文档库 最新最全的文档下载
当前位置:文档库 › RNA提取中的原理

RNA提取中的原理

RNA提取中的原理
RNA提取中的原理

氯仿是分子量比较大的有机溶剂,在提取RNA时,氯仿可以有效的使有机相和无机相迅速分离。DNA提取过程有机相中主要是酚和蛋白结合,从而使得蛋白和DNA脱离,DNA 进入水相。但是在RNA的提取过程就要避免蛋白和DNA脱离,否则DNA会释放到水相。不管有酚也好,没有酚也好,氯仿本身也对蛋白有变性作用,剧烈的震荡,很容易使得DNA 的亲水基团,与水相接触。所以不要剧烈震荡。

异丙醇的作用是通过-OH的疏水作用使得RNA 或者DNA链中的亲水基团受到保护,等同于沉淀,但是这是个反应时发生在水相中,与前面的氯仿不矛盾。

氯仿的作用有多个方面,一是作为有机溶剂变性蛋白,使其沉淀并通过离心除去,同时也通过变性作用抑制RNase活性;二是RNA提取试剂中通常含有苯酚(Trizol主要成分就是苯酚,很多自己配试剂提的方法也用苯酚,抽提蛋白时也会用到苯酚),苯酚微溶于水,抽提烷之后水相里有痕量的酚,如果不除去会损伤核酸,需要通过氯仿把水相里参与的苯酚抽提掉;三是作为溶剂抽提样品中的一些脂溶性杂质(比如油脂、脂溶性色素等),起到一定除杂作用。

通常氯仿里面会加少量异戊醇(1/25),减少蛋白质在变性过程中由于震荡产生的泡沫,影响后续操作,不过个人经验感觉加不加没什么太大区别,也许是我的样品里蛋白不多吧。

异丙醇是沉淀核酸用的,作用和乙醇一样。只不过用量少一点,0.6V~1V就够了,不像乙醇沉淀需要至少2V,一般需要2.5倍体积。在水相很多,离心管容积有限,加不下太多乙醇的时候一般会用异丙醇沉淀。不过感觉效果不如乙醇,偶尔会有沉淀不出来东西的时候。

Trizol法提RNA,加氯仿就是要剧烈手摇才行,这样才能彻底地两相混匀。而且DNA 在水饱和酚的酸性条件下是会被留在有机相的,不会跑水相里头去。

醇沉淀是很经常用的方法,因为RNA和某些杂质不溶于异丙醇,所以可以用来沉淀。

l楼主问的问题,我的个人理解是:

前面提取的RNA经异丙醇沉淀后,总会含有一些未除去的蛋白和其它杂质分子,这些蛋白和杂质分子如果不除尽的话,就会直接影响所提取的RNA的纯度和稳定性。为此,就需要用70%乙醇洗涤沉淀(因为在70%乙醇里RNA是不溶的,而一些蛋白和其它杂质分子却可溶),并且最好是洗涤2次,然后高速离心后,倒去上清,即可得到较纯的RNA沉淀。用无水乙醇则达不到这个目的!。

以下是我个人提取RNA时的操作总结,不正之处,请战友指正!

1.1 匀浆

1) 每个无菌的2 ml圆底离心管中加入0.75 ml TRIZOL试剂,每个大鼠的腺垂体从-80°C取出后立即于预冷的TRIZOL试剂里用POLYTRON组织匀浆器(瑞士)进行匀浆。

【注:1. 匀浆液的量按每50-100 mg组织加1 ml TRIZOL,样品的体积不能超过匀浆液体积的10%。2. TRIZOL试剂用前应于4°C保存,操作时应带手套和口罩。3. 匀浆器头用前需在3% H2O2(DEPCC水配)里浸泡,然后于0.1% DEPC水中空转2次,最后于TRIZOL试剂中空转2次,方可用于匀浆。4. 匀浆时间不宜太长,转速不宜过大,刚开始时由慢到快至中档处,然后减速,重复1-2次,未见有组织碎块即可.5.如果样品数多的话,可先将TRIZOL试剂一并加好,然后逐一加入样品匀浆。6.特注:每加完一种试剂,都应及时盖上管盖,夹取管子或者打开管子时,尽可能不要碰到管的内缘。】。

2) 将匀浆样品置于15-30°C下静置5分钟,以使核酸蛋白复合物完全分离。如果所

提取的组织中含有较多的蛋白、脂肪等,则应在匀浆结束后将匀浆液于4°C,12000 g,离心10分钟,取上清用于以下操作。

【注:如果此匀浆液暂时不用于实验,可于-80°C下保存至少1个月。】

1.2 RNA 提取

1) 加0.15 ml氯仿(每1 ml匀浆液加0.2 ml氯仿),盖好管盖,用手剧烈振荡15秒,于15-30°C下静置3分钟。

【注:如果样品数多的话,可先于一个无菌的离心管中倒入适量的氯仿,而勿需每次从大瓶子里吸取,这样可以减少污染,亦可加快速度】

2) 4°C,12000 g,离心10分钟。

3) 小心吸出上层无色溶液(约为匀浆液体积的60%)于另一个1.5 ml无RNAase的离心管中。

【注:此步非常需要注意的是,在吸取上清时,切勿切勿将中间和底层的有机相吸出,宁愿少吸一点上清。同时,最好是用小枪头吸,这样就可以保证不吸到中间相】

4) 加无RNAase的糖原10 μg(终浓度约为250 μg/ml,最多不能大于4 mg/ml),盖好管盖,充分振荡后,加入等体积的异丙醇(约400 μl),室温静置10分钟。

【注:1. 糖原应不含RNAase,其作用是能够携带液相RNA溶液,有助于其沉淀。2. 在4°C下静置容易使其它不重要的物质沉淀下来,所以最好在室温下静置。3. 如果样品数多的话,可先于一个无菌的离心管中倒入适量的异丙醇,而勿需每次从大瓶子里吸取,这样可以减少污染,亦可加快速度。】

4) 4°C,12000 g,离心10分钟。

5) 小心倒去上清。加0.75 ml 75%乙醇清洗沉淀(0.1%DEPC水配制。缓慢用枪头打起沉淀,均匀吹打几次。每1 ml匀浆液加1 ml 75%乙醇),涡旋振荡,混匀。

【注:如果沉淀暂时不用于实验,可在加入0.75 ml 75%乙醇后,于4°C下至少可以保存1周,或于-20°C下至少可以保存1年。】

6) 4°C,7500 g,离心5分钟。

7) 重复步骤5)-6)。

8) 小心倒去上清,轻甩2下后,用移液器小心将离心管内残余的液体吸出,打开管盖,将沉淀于操净台上晾干(5分钟即可,完全晾干后反而会降低沉淀的溶解另外,亦可将装有沉淀的管子盖紧盖子后,放进一次性手套中,然后打开管盖,稍微包扎手套后,于50°C 烘箱中放置3分钟即可)。

【注:如果来不急做完下面的工作,可将步骤8)所得到的沉淀于-80 °C保存。第二天直接从步骤9)开始做,这样就可以增加RNA的保存,防止降解。】

RNA提取心得/经验/体会/纪律(RNA提取注意事项)!(2009-08-30 00:05:37)转载▼标签:rna提取心得体会注意事项ep 枪头氯仿研钵ml 水瓶毛毛校园分类:专业知识

纪律一:杜绝外源酶的污染。

注意一:严格戴好口罩,手套。

注意二:实验所涉及的离心管,Tip 头,移液器杆,电泳槽,实验台面等要彻底处理。

注意三:实验所涉及的试剂/溶液,尤其是水,必须确保RNase-Free。

纪律二:阻止内源酶的活性

注意四:选择合适的匀浆方法。

注意五:选择合适的裂解液。

注意六:控制好样品的起始量。

纪律三:明确自己的抽提目的

注意七:任何裂解液系统在接近样品最大起始量时,抽提成功率急剧下降。

注意八:RNA 抽提成功的唯一经济的标准是后续实验的一次成功,而不是得率。

Rnase 污染的10大来源

1:手指头–手指头是外源酶的第一来源,所以必需戴手套并且频繁更换。另外,口罩也必需戴,因为呼吸也是一个重要的酶来源。戴手套口罩的另外的好处是保护实验人员。

2:枪头,离心管,移液器–单纯的灭菌是不能灭活Rnase 的,所以枪头和离心管要用DEPC 处理,即使是标明为DEPC 处理过的。移液器最好是专用的,用前用75% 的酒精棉球搽拭干净,尤其是杆子;另外,一定不要使用褪头器。

3:水/缓冲液–一定要确保无Rnase 污染。

4:实验台面–最起码要用75% 的酒精棉球搽拭干净。

5:内源Rnase –所有组织均含内源酶,故组织用液氮速冻是降低降解的最好办法。液氮保存/碾磨方法的确不方便,但对有一些内源酶含量很高的组织,却是唯一的办法。

6:RNA 样品–RNA 抽提产物可能都会含痕量的Rnase 污染。

7:质粒抽提–质粒抽提往往用到Rnase 降解RNA,残留的Rnase 要用Proteinase K 消化,PCI 抽提。

8:RNA 保存–即使低温保存,痕量的Rnase 亦会导致RNA 降解。长期保存RNA 的最好办法是盐/醇悬液,因为醇在低温时抑制所有的酶活性。

9:阳离子(Ca, Mg) –在含这些离子时,80C 加热5 分钟会导致RNA 被剪切,故如果RNA 需要被加热,保存液需要含螯合剂(1mM Sodium Citrate, pH 6.4)。

10:后续实验所用的酶–酶均有可能被Rnase 污染。

RNase 和DEPC 处理

1:高压灭菌是可以灭活部分Rnase A 的。实验证明:37 C 与RNA 反应,没有灭菌的PBS,活性点为100 pg/ml;灭菌后,活性点为100 ng/ml。当然,灭菌后Rnase 仍然不能认为没有残留。

2:DEPC 在水中半衰期为30 分钟。0.1% 的DEPC 灭菌15 分钟可以认为彻底破坏了DEPC。破坏后可以闻到一点气味。

3:在1M Tris, 1M HEPES, 1M MOPS 中分别加入1ug/ml Rnase A 和0.1% 及1% DEPC 实验。结果提示,0.1% DEPC 只对MOPS 有效,而1% DEPC 对三种试剂都有效。

4:0.01% DEPC,0.1% DEPC,1% DEPC 有效去除Rnase A的浓度分别为:100 ng/ml,500ng/ml,1 ug/ml。但要注意,DEPC 灭活后的副产品,对有些后续实验是有影响的。我也来谈谈RNA的提取,我觉得14楼说的方法很严格,但是有时候我们其实不必在过多的细节上太紧张。而在有些步骤一定要小心了。以下的内容,是讲给那些既想偷懒,有希望实验结果有保证的人听的,如果你是习惯于每一步都很严格的人的话,建议还是按照14楼的方法做,因为那样才是正途啊。

好了,下面是给想偷懒,但又不想搞砸实验的战友看的。用最少的时间,Money,力气,来做出最好的结果,是我们的终极目标(PS:我相信一句话,懒人推动科技进步!个人愚见,大家不要拍我啊)。我是做植物的,所以以植物RNA提取为例子:

一、关于器皿的处理:

枪头ep管最好是用DEPC处理一下,当然如果老板钱多的话,尽管用进口的RNase-Free的吧。这里,如果你想要偷点懒,也是有办法的,就是少处理一些ep管,因为后面我们会讲到,不是所有的ep管都一定要处理的。

研钵,这个东西按要求是要高温干燥处理的,但是在实际实验中,如果你不处理的话,

也不会有太大的影响。因为在一般我们要处理的材料上都会带有很多的RNA酶,设想一下,一个研磨碎了的细胞会释放多少RNA酶出来。所以,在研钵上残留的那些RNase,不是导致你RAN降解的原因。我的做法是,洗干净的研钵,和枪头等一起湿热灭菌即可。如果你真的很急的话,连湿热灭菌也免了。

关于手套、口罩和实验台。手套是一个很重要的东西,这个千万不能省,而且实验过程当中要勤换手套。因为,一般我们在做实验是时候,还要取用很多其他试剂、仪器。所以手套往往是最有可能污染你样品的东西。所以千万记得要换得勤快点。还有,顺便说一下,最好是戴两层PE手套,因为实验过程中,往往手上会出汗,戴一层手套的话,往往脱下来,就很难戴上去了。戴上两层,外层的手套可以方便更换,免得戴不上,还把PE手套夹到ep管里面,这样可是很危险的!至于口罩,我认为,不戴也没关系,但不戴口罩的话,建议你少说些话了,尤其是不要对这样品。讲话是时候,带出去的口水,足够降解你的样品了。工作台的话,我想,能在一个超净台上是最好,普通的bench也可以,但是要保证周围没人干扰,否则,有人冲你打个招呼,那喷过来的口水就够让你的RNA嗝屁了(像口水兵?)。

二、关于实验过程和试剂

通常,提取植物RNA的方法如下

试剂:Trizol,氯仿,75%乙醇,异丙醇,DEPC水;

操作:

1)、每100mg组织加1ml TRIZOL试剂,用液氮匀浆后,室温放置到变成液态;

2)、将液体吸到1.5 ml EP管中(可以用没有经DEPC处理的ep管),加新开的氯仿0.2ml,振荡15秒。

3)、室温静置2-3分钟后,12000 rpm,15 min,4℃,离心。

4)、取0.5ml上清到ep管(DEPC处理)加等体积的氯仿重新抽提;4℃,12000g,15min;

5)、取上清无色水相(约0.6 ml)到EP管(DEPC处理过),加0.5 ml新开的异丙醇,室温下静置10分钟;

6)、12000 rpm,15分钟,4℃,离心。观察总RNA在管底的白色沉淀,弃去上清(小心别倒了沉淀),75%乙醇1.0 ml洗涤(用DEPC水新配制)后,7500 rpm,5 min,4℃离心。

7)、重复洗涤(可选);

8)、去上清,用10 ul Tip吸干液体。气干沉淀5-10分钟;

9)、加DEPC水20-30 ul,枪打匀,溶解总RNA,测OD值。

10)、电泳,检测RNA质量。

讲一下注意事项和可以偷懒的地方。Trizol现在我发现好多实验室都是自己做的,所以也不要吝啬,多加一点吧,这个东西可以有效的抑制RNase的活力,情愿偏多,不要偏少。

第1)步,在磨样的时候,注意,千万要保持低温,尤其是开始还没加Trizol的时候,千万不要让样品的温度升高了,否则就可以和你的RNA说拜拜了。在加了Trizol后,情况会好些,如果研磨充分,那就暂时安全了。

第2)步的时候,这里直接加了氯仿,不少protocol上都还要多一步,先离心去渣,取上清后再加氯仿,这两步完全可以合并,而且感觉合并的话,似乎RNA得率还高些!而且省下一批ep管,还省下一步的时间。

3)、4)和5)就按照protocol做,可以放松点,注意用处理过的ep管就好了,一般不会有降解的危险。

第6)和7)两步的洗涤会明显的减少RNA的盐含量,对提高RNA质量有很大的帮

助,当然也会同时损失掉一部分的RNA,所以洗几次,就看你的要求了。

后面几步,大家就要小心了,现在剩下的可都是精贵的RNA了,做了几个小时,可别前功尽弃啊。最后一步,推荐使用进口ep管,进口管不容易把液体挂在管壁上,这样,将来取用的时候,损失会小不少。

三、其他

在批量提取的时候,建议用个大点的ep管架子,否则ep管挤在一起,手戴着手套,一不小心,就容易打翻样品(哭吧,如果就一份样)!

枪头的话都是高温成型的,如果你使用是枪头是没开封过的,一般不用DEPC处理也没问题。主要是怕二次污染,有些工厂是用人工包装了,不是机器打包的,那建议处理一下。

友情提示,DEPC是疑似致癌物质,使用是时候千万小心!我始终认为,安全是第一位的,如果条件允许的话,尽量使用进口ep管和枪头,这样就不用接触DEPC了。

以上为他人的一点心得,供大家参考,欢迎批评指正(转:水瓶毛毛申明)

相关文档