土壤脱氢酶活性的测定

土壤脱氢酶活性的测定 一、实验原理 脱氢酶的正式命名是AH：B氧化还原酶，广泛存在于动植物组织和微生物细胞内，它能酶促一定的基质中脱出氢而进行氧化作用。脱氢酶的种类因电子供给体和接受体的特异性而有不同。单位时间内脱氢酶活化氢的能力表现为它的酶活性。通过测定土壤中微生物的脱氢酶活性，可以了解微生物对土壤中有机物的氧化分解能力，即土壤酶的活性。 已知受氢体可接受脱氢酶脱出的氢原子，根据接收氢原子的量可以判断脱氢酶的活性。如无色的氯化三苯基四氮唑（TTC，俗称红四唑）接受氢后变成红色的三苯基甲瓒（TF），根据产生红色的色度进行比色定量分析，就可以判断脱氢酶的活性。通常，吸光度越大（红色越深），脱氢酶活性越大。 二、实验材料、试剂和仪器 1．材料：过0.9mm孔径筛的土壤样品，8g 2．试剂：0.36%Na2SO3溶液，15ml Tris-HCl缓冲液（PH=7.6），45ml 0.4%TTC,7.6ml Na2S2O4，十几粒 甲醛，10ml 丙酮，20ml 3．仪器：50ml具塞比色管，6只 比色管架，1只 1~5ml移液枪，1只（枪头3个） 100~1000ul移液枪1只（枪头1个） 药匙1个 水浴锅1个 分光光度计1台 分析天平1台 离心管4只 培养箱1台

离心机1台 三、实验步骤 1．标准曲线的绘制 （1）按下表配制系列浓度的TTC标准溶液。 （2）显色。 用药匙向每只比色管中各加入少许连二亚硫酸钠（Na2S2O4），混匀，使TTC 全部还原为红色的TF。用1~5ml移液枪向各管滴加1ml甲醛终止反应，摇匀后再加入2ml丙酮震荡摇匀，37℃水浴10min。 （3）测定吸光度，绘制标准曲线。 在485nm波长下测定各管溶液的吸光度A，并以A为纵坐标，TTC浓度为横坐标，绘制出TTC标准曲线。 2．土壤脱氢酶活性的测定 （1）培养并显色（此步骤由助教预先完成）。 首先，按下表向四只离心管中分别加入以下物质 然后，将以上四只离心管避光，37℃保温培养12~24h。 （2）培养结束后，用1~5ml可调式移液枪向各管分别加入1ml甲醛终止反应，

酶活性测定方法

酶活性测定 1、碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase) 试剂：0.1% p-nitrophenylphosphate disodium salt（P-硝基苯磷酸二钠） 0.2mol/L 碳酸盐/碳酸氢盐缓冲溶液(pH: 9.6)——buffer 0.2mol/L NaOH 测定步骤：(1) 加入样品之前，0.1% P-硝基苯磷酸二钠及buffer 37°C孵化30 min； (2) 1mL污泥样品+1mL0.1% P-硝基苯磷酸二钠+2mL buffer 37°C孵化30 min； (3) 加入2mL 0.2mol/L NaOH终止反应； (4) 2500g 离心，上清液在410nm测定吸光度。 计算： 每个污泥样品酶活性的测定均包含两个平行样S+一个空白样品S0。 [(S1- S0)+(S2- S0)]/2*0.704 (Eu) 2、酸性磷酸酶(Acid phosphatase) 试剂：0.1% p-nitrophenylphosphate disodium salt（P-硝基苯磷酸二钠） 0.2mol/L HAc/Ac缓冲溶液(pH: 4.8)——buffer 0.2mol/L NaOH 测定步骤：(1) 加入样品之前，0.1% P-硝基苯磷酸二钠及buffer 37°C孵化30 min； (2) 1mL污泥样品+1mL0.1% P-硝基苯磷酸二钠+2mL buffer 37°C孵化30 min； (3) 加入2mL 0.2mol/L NaOH终止反应； (4) 2500g 离心，上清液在410nm测定吸光度。 计算： 每个污泥样品酶活性的测定均包含两个平行样S+一个空白样品S0。 [(S1- S0)+(S2- S0)]/2*0.719 (Eu) 3、a-葡萄糖甘酶(a-glucosidase) 试剂：0.1% p-nitrophenyl a-D glucopyranoside（p-硝基苯-Α-D-葡吡喃糖苷） 0.2mol/L Tris-HCl (pH: 7.6) 测定步骤：(1) 加入样品之前，0.1% p-硝基苯-Α-D-葡吡喃糖苷及Tris-HCl 37°C 孵化30 min； (2) 1mL污泥样品+1mL 0.1% p-硝基苯-Α-D-葡吡喃糖苷+2mL Tris-HCl 37°C孵化

土壤脱氢酶(S-DHA)活性检测试剂盒说明书 可见分光光度法

土壤脱氢酶（S-DHA）活性检测试剂盒说明书可见分光光度法 注意：正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定 货号：BC0390 规格：50T/24S 产品简介： 土壤脱氢酶(Soil dehydrogenase,sDHA)的活性可以反映土壤体系内活性微生物量以及其对有机物的降解活性，可以作为土壤微生物的降解性能指标。 氢受体2,3,5-氯化三苯基四氮唑（2,3,5-Triphenyl Tetrazolium Chloride,TTC）在细胞呼吸过程中接受氢以后，被还原为三苯基甲臜（Triphenyl Formazone,TF），TF呈现红色，在波长485nm处有最大吸收峰，采用分光光度法于485nm测定其吸光值，即得土壤脱氢酶活性。 试验中所需的仪器和试剂： 筛子、天平、恒温培养箱或水浴锅、低温离心机、可见分光光度计、玻璃比色皿，冰、蒸馏水、丙酮（不允许快递，请用户自备）。 产品内容： 试剂一：粉剂×1瓶，使用前加30ml水溶解，4℃避光保存（尽量现配现用）。 试剂二：液体50ml×1瓶，4℃保存。 试剂三：丙酮，自备。 操作步骤： 一、样本前处理： 1.土壤样品：准确称取过40目筛的新鲜土壤样品约0.1g（以保证TTC与土壤颗粒充分接触）。 2.污泥样品：污泥用蒸馏水洗涤，12000rpm，25℃，离心10min，弃上清，反复3-4次。 二、测定操作： 对照管测定管 样品（g）0.10.1

试剂一（ml） 0.5试剂二（ml）10.5 充分混匀，37℃，暗培养6h，取出后立即冰浴5min 试剂三（ml）0.50.5 反复震荡数次，37℃保温10min，12000rpm，4℃，离心5min，取上清1ml 于1ml 玻璃比色皿， 分光光度计提前30分钟预热，蒸馏水调零，测定对照管和测定管，计算△A。 脱氢酶活力的计算： 酶活单位定义：在37℃时，每克样品每小时使每ml 反应体系OD 值每增加0.01为一个酶活单位。计算公式：sDHA 活性（U/g）=01.0△A ÷培养时间（6h）÷样品质量（0.1g）×V 反总（1.5ml） =250×A 485 注意事项： 1. 配制好的试剂一避光保存于4℃，最好在一周内使用，若出现红色，则不能使用。2. 试剂三易挥发，有毒，为了您的健康，请穿实验服，戴口罩，戴乳胶手套操作。3. 反应完成后立即冰浴以终止反应。4. 如果测定出来的吸光值较大，减少样品用量再进行测定，若吸光值过小则延长培养时间。5.试剂盒2-8℃保存。

水杨酸测定氨氮

水杨酸-次氯酸盐分光光度法测定氨氮氨氮的测定方法：通常有纳氏试剂比色法、水杨酸-次氯酸盐，比色法和电极法。氨氮含量较高时，可采用蒸馏-酸滴定法。纳氏试剂比色法具有操作简便、灵敏等特点，但钙、镁、铁等金属离子、硫化物、醛、酮类，以及水中色度和混浊等干扰测定，需要相应的预处理。水杨酸-次氯酸盐法具灵敏、稳定等优点，操作简便、实验室污染少等优点而被广泛应用。 1、测定原理 在碱性介质（pH =11.6）中，亚硝基铁氰化钠[Na 2(Fe(CN) 6 )NO]·2H 2 O存在下， 水中的氨、铵离子与水杨酸盐和次氯酸离子反应生成蓝色化合物，在波长697nm 具最大吸收，用分光光度计测量吸光度。 这类反应称为Berthelot反应。这类反应的机理比较复杂，是个分步进行的反应： (1)第一步是氧与次氯酸盐反应生成氯胺。NH 3+HOCl←→NH 2 Cl+H 2 O (2)第二步氯胺与水杨酸C 6H 4 (OH)COOH反应形成一个中间产物：5氨基水杨酸。 (3)第三步是氨基水杨酸转变为醌亚胺 (4)最后是卤代醌亚胺与水杨酸缩合生成靛酚蓝。 pH对每一步反应几乎都有本质上的影响。最佳的pH值不仅随酚类化合物而不同，而且随催化剂和掩蔽剂的不同而变化。此外，pH还影响着发色速度、显色产物的稳定性以及最大吸收波长的位置。因此控制反应的pH值是重要的。

2、本标准适用于地下水、地表水、生活污水和工业废水中氨氮的测定。 当取样体积为8.0mL，使用10mm比色皿时，检出限为0.01mg/L，测定下限为0.04mg/L，测定上限为1.0mg/L（均以N计）。 3、干扰及消除 氯铵在此条件下均被定量地测定。钙、镁等阳离子的干扰，可加酒石酸钾钠掩蔽。如果水样的颜色过深、含盐量过多，酒石酸钾盐对水样中的金属离子掩蔽能力不够，或水样中存在高浓度的钙、镁和氯化物时，需要预蒸馏。 (一)水样的预处理 1.1 样品采集与保存 水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内，要尽快分析。如需保存，应加硫酸使水样酸化至pH<2，2℃～5℃下可保存7天。 1.2 水样的预处理 水样带色或浑浊以及含其他一些干扰物质，影响氨氮的测定。为此，在分析时需作适当的预处理。对较清洁的水，可采用絮凝沉淀法；对污染严重的水或工业废水，则用蒸馏消除干扰。 絮凝沉淀法 加适量的硫酸锌于水样中，并加氢氧化钠使呈碱性，在pH＞10.5时，生成氢氧化锌絮状沉淀，再经过滤除颜色和浑浊等。 1.3. 仪器与试剂： 100 ml具塞量筒或比色管。 (1)10％硫酸锌溶液：称取10g硫酸锌溶于水，稀释至100 ml。 (2)25％氢氧化钠溶液：称取25g氢氧化钠溶于水，稀释至100ml，贮于聚乙烯 瓶中。 (3)硫酸， =1.84。 (4)中速滤纸 (5)漏斗 1.4.絮凝沉淀步骤：

酶活性测定方法

一、过氧化物酶（POD）活性的测定 POD测定参照李合生等（2003）的愈创木酚法方法进行测定，略加改动。 测定：称取样品0.5g，加入5mL 1／15mol／L PH=7.0的磷酸缓冲溶液，冰浴研磨成匀浆，4℃条件下12000r/min离心15min，上清液为粗酶液。然后在试管中加pH 7.0的磷酸缓冲液2 ml，愈创木酚（0.2%）0.5ml，浓度为0.15%的H2O2 0.5ml，取0.3ml的酶提取液加入到试管中，空白以缓冲液代替。在470nm下测定其吸光度，加入酶液时开始计时，每隔30s读数一次，连续记录5分钟。以每分钟每克鲜重增加0.1的酶量作为一个酶活性单位。 △470 ×V T POD活性= 0.01×t×Vs×W 式中：△470----反应时间内吸光度值的变化； V T ----提取酶液的总体积（ml） t----反应的时间（min） Vs ----测定时取用酶液体积（ml） W----样品鲜重（g） 二、多酚氧化酶（PPO）活性的测定 多酚氧化酶活性测定参照朱广廉等(1990)的方法，略加改动。 酶液制备：称取样品0.5g，加入5mL 0.1mol／L PH=6.0的磷酸缓冲溶液，冰浴研磨成浆，4℃条件下12000r/min离心15min后上清液即为粗酶液。 PPO活性测定：反应试管中分别加入0.1 mL酶液+3.9 mL磷酸缓冲液+ 1 mL 1m mol／L的邻苯二酚。混匀后于30℃保温10 min，迅速加入2 mL质量分数为20％的三氯乙酸终止反应，立即于525nm下测定其吸光度值，计算酶活。 PPO活性= O D×V T 0.01×t×0.5g×V s = O D×V T 0.005 OD——反应时间内吸光值的变化； V T ----提取酶液的总体积（ml） Vs ----测定时取用酶液体积（ml） T———反应时间(min)；

靛酚蓝光度法测定海水中的氨型氮

第19卷,第5期光　谱　实　验　室 V o l .19,N o .52002年9月 Ch inese J ou rnal of S p ectroscop y L aboratory Sep te m ber ,2002 靛酚蓝光度法测定海水中的氨型氮 ①联系人,电话:(0633)8786723(宅);E 2m ail :analysis w f @https://www.wendangku.net/doc/3716706808.html, 作者简介:王锋(1964—),男,山东省日照市人,日照职业技术学院讲师,从事分析化学教学与研究工作。收稿日期:2002202202 王　锋①　李玉环 (日照职业技术学院水产系　山东省日照市新市区烟台路南首　276826) 摘 要 研究了在碱性介质中,以丙酮为催化剂,氨氮与苯酚及次氯酸钠反应生成靛酚蓝的条件,靛酚蓝的最大吸收波长Κm ax =625nm ,Ε=119×104L ?mo l -1?c m -1,氨型氮含量在0—3Λg mL 范围内符合比耳定律,反应体系的灵敏度高,稳定性好,用于海水中痕量氨型氮的测定,结果令人满意。 关键词　靛酚蓝,光度法,海水,氨型氮。 中图分类号:O 657.32 文献标识码:B 文章编号:100428138(2002)0520631203 1　前言 氮的化合物是海洋生物所必须的重要的营养物质[1],其中氨型氮含量的高低,对海洋生物正常的生长、发育、繁殖具有重要意义。对于氨型氮的检测,比较经典的方法是奈氏试剂法[2],但加入奈氏试剂后,硫化物易使水体变浑浊,影响检测的灵敏度。另有离子色谱法[3,4]、毛细管电泳法[5]、离子选择性电极(ISE )[6]、靛酚蓝光度法[7]等。本文对靛酚蓝光度法[8,9]测定海水中的氨型氮进行了研究,并将分析结果应用于实际海水养殖业,收到良好的效果。 2　实验部分 2.1　仪器与试剂 721型分光光度计(上海第三分析仪器厂);754型分光光度计(上海第三分析仪器厂);Z D 22型 自动电位滴定仪(上海分析仪器厂);恒温磁力搅拌器;501超级恒温水浴锅。 5%ED TA 溶液; 酚钠溶液(126g L ):称取3115g 结晶苯酚溶解在5mL 异丙醇和10mL 丙酮中,并用异丙醇稀 释到50mL ,然后移取20mL 苯酚溶液与20mL 27%N a OH 溶液混合,用无氨蒸馏水定容至100mL ,装在有色瓶中于暗处保存; 次氯酸钠(N aC l O )贮备液(1%):量取40mL 无铵去离子水,加入10mL 5%的商品漂白液,用盐酸调pH 值至615—710;硫酸锰溶液(0.45g L ):准确称取50m g M nSO 4?H 2O 于适当蒸馏水中,并定容至100mL ;氨型氮贮备液(1m g mL ):准确称取31819g N H 4C l (预先在100℃下烘干2h )溶于适量无铵去离子水中,移入1000mL 的容量瓶中,并定容至刻度,配成 1m g mL 的氨型氮贮备液;

细菌脱氢酶活性的测定

细菌休止细胞的制备及其脱氢酶活性的测定 摘要休止细胞又叫静息细胞，在研究微生物生理生化及新陈代谢中应用广泛，这种细胞虽然处于休眠状态，不进行生长繁殖，但仍含有各种酶系，具有氧化和发酵能力，是测定细菌脱氢酶活性的良好材料。本实验用E.coli cVcc249菌株作为实验材料，制备其休止细胞，再加入四种同样浓度的TCA循环中的底物：乙酸钠、琥珀酸钠、α-酮戊二酸及柠檬酸钠，比较和分析在相同浓度、不同底物的情况下，细菌脱氢酶活性的大小；并对其中的α-酮戊二酸和柠檬酸钠两种底物配以浓度梯度，研究其分别与细菌脱氢酶活性之间的相互影响。在本次实验中，所采用的测定细菌脱氢酶活性的方法是噻唑盐还原法，噻唑盐宜与反应生成的还原氢反应生成水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒，可溶解于二甲亚砜中，再根据其颜色变化的深浅，用分光光度计测其OD510nm值，即可表示细菌脱氢酶的活性。 Abstract The resting cells, which are widely used in the study of microbial biochemistry and metabolism, are a kind of cells that are dormant ,not growth or reproduction. Those cells still contains a variety of enzymes as well as the capacity of oxidation and fermentation, thus make them good material of determining dehydrogenases activity. The experimental strain is E.coli cVcc249.Firstly,preparing the resting cells of the stain, then adding the four substates of TCA cycle with the same concentration, the four substates are: sodium acetate, sodium succinate, α-ketoglutaric acid and sodium citrate. These allow us to compare and analysis the bacterial dehydrogenase activity in those four same concentration substates. Secondly, making concentration gradient of α-ketoglutaric acid and sodium citrate perspectively, study their functions with bacterial dehydrogenase activity. In this experiment, we us the method of MTT reduction to determine the activity of dehydrogenase. The MTT can be reduced by the bacterial dehydrogenase, and the product is Formazan, which is a water-insoluble and blue-purple crystalline. We can solute Formazan in DMSO, then the samples were checked by measuring spectrophotometrically at 510 nm, which can represent the activity of bacterial dehydrogenase. 关键词休止细胞脱氢酶活性α-酮戊二酸柠檬酸钠噻唑盐

水中氨氮的测定方法及结果分析研究

水中氨氮的测定方法及结果分析研究 【摘要】本文通过对目前一些关于水中氨氮的测定方法进行讨论，并且对其结果进行相应的分析，综合得出水中氨氮的测定方法，给相关的从业人员一些参考。 【关键词】水中氨氮含量；测定方法；结果分析 水中氨氮指的是在水中以铵离子（NH+）或者是游离的氨（NH3）等形式存在的氨。这些水中的离子以化合物的形式存在于水中，其含量可以作为测定相关水体受到有关含氮有机物污染的重要指标。同时，当氨氮的含量比较高的时候，就会使水体中的生物如鱼类中毒。而且，此时对人体也会有或多或少的危害。对于水中氨氮的来源，主要是：（1）水中相关有机物的分解作用；（2）化工厂中的含氮废水排放；（3）农田中含氮化肥的流失。此外，水体之中的下硝酸盐类，在无氧的情况之下，也可以转化成氨氮化合物。水体中氨氮含量对于人类的生存有着非常大的影响。对于水中各种氨氮化合物的含量测定，对于评价水体的受污染程度以及水体的自我净化能力的评定有着非常积极的作用。下面简要地介绍几种测定氨氮的方法，同时对其进行相应的分析，从而得出一些结论。 1.电化学分析法 常用的电化学分析法有：吹脱电导法；氨气敏电极法；离子选择法；以下就这三种方法分别论述。 1.1吹脱电导法 在90摄氏度的温度之下，将水中的铵根离子变成游离的氨分子（即氨气）。在这之后，将水中的氨气使用硫酸吸收。由于洗手液的电导率的变化量和一定浓度范围之中氨氮的吹出量的多少成正比的关系，由于硫酸的吸收作用比较好，因此该方法的准确度以及精确度都比较好，同时其最低检出的浓度为0.1mg/L，因此比较适合对于含氨氮浓度比较低的水体中进行对氨氮浓度的测定。早前，已经有人通过此方法完成了对于氨氮在线自动分析仪的研制，其误差小，准确度高，实现了仪器的自动化检测。 1.2氨气敏电极法 氨气敏电极法的原理就是设置一个“化学电池”，其中一级为氨气敏电极构成的复合电极，以银-氯化银构成的参比电极，以PH玻璃电极作为指示的电极。将复合电极放置到程又0.1mg/L的氯化铵的塑料管之中，同时管的底部有只有按其能够通过的气敏膜。接着改变水中的PH值，使得水中的铵根离子变成氨气，这些氨气进入盛有液体的杆子中，和水发生生成铵根离子和氢氧根的反应。从而使管内液体PH值发生了变化，最后使得PH玻璃电极中的电位发生变化。通过其电位值的变化量可以间接得出水中所含氨氮的含量。对于这种方法，比较适合

靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度xz014

X X X J C/Z Y/X Z XXX建设工程质量检测有限公司 作业指导书 XXXJC/ZY/XZ-014 靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度 作业指导细则 2011-06-15批准2011-07-01实施

XXX建设工程质量检测有限公司作业指导书靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度 作业指导细则 XXXJC/ZY/XZ-014 编制单位：XXX建设工程质量检测有限公司环境检测室 批准部门：XXX建设工程质量检测有限公司 施行日期：2011年07月01日

关于执行《靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度细则》的通知 各科室： 根据XXX建设工程质量检测有限公司的要求，由XXX建设工程质量检测有限公司环境检测室修订的《靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度细则》，经审查，符合XXX建设工程质量检测有限公司《质量体系文件》编制的要求，现予以批准，编号为XXXJC/ZY/XZ-014，自2011年07月01日起施行。 本检验细则由XXX建设工程质量检测有限公司环境检测室负责具体解释。 XXX建设工程质量检测有限公司 2011年07月01日

XXX建设工程质量检测有限公司 靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度检测作业指导书目录 1.总则 2.检测环境 3.仪器设备与相关物质 4.标准曲线的绘制 5.检测细则 6.722S分光光度仪操作规程 7.QC-2大气采样器操作规程 8.人员与岗位责任制 9.安全规程 10.记录 （1）委托检测联系单 （2）空气采样记录 （3）分光光度法氨检测记录

靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度作业指导书 1.总则 1.1目的：为规范靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度方法编制本指导书。 1.2检测依据 （1）《民用建筑工程室内环境污染控制规范》GB50325-2010 （2）《公共场所空气中氨测定方法》GB/T18204.25-2000 1.3适用范围 本指导书适用于靛酚蓝分光光度法测定空气中氨浓度。 2.检测环境样品的检测在室内进行，气温宜室温、湿度气压不限。 3.仪器设备及有关物质 3.1大型气泡吸收管：有10ml刻度线，出气口内径为1mm，与管底距离为3-5mm。 3.2空气采样器：流量范围0-2L/min。流量稳定。 采样前后，用皂膜流量计校准采样系统的流量，误差应不小于±5%。 3.3具塞比色管：10ml。 3.4分光光度计：可测波长为697.5mm，狭缝<20mm，检定后使用每年检定一次。 3.5压力表检定后使用。 3.6本法所用的试剂为分析纯。水为无氨蒸馏水。 3.7吸收液[C（H2SO4）=5mol/L]：量取2.8ml浓硫酸加入水中，并稀释至1L，临时使用时再稀释10倍。