3.微生物临床标本采集标准操作规程

微生物临床标本采集标准操作规程

1.目的：规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。

2.范围：医学检验科微生物室标本。

3.使用部门：医学检验科微生物室

4.程序更改要求：程序更改由操作人员提出，科主任批准后执行。

5.标本采集：

5.1血液及骨髓

5.1.1采血时间：在抗菌药物治疗之前，于发热初期或高峰时抽血。采血频率：对于怀

疑菌血症的成年病人，推荐同时在不同部位采集2~3套（每套包括一瓶需氧瓶、

一瓶厌氧瓶或者2套需氧瓶）;对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对

于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2套。采血量：以培养基的1/10为宜，

成人一次采血5~10ml,婴幼儿为1~2ml。

5.1.2骨髓标本永骨髓穿刺针从髂骨采集。

5.1.3标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送可置于室温，切勿放入冰箱。

冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。

5.2脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2~3ml，盛于无菌容器

中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自溶酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论涂片或培养，必须采集后立即送检。

5.3上呼吸道标本

5.3.1鼻咽标本：姜鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽部（注意：不可用力），轻轻转动，

并于该深部停留20~30s，然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽喉中细菌的污染）。

5.3.2喉标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样。喉拭子培养

不能用于会厌发炎的病人。将转运管安全封口，注明标识和日期，将标本尽快送

到实验室。

5.4下呼吸道标本

5.4.1痰

5.4.1.1采集标本以晨痰为好。支气管扩张症病人清晨起床后进行体位引流，可采集大

量痰标本。

5.4.1.2自然咳痰法:在留取痰之前，用清水反复漱口，从气管深部咳出，吐入无菌容

器内。

5.4.1.3支气管镜下采集法：在病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。

5.4.1.4气管穿刺法：在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌氧菌培养。

5.4.1.5棉拭采集法：用无菌棉拭子轻轻擦拭病人鼻咽部黏膜，留取标本，置无菌试管

内送检，放置时间不应超过2小时。

5.4.2支气管灌洗液：用不少于140ml无菌生理盐水灌洗小支气管和肺泡，40~80ml回

收的灌洗液中包含约1ml支气管末梢和肺泡中的分泌物；弃去前段可能污染的部

分，收集其余部分后立即送检。

5.4.3保护毛刷（PSB）：保护毛刷因有双层套管保护，不污染上呼吸道和口腔定植菌。

用无菌剪刀剪断毛刷，置于含1ml生理盐水的无菌容器中（仅供需氧培养），快

速送检。

5.5穿刺液标本

5.5.1采用无菌方法采集体内可以感染部位的液体约2ml，注入无菌试管，或抽取穿刺

液1~2ml注入多功能体液培养瓶，或抽取穿刺液2~5ml注入血培养瓶，混匀，立

即送检。

5.5.2标本保存：采集标本后立即送到实验室，若不能及时送检可置于室温，放置时间

不应超过2小时。

5.6生殖器来源

5.6.1阴道：经过阴道口（introitus）,将拭子插入约5cm，轻轻转动10~30s。确保拭子触

及阴道壁，小心退出，不要触及皮肤，将拭子转移到Aptima采集管，于第二线折

断。拭子必须置于运输管中，尽快送抵实验室。你、梅毒螺旋体标本从外生殖器

的硬下疳处蘸取渗出液，置于载玻片上，加盖玻片后立即送检。

5．6.2前庭大腺：不要在黏膜部位使用乙醇。皮肤准备参见一般部位，吸取前庭大腺脓肿，使用厌氧转运培养基送至实验室。

5.6.3用于培养的子宫颈（宫颈管）标本

5.6.3.1准备阴道窥器，除温水外，避免使用润滑剂，插入阴道窥器，见到子宫颈，用

棉拭子拭去多余的黏液，将涤纶拭子插入子宫颈，轻轻转动，炳停留10~30s，

取出拭子，置于细菌转运培养基。

5.6.3.2一般情况下，阴道标本培养不会产生有意义的结果，所以除B群链球菌筛检

外，不推荐阴道标本培养。阴道标本不能用于厌氧培养。

5.6.4羊膜腔穿刺术：通常由医生经超声定位留取样本，置于封口的注射器或厌氧转运

培养基送抵实验室。

5.7前列腺：用肥皂和清水清洗阴茎头，经直肠前列腺按摩获取前列腺液，用无菌拭子采

集前列腺液，在室温下运送标本，选择前列腺按摩前和最近时刻的尿液同时送去培养。

5.8尿

5.8.1女性：先以肥皂水清洗外阴部，再以无菌水冲洗，用无菌纱布擦拭，以手指将阴

唇分开排尿，弃去前段尿，留取中段尿5~7ml于无菌试管内。

5.8.2男性：翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，用清水冲洗，留取中段尿。

5.8.3儿童、婴儿：先以无菌生理盐水棉球洗净其外阴部或外生殖器，将无菌试管或瓶

口对准尿道，以胶布固定于皮肤上，待排尿后送检。

5.8.4两侧肾盂尿：由专科医师采集，左右两侧标本必须标明，避免混淆而误诊。

5.8.5膀胱穿刺：此法用于厌氧培养。耻骨上皮肤经碘酊消毒后，再以75%乙醇擦拭，

用无菌注射器进行膀胱穿刺，吸取尿液后排去注射器内的空气，针头插于无菌橡

皮塞上及时送检，2小时内进行接种。

5.9粪便标本

5.9.1自然排便采集：自然排便后，挑去其脓血、黏液部分2~3g，液体粪便取絮状物2~3ml，

盛于灭菌容器内，或置于保存液（运送培养基）、增菌培养基中送检。

5.9.2直肠拭子：如不易获得粪便时，或排便困难病人或婴儿时，可采用直肠拭子采取，

即以无菌棉拭用保存液或生理盐水湿润后，插入肛门内4~5cm（幼儿2~3cm）轻

轻转动取出，插入卡布(Cary-Blair)运送培养基内或无菌容器内送检。

5.9.3粪便标本应该立即送检，室温保存不能超过2小时，如不能及时送检可放入磷酸

盐甘油（pH7.0）或转运培养基。但不能超过24小时。培养艰难梭菌的标本保存

于20℃以下、培养沙门菌和志贺菌的标本应放置磷酸盐甘油溶液中保存。保存弯

曲杆菌和弧菌的标本，需加氯化钙（100mg/L）。

5.10脓及创伤标本

5.10.1封闭性脓肿消毒局部皮肤或黏膜表面后，用无菌注射器抽取，用无菌手术刀切开

粟粒状脓肿（miliary abscess），使用无菌注射器和针头采集露出的标本。

5.10.2 将脓液注入多功能培养瓶或无菌试管内送检。疑为厌氧菌感染时，应做床旁接种

或置厌氧运送培养基内送检。

5.10.3 开放性脓肿和脓肿分泌物用无菌盐水或75%乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入

溃疡深处采集2支拭子，1支为涂片检查用，1支为培养用。

5.10.4 大面积烧伤的创面分泌物用灭菌棉拭取多部位创面的脓液或分泌物，置灭菌试管

内（注明采集部位）送检。

5.10.5 对未引流脓肿：使用无菌注射器和针头，按无菌操作及时，从中采集脓性物。用

无菌手术刀切开粟粒状脓肿，使用无菌注射器和针头采集露出标本。

5.10.6 疑为放线菌属、奴卡菌属感染时，在检查单上注明需要排除放线菌、奴卡菌属。

5.11 褥疮溃疡：用无菌盐水清洗表面后如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集

损伤底部。由于褥疮溃疡拭子临床价值不大，一般选择组织活检或针头抽吸标本。

5.12 大疱、蜂窝组织炎、小疱：皮肤消毒同血液培养，用无菌针头和注射器抽吸液体或

化脓性物质，如果获得了抽吸物，将之置于适合细菌转运培养基。如果没有得到抽吸物，将小疱或大疱性病变打开，使用棉拭子采集病变部位，置于转运培养基中。

5.13 中心静脉导管标本：用无菌镊子将5cm导管尖端或近心端送至实验室。

5.14 耳部标本

5.14.1 内耳：穿刺前用肥皂水清洗外耳道在进行消毒程序，最后用注射器穿刺鼓室抽吸

脓液。对鼓室破裂者，用专用采样管中配备的细头软杆拭子采集脓液，脓液量大

的也可采用注射器抽吸。

5.14.2 外耳：先用湿润的棉棒清洁外耳道，再用专用采样管中配备的毛刷状采样拭子在

外耳道内用力旋转摩擦取样。

5.15 眼部标本

5.15.1 结膜：采样前先用无菌盐水湿润拭子，再绕结膜取样，最好两眼各采集2拭子；

其中1支用于涂片。建议在床边接种。采集时，必须小心避免感染蔓延至眼部临

近区域。注意，须标明左眼、右眼的标本。

5.15.2 角膜：由眼科医生采用刮取法采集标本；采集前先滴2滴局部麻醉液再用角膜上

皮刮铲刮取病变角膜组织，将刮擦物用少许生理盐水洗下，置无菌杯中送检。5.16 组织标本采集：表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽

吸或手术切除，对窦道和瘘管应深部刮取，获得部分管壁组织。深部组织标本可在手术过程中或采取穿刺活检或抽取分泌物送检没也可使用相应的内镜采集活检标本。标本置于无菌容器中并加入少量生理盐水以保持湿度，或置肉汤增菌液中送检。

如怀疑为军团菌感染，肺组织切片不要滴加生理盐水（能抑制军团菌生长）。如果怀疑为厌氧菌感染，应把组织放入厌氧的传输系统内立即送检。

5.17 引流液：用70%乙醇消毒导管采集部位，用注射器从引流管无菌采集2~3ml。标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长易滋生细菌。

5.18 胃活检标本：仅用于幽门螺旋杆菌培养。需用适当的转运培养基，采集后1小时内

送抵微生物学实验室。

动脉血标本采集操作规程

动脉血标本采集操作规程 【评估】 1、病情及治疗情况，了解患者吸氧状况或者呼吸机参娄的设置。 2、意识状况，肢体活动能力。 3、患者对动脉血标本采集的认知和合作程度。 4、穿刺部位的皮肤及动脉情况。 5、了解患者有无血液性传染疾病。 6、了解患者有无进食热饮。 【准备】 护士：衣帽整洁，仪表端庄，洗手、戴口罩。 物品：治疗车、治疗盘、注射器、弯盘、无菌纱布、肝素液、橡胶塞、胶布、棉签、安尔碘、酒精、消毒砂轮、必要时备无菌手套、检验单、护理记录单、记录笔、污物缸、手消毒液、砂袋。 环境：清洁、安全、光线适宜。 体位：平卧位。

【方法】 处置核对医嘱 携用物至床旁 核对床号、姓名及手腕带、检验项目 解释采血目的、方法、配合要点 安置舒适体位 暴露穿刺部位 选择穿刺点 手消 注射器取肝素0.5ml 湿润管壁、弃余液 消毒皮肤范围大于5cm、待干 消毒术者左手十指和中指（血液传染病患者戴手套） 再次核对床号、姓名、确定动脉走向后在动脉搏动最明显处固定动脉于两指间 右手持注射器垂直或与动脉呈40°角迅速刺入 见鲜红色血涌进注射器 右手固定穿刺注射器针 左手回抽血液至1ml 无菌纱布按压穿刺点拔针立即压上砂袋（垂直加压按压5-10分钟） 拔针后排尽注射器内空气针头斜面刺入软木塞或橡皮塞、轻轻搓动注射器血液与肝素液混匀 再次核对 协助患者取舒适卧位 整理床单元 手消 记录 标本立即送检 处理用物 签医嘱单。 【评价】 1、患者及家属能够知晓护士告知的事项。 2、准确执行无菌技术操作和查对制度

3、采集血液为动脉血，采集方法，送检时间符合要求 4、操作规范、熟练、轻巧 【理论提问】 1、动脉采血常用的穿刺部位 答：桡动脉、肱动脉、股动脉、足背动脉等。 2、拔针后局部按压时间多长 答：应加压止血5-10分钟，避免出血或形成血肿。 3、列举影响动脉采血结果的因素 答：吸氧状况下、存放时间长、标本内含有气泡、正在输入脂肪乳、标本内肝素液过多。饮热水、洗澡、运动需休息30分钟后再采血。 4、新生儿动脉采血应避免选择什么动脉进行穿刺 答：应避免股动脉，应股动脉穿刺垂直进针时易伤及髋关节。

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

静脉血标本采集操作规程

静脉血标本采集操作规程 1. 目的 抽取静脉血标本以做各项检验。 2. 适用范围 适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。 3. 物品准备：止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一 次性采血针、负压真空管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。 4. 检验申请单填写要求： 4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。 4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。 5. 操作步骤： 5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。 5.2 选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。 5.3 在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。 5.4 用复合碘棉签消毒穿刺部位。

5.5 在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。 5.6 穿刺:推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，松开止血带，受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压2-3分钟。 5.7 为受检者整理衣袖。 5.8 采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。 6. 注意事项 6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。 6.2抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀。 6.3 一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。若检验项目较多，应适当增加采样量。 6.4 血常规检验用EDTAK2抗凝管收集标本，采样量0.5-1毫升。 6.5 凝血四项、血红蛋白电泳、3P试验用枸橼酸钠（0.2ml）抗凝管收集标本，采样量必须准确，为1.8ml。血沉用枸橼酸钠0.4ml抗凝，抽血1.6ml。 6.6 高铁血红蛋白还原试验（G6PD）以枸橼酸钠0.2ml抗凝，另加入葡萄糖20mg，抽静脉血1.8ml，混匀。 6.7 糖化血红蛋白测定需用肝素管抗凝。 6.8 血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血（5ml）三份样本。 6.9 餐后，血糖、血脂可增加而影响测定结果，故一般应空腹抽血。有些食物成分：高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。 6.10 药物影响：如异菸肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因

临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。 2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内，应在申请检验单上注明。 3.不管临床症状经历的严重程度，但患者血液中病原菌浓度水平相当低，因此临床应多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次，成人每次血量10~20ml，可提高检出率。二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子：用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。 B.口腔内溃疡：用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。 C.鼻拭子：用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm，接触鼻黏膜采集。 2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法：A.患者早上起床后用清水漱口，不要刷牙，收集从下呼吸道咳出的第二口痰，吐在塑料痰盒中。 B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液，使痰液易于排出。 C.对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。②气管镜下采集法：用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本，但这种方法患者有一定痛苦。三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染，但多次重复导尿可造成逆行感染，因此多采用中段尿，简单易行，又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。 2.女性：成年女性外阴部以肥皂水清洗，再用无菌水洗净，用无菌纱布擦拭，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿3毫升，置于无菌容器内。 3.男性：用肥皂水清洗尿

道口，后用清水洗后取中段尿。包皮过长者为防止包皮内细菌污染，可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。4.儿童：采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多，高度怀疑尿路感染，无细菌则可否定，细菌数中度增加时，有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。 5.为确定菌尿是否来自肾脏，可通过膀胱镜，输尿管插管采集左右肾盂尿。四 .大便标本1.自然排便采集法：自然排便后，可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克，粘液状大便取絮状物，盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。 2.直肠拭子法：适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，然后插入肛门约4-5cm（幼儿约2-3cm）处，轻轻在直肠内旋转，檫取直肠表面粘液后取出，置于无菌试管或保存液中送检。 3.采集大便标本应在急性期，使用抗生素前进行，并要采集新鲜粪便。五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口，采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。 2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。 3.女性则用窥器扩张阴道，用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。当创伤出血时，敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。标本采集需注意无菌操作，及时送检。 1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水

检验标本采集规范

检验标本采集规范 一、常规标本采集规范 （一）静脉血标本采集规范 1．真空采血标本对应真空管 真空管项目备注 血培养瓶血培养 儿童1-2ml 成人8-10ml 枸橼酸抗凝管（1：9抗凝）（蓝帽） 凝血全项 （PT、APTT、FIB、TT、D-D、FDP、 AT3） 标本采集2ml （不能多不能少） 枸橼酸抗凝管 （1：4）抗凝（黑色）血沉 至刻度线 （不能多不能少） 促凝剂管（黄帽）生化全项、肝功能、肾功能、血糖、血 脂、心肌酶、电解质、RF、ASO、血 清铁、血清同型半胱氨酸、淀粉酶 标本采集量4-5ml 促凝剂管 （黄帽） 肌钙蛋白I、人绒毛膜促性腺激素标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） 乙肝三系、病毒四项标本采集量4-5ml 无添加剂管甲状腺激素五项，雌激素五项，甲胎蛋标本采集量4-5ml

（红帽）白、癌胚抗原、CA125、CA19-9、CA15-3 总前列腺特异性抗原 无添加剂管 （红帽） 结核抗体、肺炎支原体标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） PCR 标本采集量4-5ml EDTA-2K 抗凝管（红帽）血常规、血型、CRP 标本采集量2ml 可以使用同一管 血 网织红细胞计数 外周血涂片 糖化血红蛋白标本采集量2ml 交叉配血标本采集量2ml 2．理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00。 3．采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 4．采血顺序 为血培养管→凝血项目管（蓝帽）→血沉管（黑帽）→促凝剂管（黄帽）→无添加剂管（红帽）→EDTA管（紫帽） 5．在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，血培养优先考虑需氧瓶，其他管应首先考虑凝血（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因为这2种标本对血量要求最严格，且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。 6．检验申请条码贴在采血管上时，请注意不要将采血管完全包裹，应留出空白，以便观察液面高和血液状态，若未打印条码，请将采血管上的

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

临床检验标本采集、运输、保存操作规程

临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。

3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

医院尿液标本采集和运送操作规程

文档序号：XXYY-ZWK-001 文档编号：ZWK-20XX-001 XXX医院 尿液标本采集和运送 操作规程 编制科室：知丁 日期：年月日

尿液标本采集和运送操作规程1．目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2．范围 医院科室／部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3．定义 无。 4．内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.2耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接

从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.3.3回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液，这种方法易污染产生假阳性。 4.2.4.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。 4.3标本运送：标本采集后应及时送检，室温下保存时间不应超过2小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）。如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8小时。

(完整版)临床常见微生物标本的采集与运送

临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药 物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防 腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存， 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会 影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4 度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织

（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送 1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 （1）采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，根据检验的不同要求，采血的时间也不同： 1）空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。 2）餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3）急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK ）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4）血清淀粉酶起病后6～12小时开始升高，12～24小时达到高峰，一般持续3～5天后下降，超过500U （Somogy 法）即有确诊价值。 5）留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 （2）采血部位 1）动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2）静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。 3）毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。 （3）采血器材：a, 注射器， B ，真空采血器： （4）标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 1）全血：用抗凝剂。 2）血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。 3）血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。 （5）操作重点 1）止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。 2）当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。 3）注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4）操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5）有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法： （1）导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法：是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1：1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20毫升于无菌容器内，立即加盖送检。 尿标本采集注意事项： （1）尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范 一血常规检验标本 1用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。 2注意事项： A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 二红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 1静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 三凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 1静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。 四血型与交叉配合标本 1用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。 2注意事项： A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五血流变检查标本 1 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽） 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 六尿液常规检查标本 1住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。 2门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。 3尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。 标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 七尿液特殊检查标本 1尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。 A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间 分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。 B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。 C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。 2尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。 八粪便常规检查标本 1一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。 2样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。 3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。 4做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。 九浆膜腔积液检查标本 1标本一般由临床医师无菌穿刺采取。

微生物标本采集大全

微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集

常见标本采集指南

常见标本采集指南 起草日期：2013 年7月5 日生效日期2013年9 月1日批准人：丁正林 Ⅰ.目的：标本的采集是实验前质控的重要环节,直接影响到检验结果的可靠性和准确性,制定本采集指南是为了规范标本的正确采集,减少采集误差，有效提高检验质量。 Ⅱ.适用范围：适用于全检验科。 Ⅲ. 实施办法、程序： 一.静脉血采集 1.带上手套，并注意常规安全防护。 2.核对检验申请医嘱或检验申请单上的病人信息及检验项目是否吻合。 3.信息核对无误后绑定真空采血条码管，门诊病人可通过诊疗卡调出相应信息。 4. 受检者取坐位或卧位，前臂水平伸直置于抽血台枕垫上或病床上，选择容易固定、明显可见的肘前静脉或手背静脉，幼儿可用颈外静脉采血。 5.在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露。 6.用25g/l碘酊自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤，待碘酊挥发后，再用75%乙醇以相反方向脱碘，待干。 7.采血：拔除采血穿刺针的护套，以左手固定受检者前臂，右手拇指和十指持穿刺针，沿静脉走向使针头与皮肤成300角，快速刺入皮肤，然后成500角向前刺破静脉壁进入静脉腔，见回血后将刺塞针端（用橡胶管套上的）直接刺穿真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管内，如需多管血样，将刺塞端拔除，刺入另一真空采血管中即可。达到采血量后，松压脉带，嘱受检者松拳，拔下刺塞端的采血试管，将消毒棉签压住穿刺孔，立即拔除穿刺针，嘱受检者继续按压针孔数分钟。抗凝血需立即轻轻颠倒混匀6-8次。 8. 将已使用过的针放入医疗硬器盒内。 附注: 1)采血部位通常选择肘前静脉，如此处静脉不明显，可采用手背、手腕、腘窝和外踝部静脉。幼儿可采用颈外静脉。 2) 压脉带捆扎时间不应超过1分钟，否则会使血液成分浓度发生改变。 3) 如果一次要求采血多管样本时，应按以下顺序采血：血培养蓝头管黑头管黄头管红头管橘黄头管绿头管紫头管灰头管 4)如采血时发生晕针，应立即拔出针头，让其平卧。必要时可用拇指压掐或针刺人中、合谷等穴位，或嗅吸芳香酊等药物，严重时立即送急诊室救治。 二、动脉血采集 1 填写血气检测申请单，并对病史、诊断和用药情况、抽血时体温、是否用氧及流量等进行填写。 2标本采集：选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点，经皮肤消毒后，用动脉采集专用针穿刺动脉血管，当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后。拨出针用小橡皮封针头，隔绝空气，立即将注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固，并立即送检。 三、浆膜腔积液采集 由临床医生按相关操作规范采集。标本包括胸腔积液、腹腔积液、心包积液。 采集标本分三管留取，每管１-２ml。 第一管供细菌学检查，必须置于无菌管中，如浆膜腔积液培养。 第二管供化学及免疫学检查，如浆膜腔积液生化检查。 第三管供细胞学检查（置于帽为紫色的试管中抗凝），如浆膜腔积液常规检查。 四、脑脊液采集 由临床医生按相关操作规范采集。

临床检验标本采集规范及注意事项(2016护理培训).

临床检验标本采集规范及注意事项 一、检验标本采集原则(书108页） 二、检验标本的种类： １、血液检验标本：全血、血浆、骨髓等 ２、体液检验标本：尿液、粪便、脑脊液、胸水、腹水、精液、前列腺液、阴道分泌物、胃液、十二指肠引流液、胆汁、痰液、羊水、泪液等。 ３、其它特珠标本：如细胞穿剌、皮屑、指甲、毛发等的成分分析。 三、检验结果的影响因素 （一)主要影响因素： 患者的状态；.患者的饮食；药物的影响。 1.不可变的生物因素：如年龄、性别等； 2.可变的生物因素：情绪、运动、生理节律变化； 3.采取标本时：体位：立位、卧位 4.止血带的使用等。 5.年龄与性别：部分检验结果与年龄和性别而有所不同： 红细胞总数：男：(4.0-5.7)*1012/L 女：(3.7-5.1)*1012/L 新生儿：(5.2-6.4)*1012/L 婴儿：(4.0-4.3)*1012/L 儿童：(4.0-4.5)*1012/L 血清碱性磷酸酶： 儿童：＜５００Ｕ／Ｌ 成人：４０－１５０Ｕ／Ｌ 6.情绪 原则上患者应在平静、休息状态下采集标本，特别是血液标本。患者对采集标本时的恐惧、紧张，有时造成标本采集的失败。有研究指出，患者处于激动、兴奋、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。 7.运动 血清丙氨酸氨基转移酶（谷-丙转氨酶、GPT）、血清天门冬氨酸氨基转移酶（谷-草转氨酶GOT）、乳酶脱氢酶（LDH）、肌酸激酶（CK）等一时升高；还可引起血中钾、钠、

钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 8.劳累或受冷、热空气刺激，往往可见白细胞的增高。 9.昼夜生理变化 分析物峰值时间谷值时间范围(日均值的%) 钾14-1623-14-6 铁14-182-450-70 磷酸盐2-48-1230-40 血红蛋白6-1822-248-15 促甲状腺素20-27-135-15 甲状腺素8-1223-310-20 生长素21-231-21300-400 泌乳素5-710-1280-100 醛固酮2-412-1460-80 10.体位 从立位到卧位时 Hgb下降4%；Hct下降6%；K下降1%；Ca下降4%；ALT下降7%；AST下降9%；ALP下降9%；IgG下降7%；IgA下降7%；IgM下降5%；TG下降6%；T4下降11%。 11.饮食 一顿标准餐后，可使血中甘油三酯增高50%、血糖增高15%。进食高碳水化合物食物，可引起血糖增高；进食高蛋白或高核酸食物，可引起血中尿素氮及尿酸的增高；进食高脂肪食物，可引起血脂的大幅度增高。餐后采集的血液标本，其血清常出现乳糜状，影响到许多检验测定的正确性。 12.饮料及吸烟 咖啡：可使AMY、AST、ALT、ALP、TSH、Glu等升高。 酒：可使Glu降低,使TG、G-GT、HDL-Ch升高。 尼古丁：可使儿茶酚胺、胃泌素、皮质醇、生长激素、碳氧血红蛋白、血球压积、癌胚抗原升高；使免疫球蛋白降低。 13.药物的影响 引起WBC\RBC下降，ALT升高，凝血功能改变 四、采集标本要选择最佳时间 临床检验血液标本原则上晨起空腹时采集，其结果准确可靠，因它避免了摄入成分和生

临床检验标本的采集规范

临床检验标本的采集规范

第一部分各类检验标本容器类型及要求

第二部分患者准备 2.1 病人在采血前24h 内应避免运动和饮酒，避免情绪激动，注意合理饮食除了急诊或其它特殊原因外，一般主张正常饮食3 天后采血，应避免暴饮暴食及刻意控制饮食。静脉血 标本采集最好在起床后1h 内进行。应在空腹10～14 小时后第二天清晨采血。餐后或延长空腹时间（饥饿）均可引起血液化学成分的改变。门诊病人提倡静坐15 分钟后再采血。另外饮食的量及质对检验结果也有影响，如高蛋白饮食可使血清尿素氮、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食引起乳糜微粒血症，导致血清脂血（混浊）；饮水过多或过少可使血清稀释或浓缩；含咖啡因的饮料可使儿茶酚胺释放等。 2.2 采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对固定采血时间，一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉。 2.3 患者体位：体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、Tch 及TG 等浓度增高；Hb、HCT、RBC 等亦可增加。由于体位的因素，在确立参考值时，应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异，故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的相对一致性。

2.4 药物影响：很多药物进入人体后可使某些化验项目的结果增高或降低，如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；冠心平可使 甘油三酯和乳酸脱氢酶降低；维生素C 可使乳酸脱氢酶降低；口服避孕药可使转氨酶升高等。故病人在化验前应尽可能停服对检验有干扰的药物。 2.5 输液的影响：不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采 血。输液时应在输液的另一侧手臂取血。 2.6 生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，取血前几日应注意避免。 2.7 生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。 第三部分标本采集及注意事项 1. 静脉血液采集 1.1 采血注意事项：严格按照无菌技术操作，无论医生、护士、检验人员除穿戴工作服外，还应戴帽子、口罩和一次性医用乳胶手套，同时严格做好采血者手和患者采血部位的消毒，防止患者采血部位感染。保证一人一针一管一带，杜绝交叉感染。真空采血过程如有血液外溢和污染，立即用0.2%消毒灵或其它消毒液进行消毒处理。对所有的采血材料严格执行使用前再次检查，保证安全。采血人员对所采集的标本做好

【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范（试行）临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中 较为薄弱的环节，严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病 菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控，也影响临床诊断， 合理选用抗菌药物，降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率，而且 对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院 感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等，均具有 十分重要的意义。严格实施正确的微生物标本送检和检验方法，是 做好医院感染病原体监测的关键。鉴此，希望临床各科能按照本操 作规范采样送检。 一、医院感染标本的采集和运送基本原则 1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。 2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。 3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。 6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。 7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法 1．血液与骨髓 ①通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。 ②采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存，不必 置冰箱保存。 ③每次采血量成人5～10ml，婴幼儿l～5ml，培养基与血液之比以lO：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 ④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下 次用药前采血。 ⑤每例病人至少采血两次，间隔0．5～lh，以利于提高阳性率和 区分感染菌与皮肤污染菌。 ⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。 2．尿液 ①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗 外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用O．1％新洁尔灭消毒尿 道口．灭菌纱布擦干后收集标本。 ②导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。或消毒后解开