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谷胱甘肽的简便测定法

谷胱甘肽的简便测定法
谷胱甘肽的简便测定法

谷胱甘肽的简便测定法

药物分析杂志 2000年第1期第20卷研究简报

作者:赵旭东魏东芝万群俞俊棠单位:赵旭东魏东芝万群俞俊棠(华东理工大学生物反应器工

程国家重点实验室上海200237)

关键词:谷胱甘肽、甲醛、半胱氨酸、DTNB 摘要:目的:建立一种快速简便测定谷胱甘肽的新方法。方法:样品1式2份,pH 8.0条件下分别和甲醛反应2 min和60 min,各取1 mL加入5 mL DTNB溶液,25 ℃反应5 min后分别测定在波长412 nm的吸光度,算出2者的差值ΔA,代入标准曲线计算得出谷胱甘肽含量。结果:谷胱甘肽浓度在0.19~0.95 g·L-1之间线性关系良好,回归方程为:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,最大误差不超过6%。结论:方法成本低廉,简单易行,特别适合于有干扰物质存在时还原型谷胱甘肽浓度的分析。

A Simple Method for Rapid Determination of Reduced

Glutathione

Zhao Xudong Wei Dongzhi Wan Qun Yu Juntang (State Key Laboratory of Bioreactor Engineering, Institute of Biochemistry,

East China University of Science and Technology, Shanghai 200237)

Abstract:Objective:A new simple method for rapid determination of reduced glutathione in the presence of other thiols is developed based on the reactions of formaldehyde with glutathione and interefering substances.Method:After each aliquot of two same samples reacts with formaldehyde for 2 and 60 min respectively, 1 mL of each solution is added to 5 mL DTNB and reacts for 5 min at 25 ℃. The absorbance is measured immediately at wavelength 412 nm. The difference between two absorbance(ΔA=A2 min-A60 min)is calculated, concentration of glutathione can be obtained from standard curve.Result:There is a good linearity between 0.19 to 0.95 g·L-1 glutathione. Regression equation:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,maximum deviation is less than 6%.Conclusion:The method is cheap, simple, practicable and is applicable to assay of reduced glutathione in the presence of other interefering substances.

Key words:glutathione, formaldehyde, cysteine, DTNB▲

谷胱甘肽(GSH)是由谷氨酸、半胱氨酸(Cys)和甘氨酸组成的天然三肽,用途广泛。利用基因工程微生物生物合成方法是生产谷胱甘肽的主要方式。作为前体之一,半胱氨酸的浓度较高,对谷胱甘肽的测定有干扰。已有几种方法用于半胱氨酸存在时谷胱甘肽的测定:酶分析方法[1,2]可测高达1 000倍半胱氨酸存在时谷胱甘肽的含量,结果较准确,但需价格昂贵的辅酶Ⅱ和谷胱甘肽还原酶,并且后者活力变

化严重影响测量结果;色谱法[3,4]冗长费时;Jocelyn[5]采用将样品在硫酸中煮沸1 h的方法,不太安全;Wronski[6,7]方法效果较好,但需用对羟基汞苯甲酸和萤光黄;荧光法[8]容易受干扰,误差较大;乙二醛酶法[9]需要复杂的技术和设备。针对上述方法的不足,本文在研究甲醛同谷胱甘肽和常见含巯基物质反应特点的基础上结合巯

基的测定方法[10,11]提出一种简单,快速的新方法,应用于生物合成反应溶液中谷胱甘肽含量的分析取得满意结果。

1 仪器和试剂

752紫外光栅分光光度计(上海第三分析仪器厂),恒温水浴槽(上海医疗器械五厂)。

GSH,Gys,为生化试剂;3%甲醛溶液由分析纯试剂加水配制,用NaOH调节pH为8.0;0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液由生化试剂配制;0.01 mol·L-1DTNB[5,5’-二硫代双(2-硝基苯甲酸)]溶液由生化试剂加0.05 mol·L-1 pH 7.0的磷酸缓冲液配制,存于棕色瓶中,放于低温暗处备用;DTNB分析溶液由1体积0.01 mol·L-1DTNB 溶液加100体积0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液配制而成,现用现配;其它试剂为分析纯;所用水为去离子水。

2 分析方法

待分析样品(Cys含量不大于20 mmol·L-1,GSH浓度小于0.9 g·L-1)1 mL 2份,每份加入0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液3 mL,摇匀,再加入3%甲醛1 mL,摇匀,室温下分别准确静置2 min 和60 min后,立刻取1 mL加入预先恒温于25 ℃水浴中的DTNB分

析溶液5 mL,摇匀,准确静置5 min后,立刻在波长412 nm处测定吸光度A,算出2者的A值之差ΔA,代入回归方程计算相应谷胱甘肽浓度,最大误差不超过6%。

3 结果

3.1 显色溶液的稳定性准确称取GSH溶于pH 6.5去离子水配成0.48 g·L-1的标准溶液,取1 mL按上述方法分析,已知室温为26 ℃,5 mL DTNB溶液预先恒温于25 ℃水浴中,分别加入已与甲醛反应2 min 和60 min的样品溶液1 mL后迅速摇匀,以此刻作为反应开始,于不同时间测定吸光度,见表1。可知反应开始1.5 min到10 min之间显色溶液保持稳定,考虑到因季节不同,与甲醛反应后的样品溶液温度变化,1 mL该溶液加入5 mL预先恒温于25 ℃水浴中的DTNB溶液后需1~3 min才能恢复到25 ℃,选择5 min为反应时间。

表1 显色溶液在不同反应时间的吸光度

3.2 标准曲线的制作谷胱甘肽含有疏基,按照疏基的测定方法[11,12]可求出GSH的含量。准确称取GSH溶于pH 6.5去离子水配成0.95 g·L-1的标准溶液,分别取该溶液0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL,相应加入0.8,0.6,0.4,0.2,0 mL pH 6.5的去离子水,用水代替甲醛作为对照。按分析方法与甲醛反应2 min和60 min后测定结果见表2。以Y为纵坐标,表示GSH(g·L-1)浓度,以X为横坐标,表示ΔA,用最小二乘法计算得回归方程和相关系数为:

Y=0.715 4X-0.000 4 r=0.999 9

说明线性关系良好。

表2 GSH浓度(g·L-1)与ΔA之间的关系

3.3 甲醛同Cys和GSH的反应速度配制浓度为0.95 g·L-1的GSH标准溶液和2.6 g·L-1的Cys标准溶液,按分析方法分别与甲醛反应不同时间后测量A值,用水代替甲醛作为对照。结果表明(表3):室温下pH 8.0时,和甲醛反应2 min后,98.94%的Cys被掩蔽,而GSH只有3.08%;反应1 h后,97.56%的GSH也被掩蔽,由此可知,甲醛同半胱氨酸的反应更快。利用这种反应速度的差异,可以分别测定Cys和GSH的浓度;由此启发研究其他含疏基物质与甲醛的反应特性。

表3 甲醛同Cys和GSH的反应速度

3.4 多种含疏基物质共存时GSH含量分析生物合成GSH溶液中含有细胞泄漏物如辅酶A、蛋白质等含疏基物质,提取时还用到疏基乙醇和NaHSO3还原氧化型GSH这些物质干扰GSH的分析。进一步研究甲醛同这些物质的反应性质如表4所示。

表4 各种含疏基物质同甲醛的反应性质及对GSH测定的影响

a.这2种酶含有巯基,用来说明甲醛同蛋白质巯基的反应性质

b.生物合成GSH的反应系统含有固定化酵母和E.coli细胞,溶液中有这2种细胞的泄漏物如蛋白质、辅酶等含巯基物质,分析这2个样品是为了检验这些含巯基物质对GSH测定的影响

c.二硫苏糖醇与巯基乙醇和NaHSO3不同,因为和甲醛反应使它的A值减小许多,给分析带来麻烦;还原反应溶液中的氧化型GSH时只采用巯基乙醇和NaHSO3表4结果表明,除二硫苏糖醇外,与甲醛反应的常见含巯基物质基本上可分为4种,第1种和甲醛反应2 min 后,几乎完全被掩蔽,如半胱氨酸;第2种和甲醛反应的时间越长,被掩蔽的越多,以致最后被掩蔽,如谷胱甘肽、酵母和E.coli细胞裂解液中的未知成分;第3种与甲醛的反应在2 min时就已完成,部分被掩蔽,2 min和60 min时的A值几乎一样,如NaHSO3和木瓜蛋白酶;第4种是基本上不与甲醛反应,如巯基乙醇和半乳糖苷酶。通过求取和甲醛反应2 min和60 min时的A值之差,可将第1、第3、第4种物质的干扰消除;第2种含巯基物质共存时,可设立不含GSH 的溶液作为对照来消除干扰,如在测量生物合成反应溶液中的GSH浓度时,以不加GSH前体的溶液作为对照。总之,无论哪一种干扰物质和GSH共存,采用本文的分析方法都可以测定GSH含量。各种样品按照分析方法测定的GSH含量如表5所示,每种样品测定之前用水补加至体积为1 mL,表中数据为2次分析的平均值。

表5 各种样品的GSH含量分析结果

g·L-1g·L-1

加入量之比

/%

1 样品1+样

品2 0.190

0.280±

0.004

0.016±

0.004

0.264 0.188 98.95

2 样品1+样

品3+0.2 mL样品5 0.190

0.795±

0.012

0.533±

0.017

0.262 0.187 98.42

3 样品1+0.2

mL样品5+0.2 mL样品6 0.190

0.308±

0.008

0.056±

0.014

0.252 0.180 94.74

4 样品1+样

品8a 0.190

0.440±

0.029

0.130±

0.011

0.254a0.181 95.26

5 样品2+0.3

mL样品8+0.3 mL样品9a 0.000

0.099±

0.010

0.071±

0.009

0.028

6 样品1+样品2+0.3 mL样

品8+0.3 mL样品9 0.190

0.382±

0.035

0.095±

0.013

0.259a0.185 97.37

注:样品编号见表4

a.分析样品6必须设立对照,即样品5,原因见文中解释;计算样品6的GSH含量时,应采用样品6的ΔA与样品5的ΔA之差0.280。分析样品4时以表4中样品8为对照由表5可知,直接将样品的ΔΑ代入回归方程得到的测量结果误差最大不超过6%,一般小于5%,可以满足分析要求。

4 讨论

4.1 本文提出了一种成本小,简单、快速测定干扰物质共存时还原型GSH浓度的新方法,较适合于GSH含量介于0.19~0.95 g·L-1的样品分析,这时相对误差较小,如生物合成反应溶液中的GSH浓度测量,一般情况下90 min可以完成分析过程,得到实验结果,误差最大不超过6%,符合生物合成GSH时的分析要求。采用更高浓度的甲醛可以缩短反应时间和测量浓度更高的样品,此时应注意设立新的标准曲线。

4.2 二硫苏糖醇非常容易氧化,对GSH测定干扰较大,本方法不适于二硫苏糖醇共存时GSH的分析测定。

4.3 与甲醛反应性质为第1种的物质其浓度不应大于表3中的数据,如Cys浓度应小于20 mmol·L-1。

4.4 不能使用磷酸缓冲液,因为容易和DTNB溶液发生颜色反应干扰分析。

4.5 颜色反应必须在25 ℃完成,甲醛不改变最后的A值但会稍微延长颜色反应完成的时间,将分析样品放于25 ℃水浴中5 min 足够达到要求。

4.6 测定含疏基物质如辅酶A、蛋白质等含量较高的溶液中的GSH浓度时,最好先减少这些物质并作对照。

4.7 氧化型GSH还原以后才能使用本分析方法测定。■

植物生理学实验课程

《植物生理学实验》课程大纲 一、课程概述 课程名称(中文):植物生理学实验 (英文):Plant Physiology Experiments 课程编号:18241054 课程学分:0.8 课程总学时:24 课程性质:专业基础课 前修课程:植物学、生物化学、植物生理学 二、课程内容简介 植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课,是学习相关后续课程的必要前提,也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识的理解。掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。实验内容上和农业生产实践相结合,加强学生服务三农的能力。实验手段和方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合,提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。 三、实验目标与要求 植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能,包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解,而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。 要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论,明确实验目的、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现的现象和结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告。 四、学时分配 植物生理学实验课学时分配 实验项目名称学时实验类别备注 植物组织水势的测定3学时验证性 叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性 植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性 植物呼吸强度的测定3学时设计性 红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修 植物生长物质生理效应的测定3学时验证性 植物种子生活力的快速测定3学时验证性

谷胱甘肽简介

谷胱甘肽 1.定义 谷胱甘肽(glutathione GSH)CAS号:70-18-8。谷胱甘肽是一种存在于自然界中的氨基酸复合物,由谷氨酸、半胱氨酸、甘氨酸等三种氨基酸组合而成的寡肽。谷胱甘肽在体内以两种形态存在,即还原型谷胱甘肽和氧化型谷胱甘肽(oxidized glutathione,简称GSSG)。通常人们所指的谷胱甘肽是还原型谷胱甘肽。还原型谷胱甘肽很容易被氧化,两分子谷胱甘肽的活泼巯基氧化脱氢后以二硫键相连得到的二聚体,即是氧化型谷胱甘肽。其中只有还原型谷胱甘肽才具有生理活性,而生物体内的氧化型谷胱甘肽需经还原后才能发挥生理功能。 2.结构和理化性质 谷胱甘肽是一种白色晶体,化学名为γ-L-谷氨酰-L-半胱氨酰-甘氨酸,其结构如图1所示。相对分子质量为307.33,熔点是192~195 °C (分解),等电点为5.93。比旋光度[α]D20为+17.60°(C=0.05,H2O),易溶于水、稀醇、液氨和二甲基甲酰氨,不溶于乙醚和丙酮。谷胱甘肽固体较为稳定,而水溶液在空气中易被氧化,谷胱甘肽在高水分活度下不易保存,只有将水分活度控制在0.3以下才能长期稳定保存。 3.生理功能

谷胱甘肽是细胞内存在最丰富的小分子硫醇类化合物,其分子中含有一个特异的γ-肽键,由谷氨酸的γ-羧基与半胱氨酸的α-氨基缩合而成,并且半胱氨酸侧链基团上连有一个活泼巯基,是谷胱甘肽许多重要生理功能的结构基础。 3.1抗氧化作用 还原型谷胱甘肽结构中含有一个活泼的巯基—SH,易被氧化脱氢。它在体内能够保护许多蛋白质和酶等分子中的巯基不被如自由基等有害物质氧化,让蛋白质和酶等分子发挥其生理功能。同时清除自由基。 机体内新陈代谢产生的许多自由基会损伤细胞膜,毁坏免疫系统,侵袭生命大分子,促进机体衰老,并诱发肿瘤或动脉粥样硬化的产生。由此,谷胱甘肽具有抗衰老和强化免疫系统等作用。 3.2整合解毒作用 谷胱甘肽半胱氨酸上的巯基为其活性基团(故谷胱甘肽常简写为G-SH),易与碘乙酸、芥子气(一种毒气)、铅、汞、砷等重金属盐或致癌物质等相结合,并促进其排出体外,起到中和解毒作用。4. 应用 4.1 谷胱甘肽在临床上的应用 谷胱甘肽在临床上有广泛的作用,对细胞有保护作用,可防止红细胞溶血,从而减少高铁血红蛋白的损失;抑制脂肪肝的形成,改善中毒性肝炎和感染性肝炎的症状;对丙烯腈、氟化物、一氧化碳、有机溶剂、重金属等中毒具有解毒作用;对缺氧血症的不适、恶心、呕

GSH含量的测定.doc

主要目的: ——测定物质还原性谷胱甘肽(GSH)的含量。 主要原理: 参照 GSH检测分析试剂盒说明书, 5,5 ’–二硫代–双–(2–硝基苯甲酸)能和 谷胱甘肽(GSH)反应产生 2–硝基– 5–巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物( GSSG), 由于 2–硝基– 5–巯基苯甲酸是一黄色产物,通过测定其在412 nm处的最大吸 收可确定样品中谷胱甘肽的含量用纯化的谷胱甘肽(GSH)抗体包被微孔板,制 成固相抗体,往包被单抗的微孔中加入谷胱甘肽(GSH),再与HRP标记的谷胱甘 肽( GSH)抗体结合,形成抗体 - 抗原 - 酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物 TMB显色。 TMB在 HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的谷胱甘肽(GSH)呈正相关。用酶标仪在412 nm波长下测定吸光度( OD值),通过标准曲线计算样品中谷胱甘肽(GSH)的含量。

实验室签章

一、试剂 ——谷还原性胱甘肽( GSH)测定试剂盒(南京建成生物研究所) 二、仪器设备 —— 96 孔酶标板 —— UV-Vis 可见多功能酶标 仪——旋涡混匀器——离心机 ——移液枪及其相应量程枪头

三、实验方法 根据试剂盒说明书具体操作步骤如下: 1.上清液的制备:取稀释后的血清或组织匀浆液 mL,加试剂一应用液 2 mL 混匀, 4000 rpm 离心 10 分钟,取上清液 1 mL 进行显色反应。 2.显色反应:空白管中加入 1 mL 试剂一,标准管加入 20μmol/LGSH标准 液 1 mL,测定管加入上步骤得到的上清液 1 mL,然后各管中分别加入mL 试剂 二、试剂三、 mL 试剂四。 3.混匀,室温静置 5 分钟后,在 412 nm处将酶标板空板进行扫描,准确吸 取 mL 各管反应液加入到新的 96 孔板中,酶标仪测定各孔吸光度( OD值)。 4.血清中 GSH含量计算公式 GSH含量( mg/L) 测定 OD值 -空白 OD 值 -3 mmol/L) ×标准品浓度( 20×10 标准 OD值-空白 OD值 ×GSH分子量( 307)×样本测试前稀释倍数 组织中 GSH含量公式 测定OD值-空白OD值 -3 GSH含量(mg/gprot )×标准品浓度(20×10 mmol/L) ×GSH分子量( 307)×样本测试前稀释倍数÷待测组织匀浆液蛋白浓度 (gprot/L ) 参考文献 Lapshina E A, Sudnikovich E J, Maksimchik J Z, et al. Antioxidative enzyme and glutathione S-transferase activities in diabetic rats exposed to long-term ASA treatment [J]. Life sciences, 2006, 79(19): 1804-1811.

阿拓莫兰(注射用还原型谷胱甘肽)

阿拓莫兰(注射用还原型谷胱甘肽) 【药品名称】 商品名称:阿拓莫兰 通用名称:注射用还原型谷胱甘肽 英文名称:Reduced Glutathione for Injection 【成份】 主要成分:还原型谷胱甘肽,化学名:N(N-L-r谷氨酰基-L—半胱氨酰基)甘氨酸 【适应症】 用于:①化疗患者:包括用顺氯铵铂、环磷酰胺、阿霉素、红比霉素、博来霉素化疗,尤其是大剂量化疗时;②放射治疗患者;③各种低氧血症:如急性贫血,成人呼吸窘迫综合症,败血症等;④肝脏疾病:包括病毒性、药物毒性、酒精毒性及其它化学物质毒性引起的肝脏损害。⑤亦可用于有机磷、胺基或硝基化合物中毒的辅助治疗。 【用法用量】 1.给药途径①静脉注射:将之溶解于注射用水后,加入100ml生理盐水中静脉滴注,或加入少于20ml的生理盐水中缓慢静脉注射;②肌肉注射给药:将之溶解于注射用水后肌肉注射。2.用量:①化疗患者:给化疗药物前15分钟内将1.5g/m2本品溶解于100ml生理盐水中,于15分钟内静脉输注,第2~5天每天肌注本品600mg。使用环磷酰胺(CTX)时,为预防泌尿系统损害,建议在CTX 注射完后立即静脉注射本品,于15分钟内输注完毕;用顺氯铵铂化疗时,建议本品的用量不宜超过35mg/mg顺氯铵铂,以免影响化疗效果。②肝脏疾病:每天肌肉注射本品300 mg或600mg。③其它疾病:如低氧血症,可将1.5g/m2 本品溶解于100ml生理盐水中静脉输注,病情好转后每天肌肉注射300~600mg维持。3.疗程:肝脏疾病一般30天为一疗程,其它情况根据病情决定。

【不良反应】 偶见脸色苍白,血压下降,脉博异常等类过敏症状,应停药。偶见皮疹等过敏症状,应停药。偶有食欲不振、恶心、呕吐、胃痛等消化道症状,停药后消失。注射局部轻度疼痛。【禁忌】 对本品过敏者禁用。 【注意事项】 ①在医生的监护下,在医院内使用本品。②注射前必须完全溶解,外观澄清、无色;溶解后的本品在室温下可保存2小时,0~5 ℃保存8小时。③放在儿童不易触及的地方。【特殊人群用药】 儿童注意事项: 新生儿、早产儿、婴儿和儿童应谨慎用药,尤其是肌内注射。 妊娠与哺乳期注意事项: 老人注意事项: 老年患者应适当减少用药剂量。并在用药过程中严密监视。 【药物相互作用】 本品不得与维生素B12、甲萘醌、泛酸钙、乳清酸、抗组胺制剂、磺胺药及四环素等混合使用。 【药理作用】 还原型谷胱甘肽(GSH)是人类细胞质中自然合成的一种肽,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成,含有巯基(-SH),广泛分布于机体各器官内,为维持细胞生物功能已呈有重要作用。它是甘油醛磷酸脱氢酶的辅基,又是乙二醛酶及丙糖脱氢酶的辅酶,参与体内三羧酸循环及糖代谢。本品能激活多种酶[如巯基(-SH)酶等],从而促进糖、脂肪及蛋白质代谢,并

植物生理生化测定

2.1.8转基因植株在盐胁迫下的超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 将转基因植株与非转基因对照植株继代于含有0.5% NaCl的MS固体培养上进行胁迫培养,培养条件为27±1℃,每天13 h、3000 lux光照。胁迫培养4 w后,取其叶片测定其SOD 活性,每个样品设3次重复,求其平均数,并进行多重比较。 2.1.8.1主要试剂及配方 (1)0.1 mol/l pH 7.8磷酸钠(Na2HPO4-NaH2PO4)缓冲液 A液(0.1 mol/l Na2HPO4溶液):称取Na2HPO4·12H2O 7.163 g,用少量蒸馏水溶解后定容至200 ml,4℃冰箱中保存备用; B液(0.1 mol/l NaH2PO4溶液):称取NaH2PO4·2H2O 0.780 g,用少量蒸馏水溶解后定容至50 ml,4℃冰箱中保存备用; 取上述A液183 ml与B液17ml充分混匀后即为0.1 mol/l pH 7.8的磷酸钠缓冲液,4℃冰箱中保存备用。 (2)0.026 mol/l甲硫氨酸(Met)磷酸钠缓冲液 称取甲硫氨酸(C5H11NO2S)0.388 g,用少量0.1 mol/l pH 7.8的磷酸钠缓冲液溶解后,再用相同磷酸钠缓冲液定容至100 ml,现用现配,4℃冰箱中保存可用1~2 d。 (3)7.5 × 10-4 mol/l NBT溶液 称取NBT(C40H30Cl2N10O6)0.153 g,用少量蒸馏水溶解后,定容至250 ml,现用现配,4℃冰箱中保存可用2~3 d。 (4)含1.0 μmol/l EDTA的20 μmol/l核黄素溶液 A液:称取EDTA 0.003 g,用少量蒸馏水溶解; B液:称取核黄素0.075 g,用少量蒸馏水溶解; C液:合并A液和B液,定容至100 ml,此溶液即为含0.1 mmol/l EDTA的2 mmol/l 核黄素溶液,避光保存(可用黑纸将装有该液的棕色瓶包好),4℃冰箱中可保存8~10 d,当测定SOD酶活时,将C液稀释100倍,即为含1.0 μmol/l EDTA的20 μmol/l核黄素溶液。 (5)含2% PVP的0.05 mol/l pH7.8磷酸钠缓冲液 取0.1 mol/l pH7.8的磷酸钠缓冲液50 ml,加入2 g PVP(聚乙烯吡咯烷酮),充分溶解后移入100 ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度,充分混匀,4℃冰箱中保存备用。 2.1.8.2提取及测定方法 (1)称取1.0 g样品叶片于预冷的研钵中,加入4 ml预冷的提取介质(含2% PVP的0.05 mol/l pH7.8磷酸钠缓冲液),冰浴研磨匀浆,转入10 ml离心管,并用提取介质定容至

注射用还原型谷胱甘肽说明书

注射用还原型谷胱甘肽 以下内容仅供参考,请以药品包装盒中的说明书为准。 妊娠:在医疗监护下使用 儿童:新生儿、早产儿、婴儿和儿童应谨慎用药,尤其是肌内注射 注射用还原型谷胱甘肽说明书 【说明书修订日期】 核准日期:2007年01月30日 修改日期:2013年01月04日 【药品名称】 注射用还原型谷胱甘肽 【英文名】 Reduced Glutathione for Injection 【汉语拼音】 Zhusheyong Huanyuanxing Guguanggantai 【成份】

本品主要成份:还原型谷胱甘肽 化学名称:N-(N-L-γ-谷氨酰基-L-半胱氨酰基)甘氨酸 辅料:氢氧化钠 【性状】 本品为白色多孔的块状物或粉末。 【适应症】 ①化疗患者:包括用顺氯铵铂、环磷酰胺、阿霉素、红比霉素、博来霉素化疗,尤其是大剂量化疗时;②放射治疗患者; ③各种低氧血症:如急性贫血,成人呼吸窘迫综合症,败血症等;④肝脏疾病:包括病毒性、药物毒性、酒精毒性(包括酒精性脂肪肝、酒精性肝纤维化、酒精性肝硬化、急性酒精性肝炎)及其他化学物质毒性引起的肝脏损害;⑤亦可用于有机磷、胺基或硝基化合物中毒的辅助治疗;⑥解药物毒性(如肿瘤化疗药物,抗结核药物,精神神经科药物,抗抑郁药物,扑热息痛等)。 【规格】 0.3g、0.6g、0.9g、1.0g、1.2g、1.5g、1.8g、2.0g 【用法用量】

1.给药途径:①静脉注射:将之溶解于注射用水后,加入100ml、250~500ml生理盐水或5%葡萄糖注射液中静脉滴注。 ②肌内注射给药:将之溶解于注射用水后肌内注射。 2.用量:①化疗患者:给化疗药物前15分钟内将1.5g/m2本品溶解于100ml生理盐水中,于15分钟内静脉输注,第2~5天每天肌注本品0.6g。使用环磷酰胺(CTX)时,为预防泌尿系统损害,建议在CTX注射完后立即静脉注射本品,于15分钟内输注完毕;用顺氯铵铂化疗时,建议本品的用量不宜超过35mg/mg顺氯铵铂,以免影响化疗效果。②肝脏疾病的辅助治疗。对于病毒性肝炎,1.2g,qd,iv,30天;重症肝炎:1.2-2.4g,qd,iv,30天;活动性肝硬化:1.2g,qd,iv,30天;脂肪肝:1.8g,qd,iv,30天;酒精性肝炎:1.8g,qd,iv,14-30天;药物性肝炎:1.2-1.8g,qd,iv,14-30天;滴注时间为1~2小时。③用于放疗辅助用药,照射后给药,剂量1.5g/ m2,或遵医嘱。④其他疾病:如低氧血症,可将1.5g/m2本品溶解于100ml生理盐水中静脉输注,病情好转后每天肌内注射0.3~0.6g维持。 3.疗程:肝脏疾病一般30天为一疗程,其他情况根据病情决定。 【不良反应】

植物生理生化指标测定

小黑豆相关生理指标测定 1.表型变化:鲜重、株高、主根长和叶面积 鲜重:取处理好的植株,擦干根和叶表面水分,测量整株植物的重量,每个测6个重复。 株高:取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到植株最高点的高度,记录,每个测6个重复。 主根长:取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到主根最远点长度,记录,每个测6个重复。 叶面积:取处理好的植株,选择第二节段的叶片,测量叶面积,叶面积测量方法是测每个叶片最宽处长度作为叶的长,测叶片最窄处长度作为叶的宽,叶片长和宽的乘积即为叶表面积。每个测6个重复。 2.总蛋白、可溶性糖、丙二醛(MDA)和H2O2含量测定 样品处理:取0.5g样品(叶片要去除叶脉、根要先用清水清洗干净),速在液氮中冻存,在遇冷的研钵中加液氮研磨,然后加入1.5ml的Tris-HCl(pH7.4)抽提,将抽提液转移到2ml的EP管中,于4℃,12000rpm离心15min,取上清,保存在-20℃下,上清液可用于总蛋白、丙二醛(MDA)、可溶性糖和H2O2含量测定。 总蛋白测定(Bradford法):样品反应体系(800ul H2O+200ul Bradford+5ul 样品),空白对照为(800ul H2O+200ul Bradford)。测定后带入标准曲线Y=32.549X-0.224(Y代表蛋白含量,X代表OD595),计算得出蛋白含量。 可溶性糖测定:样品反应体系(1ml蒽酮+180ul ddH2O+20ul样品提取液);空白对照(1ml蒽酮+180ul ddH2O),测定OD625后带入标准曲线:Y=0.0345X+0.0204(Y代表OD625,X代表可溶性糖含量(ug)) 蒽酮配方:称取100mg蒽酮溶于100ml稀硫酸(76ml浓硫酸+30mlH2O).注意:浓硫酸加入水中时,一点一点递加,小心溅出受伤。 丙二醛(MDA)测定:在酸性和高温条件下,丙二醛可与硫代巴比妥(TBA)反应生成红棕色的3,5,5-三甲基恶唑2,4-二酮,在532nm处有最大吸收波长,但该反应受可溶性糖的极大干扰,糖与TBA的反应产物在532nm处也有吸收,但其最大吸收波长在450nm处。采用双组分分光光度法,可计算出MDA含量。MDA的计算公式为:MDA(umol/L)=6.45OD532-0.56OD450. 反应体系为:400ul 0.6%TBA+350ul H2O+50ul样品,80℃水浴10min后,测OD532和OD450。对照用Tris-HCl. 0.6%TBA配方:称取硫代巴比妥0.6g,溶于少量1M NaOH中,待其完全溶解后用10%TCA(称取10gTCA三氯乙酸,溶于100ml蒸馏水中,待其溶解即可)定容至100ml。 H2O2测定(二甲酚橙法):样品反应体系(82ul溶液A+820ul溶液B (A:B=1:10)+150ul样品提取液),30℃水浴30min,测OD560。标准曲线为:Y=0.01734X-0.0555(Y代表OD560,X代表H2O2含量)

谷胱甘肽含量测定

【实验目的】 了解植物组中中抗坏血酸-谷胱甘肽循环代谢过程,学习还原型谷胱甘肽含量的测定原理和方法。 【实验原理】 谷胱甘肽是有谷氨酸(Glu)、半胱氨酸(Gly)组成的天然三肽,是一种含巯基(—SH)的化合物,广泛存在于动物组织、植物组织、微生物和酵母中。谷胱甘肽能和5,5’-二硫代-双-(2-硝基苯甲酸)(5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反应产生2-硝基-5-巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物(GSSG)。2-硝基-5-巯基苯甲酸为一黄色产物,在波长412nm处具有最大光吸收。因此,利用分光光度计法可测定样品中谷胱甘肽的含量。 【器材与试剂】 1.实验仪器与用具 研钵、高速离心机、移液管、离心管、试管、分光光度计 2.实验试剂 还原型谷胱甘肽标准液;偏磷酸溶液;磷酸溶液缓冲液(pH7);二硫代硝基苯甲酸(5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)溶液;蒸馏水。 3.实验材料 小麦叶片 【实验步骤】 1.标准曲线制作 取7支试管,编号,按照下表加入各种试剂,混匀,25℃保温反应10min。以1号管为参比调零,测定显色液在412nm处的吸光度。以吸光度为纵坐标,还原型谷胱甘肽物质的量(μmol)为横坐标,绘制标准曲线。 试管号 试剂(ml) 1 2 3 4 5 6 7 10μg/ml GSH标准液0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

蒸馏水 2.0 1.9 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0 pH7磷酸缓冲液 4.0 4.0 4.0 4.0 4.0 4.0 4.0 DTNB试剂0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 GSH浓度μg/2ml 0 1 2 4 6 8 10 2.提取 取材后,称取0.2g样品置于研钵中,加入少量5%偏磷酸研磨成匀浆后,定容至6ml, 8000转离心10min。收集上清液来测定谷胱甘肽含量,测量提取液体积。 3.测定 取上清液2ml,显色,操作同标准曲线。重复3次。 显色反应后,分别记录样品管混合液的吸光度和空白对照管反应混合液的吸光度。根据吸光度差值,从标准曲线上查出相应的还原型谷胱甘肽量,计算还原型谷胱甘肽含量(μmol/g)。 4.计算 GSH含量(μmol/g)=(C x×V t)/ (FW×V S) 式中,C x为2ml样品中GSH的含量(μg);V t为样品提取液总体积(ml);V s为显色时样品液体积(ml);FW为样品质量(g)。 【实验结果】 1.标准曲线 试管编号 1 2 3 4 5 6 7 GSH浓度(μg/2ml)0 1 2 4 6 8 10 吸光度值A 0 0.067 0.134 0.314 0.452 0.579 0.723 以GSH浓度(μg/2ml)为横坐标,吸光度值为纵坐标,建立标准曲线。

GSH注射用还原型谷胱甘肽说明书

注射用还原型谷胱甘肽说明书 【药品名称】 通用名:还原型谷胱甘肽 商品名: 英文名:Reduced glutathione for Injection 汉语拼音:Zhusheyong Huanyuanxing Guguanggantai 其主要成份为还原型谷胱甘肽 其结构式为: 分子式:C10H18O6N3S 分子量:308.33 【性状】 【药理毒理】 还原型谷胱甘肽(GSH)是人类细胞质中自然合成的一种肽,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成,含有巯基(-SH),广泛分布于机体各器官内,为维持细胞生物功能已呈有重要作用。它是甘油醛磷酸脱氢酶的辅基,又是乙二醛酶及丙糖脱氢酶的辅酶,参与体内三羧酸循环及糖代谢。本品能激活多种酶[如巯基(-SH)酶等],从而促进糖、脂肪及蛋白质代谢,并能影响细胞的代谢过程;它可通过巯基与体内的自由基结合,可以转化成容易代谢的酸类物质从而加速自由基的排泄,有助于减轻化疗、放疗的毒副作用,对化疗、放疗的疗效无明显影响,如保护肾小管免受顺铂损害的主要机制为肾小管细胞内含谷胱肽解毒时所需的r-谷酰氨转肽酶,而痛细胞却无此酶,故在不影响本品的细胞毒效应同时保护了,正常组织但器官。且对放射性肠炎治疗效果较明显;对于贫血、中毒或组织炎症造成的全身或局部低氧血症患者应用,可减轻组织损伤,促进修复。通过转甲基及转丙氨基反应,GSH还能保护肝脏的合成、解毒、灭活激素等功能,并促进胆酸代谢,有利于消化道吸收脂肪及脂溶性维生素(A、D、E、K)。 【药代动力学】 小鼠肝注约5小时达血浓峰位,t1/2约24小时,在肝、肾、肌肉分布最多。 【适应症】 用于: ①化疗患者:包括用顺氯铵铂、环磷酰胺、阿霉素、红比霉素、博来霉素化疗,尤其是大剂量化疗时;

植物生理生化指标测定(精)

小黑豆相关生理指标测定 1. 表型变化:鲜重、株高、主根长和叶面积 鲜重 :取处理好的植株,擦干根和叶表面水分,测量整株植物的重量,每个测 6个重复。 株高 :取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到植株最高点的高度,记录,每个测6个重复。 主根长 :取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到主根最远点长度,记录,每个测6个重复。 叶面积 :取处理好的植株,选择第二节段的叶片,测量叶面积,叶面积测量方法是测每个叶片最宽处长度作为叶的长, 测叶片最窄处长度作为叶的宽, 叶片长和宽的乘积即为叶表面积。每个测 6个重复。 2. 总蛋白、可溶性糖、丙二醛(MDA 和 H2O2含量测定 样品处理:取 0.5g 样品(叶片要去除叶脉、根要先用清水清洗干净 ,速在液氮中冻存,在遇冷的研钵中加液氮研磨,然后加入 1.5ml 的 Tris-HCl (pH7.4 抽提, 将抽提液转移到 2ml 的 EP 管中, 于 4℃, 12000rpm 离心 15min , 取上清, 保存在 -20℃下,上清液可用于总蛋白、丙二醛(MDA 、可溶性糖和 H2O2含量测定。 总蛋白测定(Bradford 法 :样品反应体系(800ul H2O+200ul Bradford+5ul样品 , 空白对照为(800ul H2O+200ul Bradford 。测定后带入标准曲线 Y=32.549X-0.224(Y代表蛋白含量, X 代表 OD595 ,计算得出蛋白含量。 可溶性糖测定:样品反应体系(1ml 蒽酮 +180ul ddH2O+20ul样品提取液 ; 空白对照 (1ml 蒽酮 +180ul ddH2O , 测定 OD625后带入标准曲线 : Y=0.0345X+0.0204(Y代表 OD625, X 代表可溶性糖含量(ug

阿拓莫兰(还原型谷胱甘肽片)说明书

阿拓莫兰(还原型谷胱甘肽片)说明书 【阿拓莫兰药品名称】 通用名:还原型谷胱甘肽片 商品名:阿拓莫兰 英文名:Reduced glutathione Tablets 汉语拼音:Huanyuanxing Guguanggantai Pian 【阿拓莫兰成份】 阿拓莫兰主要成份为还原型谷胱甘肽,其化学名为N-(N-L-γ-谷氨酰基-L-半胱氨酰基)甘氨酸。 【阿拓莫兰性状】 阿拓莫兰为薄膜衣片,除去包衣后显白色。 【阿拓莫兰产品介绍】 阿拓莫兰的主要成分是还原型谷胱甘肽(GSH),GSH是哺乳动物细胞内含量丰富的低分子量多肽,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸残基组成,对人体具有十分重要的生理功能:解酒精毒性、保护肝脏; 解药物毒性(抗肿瘤药、抗结核药、中枢神经药物、对乙酰氨基酚等中毒),防止抗癌药物的副作用,预防和治疗放射线损害;对抗自由基,抗氧化;提高机体免疫力。 人体在许多状态下都可以使细胞内GSH生物合成能力降低,含量下降,尤其是在病理状态下。外源性GSH的补充,可以预防、减轻、中止、组织细胞的损伤,改变病理生理过程。药理毒理研究表明: 阿拓莫兰的主要成分(还原型谷胱甘肽)是含有巯基(SH)的三肽类化合物,在人体内具有活化氧化还原系统,激活SH酶、解毒作用等重要生理活性。参与体内三羧酸循环和糖代谢,促进体内产生高能量,起到辅酶作用。还原型谷胱甘肽是甘油醛磷酸脱氢酶的辅基,又是乙二醛酶及磷酸丙糖脱氢酶的辅酶。还原型谷胱甘肽能激活体内SH酶等,促进碳水化合物、脂肪及蛋白质的代谢,以调节细胞膜的代谢过程。还原型谷胱甘肽参与多种外源性、内源性有毒物质结合生成减毒物质。 【阿拓莫兰适应症】 1)肝损伤:病毒性肝病,药物性肝病,中毒性肝损伤,脂肪肝,肝硬化等; 2)肾损伤:急性药物性肾损伤,尿毒症; 3)化放疗保护; 4)糖尿病:并发症,神经病变; 5)缺血缺氧性脑病;各种低氧血症。 【阿拓莫兰用法用量】 成人常用量为每次口服400mg(4片),每日三次。疗程12周。 【阿拓莫兰不良反应】 1、过敏症:偶有皮疹等过敏症状,应停药。

GSH-Px活力的测定SOP

主要目的: ——测定物质谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px )活力。 主要原理: ——谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px )可以促使过氧化氢(H 2O 2)与还原性谷胱甘肽(GSH )反应生成H 2O 及氧化性谷胱甘肽(GSSG ),谷胱甘肽过氧化物酶的活力可用其酶促反应的速度来表示,测定此酶促反应中还原型谷胱甘肽的消耗,则可求出酶的活力。 H 2O 2+2GSH 2H 2O+GSSG GSH-Px 的活力以催化GSH 的反应速度来表示,由于这两个底物在没有酶的条件下,也能进行氧化还原反应(称为非酶促反应),所以最后计算此酶活力时必须扣除非酶促反应引起的GSH 减少的部分。而GSH 含量的测定可以跟据GSH 和二硫代二硝基苯甲酸作用生成5-硫代二硝基苯甲酸阴离子呈现较稳定的黄色,在412nm 处测其吸光度即可计算出 实验室签章 GSH-Px

一、试剂 ——谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)测定试剂盒(南京建成生物研究所) 二、仪器设备 ——96孔酶标板 ——UV-Vis可见多功能酶标仪 ——旋涡混匀器 ——离心机 ——水浴锅 ——移液枪及其相应量程枪头

三、实验方法 根据试剂盒说明书具体操作步骤如下: 1. 非酶管和酶管各加入1 mmol/LGSH 0.2 mL ,酶管加入稀释后的待测血清和组织匀浆液0.2 mL ,37 oC 水浴预温5分钟,酶管和非酶管分别加入试剂一应用液0.1 mL ,37 oC 水浴准确反应5分钟,酶管和非酶管分别加入试剂二应用液2 mL ,同时非酶管加入待测细胞上清液0.2 mL 。混匀,3500-4000转/分,离心10分钟,取上清1 mL 作显色反应。 2. 空白管加入1 mL GSH 标准品溶剂应用液,标准管加入1 mL 20 μmol/LGSH 标准液,非酶管和酶管各加入上一步骤1 mL 上清液,然后空白管、标准管、非酶管和酶管各加入1 mL 试剂三应用液,0.25 mL 试剂四应用液和0.05 mL 试剂五应用液。 3. 混匀,室温静置15分钟后,在412 nm 处将酶标板空板进行扫描,准确吸取 0.2 mL 各管反应液加入到新的96孔板中,酶标仪测定各孔吸光度(OD 值)。 4. 血清中GSH-Px 活力计算公式 GSH-Px 活力(U/mgprot )--OD = 非酶管值酶管OD 值标准管OD 值空白管OD 值 ×标准品浓度(20 μmol/L )×稀释倍数 组织中GSH-Px 活力计算公式 GSH-Px 活力(U/mgprot ) --OD =非酶管值酶管OD 值标准管OD 值空白管OD 值×标准品浓度×min 稀释倍数(5)反应时间(5) ÷[取样量(0.2 mL )×待测组织蛋白浓度(mgprot/ mL )] 参考文献 Oliveira Lazarin M, Ishii-Iwamoto E L, Yamamoto N S, et al. Liver mitochondrial function and redox status in an experimental model of non-alcoholic fatty liver disease induced by monosodium L-glutamate in rats [J]. Experimental and molecular pathology, 2011, 91(3): 687-694.

谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase, GSH-Px)试剂盒使用说明

谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)试剂盒使用说明 微量法注意:正是测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。 货号:BC1195 规格:100管/96样 产品内容: 试剂一:液体×1瓶,4℃保存。 试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存。 试剂三:液体×1支,-20℃保存。 混合试剂配制:临用前,在试剂二中加入试剂一20mL,充分震荡溶解后加入全部试剂三,混匀。(注意:必须现配现用,当天使用完) 试剂四:液体×1瓶,4℃保存。 产品说明: GSH-Px是谷胱甘肽氧化还原循环中催化还原型谷胱甘肽(GSH)氧化的主要酶之一。GSH-Px不仅能够特异地催化还原型谷胱甘肽与ROS反应,生成氧化型谷胱甘肽GSSG,从而保护生物膜免受ROS的损害,维持细胞的正常功能;而且具有保护肝脏、提高机体免疫力、拮抗有害金属离子对机体的伤害和增加机体抗辐射等能力。 GSH-Px催化H2O2氧化GSH,产生GSSG;谷胱甘肽还原酶(GR)催化NADPH还原GSSG,再生GSH,同时NADPH氧化生成NADP+;NADPH在340nm有特征吸收峰,而NADP+没有;通过测定340nm光吸收减少速率来计算GSH-Px活性。 自备仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、微量石英比色皿/96孔板和蒸馏水。 操作步骤: 一、粗酶液提取: 1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取0.1g组织, 加入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。10000rpm,4℃离心10min,取上清置冰上待测。 2.细菌、真菌:按照细胞数量104个:试剂一体积(ml)500~1000:1的比例,建议500万细 胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(率300w,超声3s,间隔7s,总时间3min)然后10000rpm,4℃,离心10min,取上清置冰上待测。 3.血清等液体:直接测定。 二、测定操作: 1.分光光度计预热30min,调节波长到340nm,蒸馏水调零。 2.混合试剂在25℃或者37℃(哺乳动物)水浴中预热30min以上。 3.空白管:依次在1mL石英比色皿中加入20μL蒸馏水、160μL预热的混合试剂,20μL 试剂四,迅速混匀后于340nm处测定第10s和第190s的吸光值,分别记为A空1和A空,△A空白管=A空1﹣A空2。 4.测定管:依次在1mL石英比色皿中加入20μL上清液、160μL预热的混合试剂,20μL 试剂四,迅速混匀后于340nm处测定第10s和第190s的吸光值,分别记为A测1和A测2,△A测定管=A测1﹣A测2。 注意:空白管只需测定一次。 三、GSH-Px活性计算:

植物生理指标检测方法

植物组织中可溶性糖含量的测定 在作为营养物质主要是指可溶性糖和淀粉。它们在营养中的作用主要有:合成纤维素组成细胞壁;转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等;分解产物是其他许多有机物合成的原料,如糖在呼吸过程中形成的有机酸,可作为NH 3 的受体而转化为氨基酸;糖类作为呼吸基质,为作物的各种合成过程和各种生命活动提供了所需的能量。由于碳水化合物具有这些重要的作用,所以是营养中最基本的物质,也是需要量最多的一类。 Ⅰ蒽酮法测定可溶性糖 一、原理 糖在浓硫酸作用下,可经脱水反应生成糠醛或羟甲基糠醛,生成的糠醛或羟甲基糠醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物,在一定范围内,颜色的深浅与糖的含量成正比,故可用于糖的定量测定。 该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物,不但可以测定戊糖与己糖含量,而且可以测所有寡糖类和多糖类,其中包括淀粉、纤维素等(因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应),所以用蒽酮法测出的碳水化合物含量,实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量。在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下,用蒽酮法可以一次测出总量,省去许多麻烦,因此,有特殊的应用价值。但在测定水溶性碳水化合物时,则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中,不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与蒽酮试剂发生反应而增加了测定误差。此外,不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同,果糖显色最深,葡萄糖次之,半乳糖、甘露糖较浅,五碳糖显色更浅,故测定糖的混合物时,常因不同糖类的比例不同造成误差,但测定单一糖类时,则可避免此种误差。 糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区的吸收峰为 620 nm ,故在此波长下进行比色。 二、实验材料、试剂与仪器设备 (一)实验材料 任何植物鲜样或干样。 (二)试剂 1. 80 %乙醇。 2. 葡萄糖标准溶液(100 μg/mL ):准确称取100 mg 分析纯无水葡萄糖,溶于蒸馏水并定容至100 mL ,使用时再稀释 10 倍( 100 μg/mL )。 3 .蒽酮试剂:称取 1.0 g 蒽酮,溶于 80% 浓硫酸(将 98% 浓硫酸稀释,把浓硫酸缓缓加入到蒸馏水中) 1000 mL 中,冷却至室温,贮于具塞棕色瓶内,冰箱保存,可使用 2 ~ 3 周。 (三)仪器设备 分光光度计,分析天平,离心管,离心机,恒温水浴,试管,三角瓶,移液管( 5 、 1 、0.5 mL ),剪刀,瓷盘,玻棒,水浴锅,电炉,漏斗,滤纸。 三、实验步骤 1. 样品中可溶性糖的提取称取剪碎混匀的新鲜样品0.5 ~ 1.0 g (或干样粉末 5 ~100 mg ),放入大试管中,加入15 mL 蒸馏水,在沸水浴中煮沸20 min ,取出冷却,过滤入100 mL 容量瓶中,用蒸馏水冲洗残渣数次,定容至刻度。 2. 标准曲线制作取 6 支大试管,从 0 ~ 5 分别编号,按表 24-1 加入各试剂。 表 24-1 蒽酮法测可溶性糖制作标准曲线的试剂量 将各管快速摇动混匀后,在沸水浴中煮10 min ,取出冷却,在620 nm 波长下,用空白调零测定光密度,以光密度为纵坐标,含葡萄糖量( μg )为横坐标绘制标准曲线。 3 .样品测定取待测样品提取液 1.0 mL 加蒽酮试剂 5 mL ,同以上操作显色测定光密度。重复 3 次。

谷胱甘肽的化学与医疗作用

谷胱甘肽的化学与医疗作用 卢 薇 (江苏职工医科大学 南京 210029) 摘要 谷胱甘肽(glutathione,GSH)在体内以氧化型(GSSG)和还原型(GSH)2种形式 存在。GSH分子中的巯基容易失氢氧化,因而可以消除体内的活性氧,具有保护酶和蛋白 质免受氧化,保护脏器免受损伤的功效。人工合成的GSH已广泛用于临床。 关键词 谷胱甘肽 活性氧 酶 解毒作用 谷胱甘肽(glutathione,GSH)是体内最早发现的天然的游离三肽,普遍存在于动物组织中,如肝、肾、心肌、脾、肠、脑和红细胞等,细胞内浓度为0.5mmol/L~10mmol/L;血浆内浓度仅1μmol/L~5μmol/L,约为细胞内浓度的千分之一。 GSH是由谷氨酸(G lu)、半胱酸(Cys)和甘氨酸(G ly)组成的非蛋白巯基化合物,含有γ-羧基形成的酰胺键,其化学结构及合成反应如图1。 2分子GSH脱氢氧化成为GSSG,后者又可通过磷酸戊糖代谢通路中所产生的还原型辅酶Ⅱ(NADPH)和GSH还原酶的作用,还原成GSH。 还原型谷胱甘肽分子中最重要的结构是巯基(-SH),-SH容易失氢发生氧化,因此,GSH可以保护一些含-SH的蛋白质及酶免受氧化剂的损害;同时,-SH中的氢容易被自由基提取,如下式所示: -SH+?R-S?+HR 因而具有清除自由基的能力。 还原型谷胱甘肽与氧化型谷胱甘肽在细胞内维持一定的比值(GSH/GSSG=100/1),GSH的含量随年龄、营养状况及内分泌的不同而变化,如甲状腺机能低下或肝脏疾病、药物中毒等情况下会引起GSH水平降低。GSH/GSSG保持稳态关系对维护组织细胞、多种蛋白质、酶的结构及其功能有重要意义。 1 谷胱甘肽的生理功能 1.1 清除体内的过氧化物及自由基 GSH可在含硒过氧化物酶(GSHpx)的催化下将体内有害的过氧化物、自由基(O2-?、HO?)加以化解和清除,如下式所示: 2GSH+ROOH GSHpx GSSG+2ROH ROOH和自由基不仅氧化某些具有重要生理作用的含巯基的酶和蛋白质,使之丧失活力,而且还将细胞膜磷脂分子中多不饱和脂肪酸氧化生成过氧化物;而生成的过氧化脂质又通过自身的催化连续生成大量过氧化物,因此GSH通过自身氧化能中止脂质过氧化的连锁反应。

谷胱甘肽含量测定

植物生理学模块实验指导 玲主编 科学 还原型谷胱甘肽含量的测定方法(分光光度计法) 【实验目的】 了解植物组中中抗坏血酸-谷胱甘肽循环代过程,学习还原型谷胱甘肽含量的测定原理和方法。 【实验原理】 谷胱甘肽是有谷氨酸(Glu)、半胱氨酸(Gly)组成的天然三肽,是一种含巯基(—SH)的化合物,广泛存在于动物组织、植物组织、微生物和酵母中。谷胱甘肽能和5,5’-二硫代-双-(2-硝基苯甲酸)(5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反应产生2-硝基-5-巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物(GSSG)。2-硝基-5-巯基苯甲酸为一黄色产物,在波长412nm处具有最大光吸收。因此,利用分光光度计法可测定样品中谷胱甘肽的含量。 【器材与试剂】 1.实验仪器与用具 研钵、高速冷冻离心机、微量移液枪、离心管、试管、水浴锅、容量瓶(100ml、200ml、1000ml)、分光光度计 2.实验试剂 50g/L三氯乙酸(TCA)溶液(含5mmol/L Na 2 -EDTA):称取5g三氯乙酸,用蒸馏水溶 解稀释至100ml。再称取186mg Na 2-EDTA·2H 2 O,加入到100ml 50g/L三氯乙酸溶液中溶解。 0.1mol/L磷酸钠溶液缓冲液(pH7.7):配制方法见附录。 0.1mol/L(pH6.8)磷酸钠缓冲液:配制方法见附录。 4mmol/L二硫代硝基苯甲酸(5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)溶液:称取15.8mg DTNB,用0.1mol/L、pH6.8磷酸缓冲液溶解,定容至10ml,混匀,4℃保存。现用现配。

还原型谷胱甘肽的稳定性研究

919 还原型谷胱甘肽的稳定性研究 朱义福 (星湖生物科技股份有限公司,广东肇庆 526040) 摘要:本文研究了pH 、温度、光照以及外加抗氧化剂等因素对还原型谷胱甘肽(GSH)纯品溶液稳定性的影响。结果表明,GSH 水溶液在pH=2.0~4.0范围内最为稳定;在30 ℃以下,24 h 内自身氧化较少;应避光处理或保存;外加抗氧化剂在pH=6.0时,保护作用明显。 关键词:谷胱甘肽;稳定性;抗氧化剂 文章篇号:1673-9078(2011)8-919-923 Stability of Reduced Glutathione under Different Conditions ZHU Yi-fu (Star Lake Bioscience Co., Inc., Zhaoqing 526040, China) Abstract: The effects of pH, temperature, sunlight and antioxidant on the stability of reduced glutathione (GSH) solution were studied in this paper. Results indicated that GSH solution was relative stabile under the following conditions: pH 2.0~4.0 and temperature <30℃. And it should be kept in dark place. Besides, the GSH solution showed the highest stability in the presence of antioxidant at pH 6.0. Key words: glutathione; stability; antioxidant 谷胱甘肽(Glutathione ,GSH ),即γ-L-谷氨酰-L-半胱氨酰-甘氨酸,是由L-谷氨酸、L-半胱氨酸和甘氨酸经肽键缩合而成的生物活性三肽化合物。GSH 是许多酶反应的辅基,在生物体内具有清除体内自由基、解毒等多种重要的生理功能,特别是对于维持生物体内适宜的氧化还原环境具有重要意义[1]。国内外关于GSH 的研究主要集中在菌种选育[2]、培养条件优化[3]、分离纯化[4]和临床应用上[5],其工业化生产技术一直被国外极少数发达国家所垄断,国内尚未实现工业化生产,从而造成GSH 的市场价格居高不下,影响了GSH 的推广和应用。 GSH 易溶于水、稀醇、液氨和N,N-2甲基甲酰胺,而微溶于或不溶于醇、醚和酮。GSH 的固体较稳定,而水溶液在外界环境中受温度、pH 、光照等条件影响,易氧化,产生氧化型谷胱甘肽(即GSSG ),GSSG 是由两分子GSH 脱氢后通过二硫键相连的二聚体,其反应如下: 氧化型GSSG 不具有生理活性,只有还原型GSH 才能发挥重要的生理功能。GSH 的不稳定性是造成较难分离纯化、产品纯度不高的重要原因。因此,本文通过大量的试验对GSH 稳定性进行研究,为国内GSH 的工业化生产提供参考。 收稿日期:2011-03-26 作者简介:朱义福(1976-),男,工程师,研究方向:生物医药分离纯化技术 1 材料与方法 1.1 材料与试剂 GSH 纯品(纯度>98%):日本Kyowa 公司。四氧嘧啶(Alloxan ):美国sigma ; 二硫苏糖醇(DTT ):上海生工所;抗坏血酸(Vc ):广州化学试验厂;保险粉(Na 2S 2O 4):上海国药集团化学试剂公司;其它试剂为国产分析纯。 1.2 主要仪器 SC-15数控超级恒温槽:宁波新芝生物科技公司;CR21G 高速冷冻离心机:日本Hitachi 公司;752型紫外可见光分光光度计:南京第四分析仪器公司;S40 pH 精密测量仪,AB54-S 分析天平:瑞士METTLER TOLEDO 公司;RW20D 搅拌器:德国IKA 公司;Agilent LC1100液相色谱仪:美国HP 公司。 1.3 分析方法 GSH 含量测定采用四氧嘧啶Alloxan 试剂法 [6]:(1)标准曲线的制作:准确称取6.146 mg 的GSH 标准品,用40%乙醇溶解,定容至100 mL ,得到浓度为200 μmol/L 的标准液。取0 mL 、0.2 mL 、0.4 mL 、0.6 mL 、0.8 mL 、1.0 mL 上述标准液于试管中,补加去离子水至1.0 mL ,配成浓度为0 μmol/L 、40 μmol/L 、80 μmol/L 、120 μmol/L 、160 μmol/L 、200 μmol/L 的GSH 溶液。然后依次加入pH 7.6的磷酸缓冲液2.5 mL ,0.1 mol/L 的甘氨酸溶液0.5 mL ,以及Alloxan 试剂1.0 mL ,反应20

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