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DPPH自由基SOP

DPPH自由基SOP
DPPH自由基SOP

主要目的:

——为了测定样品清除DPPH自由基的能力。

主要原理:

——自由基清除剂与DPPH单电子配对而使其吸收逐渐消失,其褪色程度与其接受的电子数量成定量关系,因而可用酶标仪进行快速的定量分析。

实验室签章

一、试剂

——1 ,1-二苯基-1-苦味肼基自由基(DPPH)——甲醇(分析纯)

二、仪器设备

——96孔酶标板

——UV-Vis可见多功能酶标仪

——移液枪

——200 μL量程枪头

三、实验方法

◆前期准备

配置2 g/L 的DPPH甲醇标准溶液。

◆DPPH自由基清除能力

参照Brand-Williams (1995)[1]报道的方法,将其稍加改动后应用在96孔酶标板中[2]。在酶标板的每孔中,依次加入不同体积(10、20、30、40、50、60、70、80、90和100 μL)的样品溶液和200 μL的DPPH标准溶液(2 g/L),最后用甲醇溶液补齐至总体积300 μL。

室温反应30 min后,于515 nm下用UV-Vis可见多功能酶标仪测定其吸光度(EL 340, Bio-Tek Instruments, Inc., Winooski, VT, USA)。番茄样品消除自由基的能力表示为EC50(清除1 μg DDPH至50 %所需的样品用量(μg干重))。

EC50越小,表示抗氧化活性越高。平行测定三次,取平均值计算。

清除DPPH自由基能力用如下公式计算:

清除率%=(1-

Ac Aj

Ai

)×100%

其中:Ai为样品溶液加DPPH试剂混合液的吸光度,Aj为样品溶液加甲醇的吸光度,Ac为DPPH溶液加样品溶剂的吸光度。

[1] Brand-Williams W, Cuvelier M E. Berset C. Use of a free radical method to evaluate

antioxidant activity [J]. LWT - Food Science and Technology, 1995, 28(1): 25-30.

[2] Verma A R, Vijayakumar M, Rao C V. Mathela C S. In vitro and in vivo antioxidant properties

and DNA damage protective activity of green fruit of Ficus glomerata [J]. Food and Chemical Toxicology, 2010, 48(2): 704-709.

微生物实验室管理sop

1.0目的 确保微生物室有一个良好的环境,以便准确完成常规微生物分析实验,以对生产环境、设备的清洗消毒和人员卫生进行有效的监控。 2.0范围 适合微生物实验室人员,环境卫生,设备,试剂、培养基及常规操作的各项要求及管理 3.0职责 3.1微生物品控员负责具体工作的执行。 3.2 QA主任负责监督本文件的有效执行。 4.0程序 4.1人员 4.1.1微生物操作人员需有相关 的工作经验,并具备微生物操作的基本技能,如铺平板、菌落计数、无菌操作。 4.1.2应确保微生物操作人员接受足够的微生物专业培训,以保证其能独立地进 行操作 、准确地完成测试,并保存好记录。 4.2环境 4.2.1微生物操作室配备超净工作台。 4.2.2微生物操作室的墙壁、地板、天花板光滑平整、易于清洁消毒。 4.2.3工作区域里有方便使用电源、抽滤系统,便于取用培养基和实验用品。 4.2.4有适当的通风条件,在空调处安装空气过滤器,确保空气质 量达到10,000级、平时关闭门窗,尽量减少空气对流引起的扬尘。 4.2.5微生物操作 辅助区域有足够的空间处理样品,存放培养基、玻璃器皿和小型 仪器设备;有空间安装固定的仪器设备(如培养箱,水浴锅,冰箱)等。

工作区域要有充足的灯光,光强不小于300lux。实验室应保持整洁。 4.2.6在进行实验前无菌室和超净工作台必须打开紫外灯消毒30分钟。实验完成后 及时整理和清洁台面。 4.2.7实验室必须考虑实验室内外环境污染的可能性,并对之进行有效的监控。 监控的方法如下:1.每天实验前需做空气的微生物测试,测试方法可参见 SOP-QA-MB-015空气的微生物测试。2.每月度用尘埃粒子测定仪测定微生 物 室空气的尘埃粒子数,应达到?>0.5um的粒子<353粒/L,超过标准时则须更 换过滤器。3.每半年更换紫外灯管,以确保紫外灯的杀菌效果。 4.3卫生 4.3.1配备实验室专用服装(包括鞋,帽),实验室工作服避免在实验室以外区域穿 着, 要定期更换、清洗。 4.3.2实验室人员要注意个人卫生,应形成经常洗手的习惯,手指甲要剪短。实验前 用70%酒精消毒双手。 4.3.3不得在微生物测试区域吸烟,吃、喝食物。不得在微生物室做与微生物实验无 关的事情和实验。 4.3.4每天打扫实验室,避免积灰。每周用50ppm的氯水消毒地板。(用含有氯水的拖 把 拖地面) 4.3.5尽量避免过多的人在微生物室走动,无关人员不能进入。 4.4 设备维护、校证和验证

DPPH自由基清除法

DPPH自由基清除法 李熙灿/Xican Li (广州中医药大学) [文献] Xican Li, Jing Lin, Yaoxiang Gao, Weijuang Han, Dongfeng Chen. Antioxidant activity and mechanism of Rhizoma Cimicifugae. Chemistry Central Journal. 2012; 6(1):140. [原理] DPPH(1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl radical)即1,1-二苯基-2-苦基肼基自由基。分子中,由于存在多个吸电子的-NO2和苯环的大π键,所以,氮自由基能稳定存在。 N 2 2 当DPPH自由基被清除,其最大吸收波长519nm处的吸光度A值随之减小。DPPH这种稳定的自由基为清除自由基活性的检测提供了一个理想而又简单的药理模型。 [实验步骤] 1.1 DPPH测试液的配制 取DPPH 1mg溶于约20mL溶剂(乙醇、95乙醇或甲醇)中,超声5min,充分振摇,务使上下各部分均匀。取1mL 该DPPH溶液,在519nm处测A值,使A=1.2-1.3之间最佳。该DPPH溶液最好避光保存,3.5小时内用完。 1.2 样品液的配制 样品用合适的溶剂溶解,为便于计算,可配成1mg/mL浓度。溶剂根据样品的极性进行选择,首选95乙醇或无水乙醇,如不溶可用DMSO。 1.3 预试 取DPPH溶液2mL,往其中加少量样品液,加样时,先少后多渐加,边加边混合,并观察溶液的褪色情况,当溶液颜色基本褪去时,记下样品的加样量。 此加样量即为样品的最大用量,在此最大用量的基础上,往前设置5个用量,使之成等差数列。 【如】在预试过程中,发现加样到200μL时,DPPH溶液颜色基本褪去,则100μL为该样品液的最大用量。其用量梯度宜设为40、80、120 、160、200μL。 1.4测量 A0值的测量:取DPPH溶液2 mL加入到小试管(或玻璃瓶)中,加95乙醇(或无水乙醇)1mL,充分混合,测A值(519nm),此A值为A0(A0多在0.7-0.9之间)。 A值的测量:取DPPH溶液2mL加入到小试管(或玻璃瓶)中,加样品液xμL (x是根据1.3 预试结果确定样品液的用量),再加(1000 -x)μL 95乙醇(或无水乙醇),混合,静置30分钟后,测A值(519nm)。如:某样品的用量梯度为40、80、120 、160、200μL,则加样表如下: 表1 加样表 1.5 正式测量

清除自由基能力的研究概况

清除自由基能力的研究概况 陶涛 (西南林业大学林学院农学(药用植物)昆明 650224) 摘要:自由基及其诱导的氧化反应是导致生物衰老和某些疾病如癌症、糖尿病、一心血管疾病等的重要因素。乳酸茵作为一种高效、低毒的生物源天然抗氧化荆,正逐步受到食品、制药、化工等领域的广泛关注。就目前国内外常用的乳酸茵抗氧化活性的筛选方法、乳酸茵抗氧化机理的国内外研究进展及未来的发展趋势作一综述。 关键词:自由基;乳酸茵;抗氧化. Study on the scavenging ability of lactic acid bacteria on free radical bstract:Free radical and its inducing oxiditative reaction may CaUSe biological doat and certain diseases such as Cancers,diabetes and the cat- diovascular.The lactic acid baaeria as one ofbiological SOUrCeS oxidation inhibitor is becoming more and more popular in the fields offood.,drug manufacture and chemical industry.This article mainly reviews the screening methods for antioxidative of lactic add bacteria among domestic and foreign countries,the advance of the research progress in lactic add bacteria antioxidative and r∞earch trends in future. 引言 氧化过程可以提供能量.对大多数生物体来说,是维持生命必不可少的一个能量转化过程。但过多的氧化过程会对生物大分子引起损伤.氧化损伤主要是由于自由基和过氧化产物作用于人体而产生的。 自由基(free radicals)27..称游离基.为人体氧化代谢过程中形成含有一个不成对电子的原子或原子团。人体的自由基主要包括超氧阴离子自由基(o2)、

实验室生物安全管理规定sop

实验室生物安全管理规定 一. 实验室的设计与建造 1. 实验室门宜带锁、可自动关闭; 2. 每个实验室均设置洗手池,宜设置在靠近出口处; 3. 实验室围护结构内表面应易于清洁,不适宜用地毯。地面应防滑、无缝隙; 4. 实验台表面应能防水,耐酸碱、耐有机溶剂、耐热,耐用于消毒的相关化学物质; 5. 实验室中的家具应牢固。各种家具和设备之间应保持一定间隙,以易于清洁。实验室使用的椅子及其它器具,应覆盖易于清洗的非织物; 6. 应设置实施各种消毒方法的设施,如高压灭菌锅、化学消毒装置等对废弃物进行处理. 7. 应有专门放置生物废弃物的容器。 8. 应设置洗眼装置。 9. 实验室出口应有发光指示标志。 10. 实验室应有可开启的窗户,应设置纱窗。 11. 实验室宜有不少于每小时3~4次的通风换气次数。 12. 安装生物安全柜时,注意房间的通风和排风,不会导致生物安全柜超出正常参数运行。生物安全柜应远离门、远离能打开的窗,远离行走区,远离其他可能引起风压混乱的设备,保证生物安全柜气流参数在有效范围内。 二. 实验室安全设备及个体防护 1、实验室应配备必要的生物安全柜或其它物理遏制装置并正确使用,以二级以上(含二级)生物安全柜为宜。 2、当必须在生物安全柜外处理微生物时,需采取面部保护措施如眼镜、口罩、面罩或其它防溅装置。 3、在实验室内工作必须使用专用的防护性外衣或制服。人员到非实验室区域(如休息室、图书馆、门房)时,防护服必须留在实验室。防护服可以在实验室内处理,也可以在洗衣房中洗涤,但不能带回家中。 4、可能接触潜在传染源、被污染的实验台表面或设备时,需戴手套。当检测工作结束时或手套破损时,应摘除手套。一次性手套不用清洗、不能重复使用。戴手套不能接触“洁净”设施表面(如键盘、电话等),也不宜到实验室外。脱掉手套后,要洗手。 5.可能产生致病微生物气溶胶或出现溅出的操作包括离心、剧烈震荡或混匀、开启装有传染源的容器(容器内部的压力可能与大气压不一致)均应在生物安全柜或其他物理抑制 彭泽县中医院 检验科 实验室生物安全管理规定 文件编号:PZFB SWAQ-001 共2页

DPPH和ABTS、PTIO自由基清除实验-操作图解-李熙灿-Xican-Li

DPPH?和ABTS+?自由基清除实验(含PTIO?自由基清除实验):详细说明与疑难解答 李熙灿(广州中医药大学中药学院, 2019.7) (以下内容系来源于实验经验及三个参考文献[1]Li, X., Comparative Study of 1,1-Diphenyl-2-picryl-hydrazyl Radical (DPPH?) Scavenging Capacity of the Antioxidant Xanthones Family. Chemistryselect, 2018. 3,13081-13086. [2]Li, X.; Ouyang, X.; Cai, R.; Chen, D. 3’,8”-Dimerization Enhances the Antioxidant Capacity of Flavonoids: Evid ence from Acacetin and Isoginkgetin. 2019, Molecules. 24, 2039. [3]Li, X.C., 2-Phenyl-4,4,5,5-tetramethylimidazoline-1-oxyl 3-Oxid e (PTIO?) Radical Scavenging: A New and Simpl e Antioxidant Assay In Vitro. J. Agric. Food Chem., 2017. 65,6288-6297 【概述】DPPH?、ABTS+?、PTIO?自由基三者,都是常用的自由基。概述如下表: 1

紫色墨绿色蓝紫色 2

3

DPPH抗氧化能力测定

DPPH.法测定绿原酸清除自由基能力 2.1 待测液的制备 将绿原酸(纯度56%)、维生素C 和没食子酸分别配制成体积分数为0.1mg/mL 的无水乙醇溶液。 2.1.1 绿原酸母液的配制 称取 9.0 mg 绿原酸,定容到50ml ,即可得到绿原酸的母液0.1mg/mL 。然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。 分别为 mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml 。 2.1.2 Vc 母液的配制 称取 mg VC ,定容到100ml ,即可得到VC 的母液。然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。 分别为 mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml 。 2.1.3 没食子酸母液的配制 称取 mg 没食子酸,定容到100ml ,即可得到没食子酸的母液。然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。 分别为 mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml 。 2.1.4 DPPH 母液的配制 称取 mg DPPH ,用无水乙醇定容到100ml ,即可得到DPPH 的母液。然后,再将所配制的母液按照要求稀释成至一定浓度的溶液。C DPPH = mg/ml 。(建议用0.025mg/mL ) 2.2 DPPH.溶液的可见光谱 以无水乙醇为对照,在分光光度计上对DPPH.溶液进行在440~600nm 下扫描。A max = nm 2.3 抗氧化活性测定 DPPH.是一种稳定的自由基,它的乙醇溶液呈紫色,在可见光区最大吸收峰为 nm 。当DPPH.溶液中加入自由基清除剂时,溶液颜色变浅,517nm 处的吸光度变小,而吸光度变小的程度与自由基被清除的程度呈线性关系。因此,可用来检测自由基的清除情况,从而评价某物质的抗氧化能力,其能力用清除率(Scavenging Rate,SR)来表示,清除率越大,抗氧化能力越强 [4.5]。 具体实验步骤及方法: 精确吸取的DPPH.溶液2mL 与2ml 无水乙醇混合均匀后,以相对应的溶剂(4mL 无水乙醇)为对照,用分光光度计测定上述溶液在 nm 处的吸光度值(A 0)。 A 0= 2.3.1 绿原酸样品溶液的抗氧化能力测定 精确吸取上述不同浓度的绿原酸溶液2mL ,分别与浓度 mg/ml 的DPPH.溶液2mL 混合,摇匀后放置30min 。以相对应的溶剂(无水乙醇)为对照调零,用分光光度计分别测定上述溶液在 nm 处的吸光度值(A i ),分别测得A i 值。 A 1 ;A 2 ;A 3 ;A 4 ;A 5 ;A 6 ;A 7 。 精确吸取上述不同浓度的绿原酸溶液2mL ,分别与2mL 无水乙醇混合均匀后,以无水乙醇为对照,用分光光度计分别测定各混合液在波长 nm 处的吸光度值(A j ),分别测得A j 值。 A 1 ;A 2 ;A 3 ;A 4 ;A 5 ;A 6 ;A 7 。 将以上数据代入下列公式计算其清除率。 清除率SR(%)=%100A A A 10j i ???? ? ?? -- 其中, A i :为2mL 绿原酸、维生素C 和没食子酸与 2mL 的DPPH.溶液混合后在波长 nm 处的吸光度值; A j :为2mL 绿原酸、维生素C 和没食子酸分别与2mL 无水乙醇溶剂混合后在波长 nm 处的光值; A 0:2mLDPPH.溶液与2mL 无水乙醇溶剂混合后在波长 nm 处的吸光度值。

1、实验室管理SOP资料讲解

实验室管理SOP Issuing Department/颁发部门:【质量保证部】 Effective Date/生效日期:【2013 年4 月1 日】 Valid Date/有效期至:【2015 年3 月31日】 Distribution List/分发清单: 质量保证部 [√] 质量控制部 [√] 物流仓储部 [] 工程部 [] 生产部 [] 冻干车间 [] 水针车间 [] 生化提取车间 [] 人资行政部 [] 营销中心 [] 供应部 [] 总经理办 [] 安全办 [] 其他部门 []

Content目录 1. Objectives/目的 (3) 2. Scope/范围 (3) 3. Definitions/定义 (3) 4. Responsibilities/职责 (3) 5. Reference standard/引用标准 (3) 6. Resource/材料 (3) 7. Flow chart/流程图 (3) 8. Procedures/程序 (3) 9. EHS (7) 10. Derived Records/派生记录 (7) 11. Notice/注意事项 (7) 12. Related Documents/相关文件 (7) 13. Revision History/变更记载............................................................... 错误!未定义书签。

1. Objectives/目的 本规程用于规范质量控制部实验室的管理,保证仪器、试剂、实验条件等满足实 验要求,以确保实验结果的准确性。 2. Scope/范围 本规程适用于质量控制部各实验室,包括天平室、理化室、仪器室、标定室、留 样室以及各辅助实验室等。微生物室、动物实验中心及其辅助室另行规定。 3. Definitions/定义 无 4. Responsibilities/职责 4.1. 本规程由质量控制部起草、修订、审核、培训及实施。 4.2. 本规程由质量保证部审核。 4.3. 本规程由质量总监批准。 4.4. 质量控制部负责执行本规程。 5. Reference standard/引用标准 5.1. 《药品GMP指南:质量控制实验室与物料系统》2010年修订 5.2. 《中国药典》2010年版 5.3. 《药品生产质量管理规范》2010年修订 6. Resource/材料 无 7. Flow chart/流程图 无 8. Procedures/程序 8.1. 职责 8.1.1. 各级人员的岗位责任制度:一切的仪器领用、外借、归还必须通过管理人员。8.1.2. 实验室每个辖区有专人负责,负责人职责: 8.1.3. 检验人员的质量保证制度:执行质量部规定,对原料、出厂样品产品进行检验, 出具检验数据,对检验结果的准确性负责。 8.1.4. 每天一次检查辖区内的仪器设备是否在有效期内,若发现临近有效期,立即同设 备部相关负责人联系,并督促其安排校验。 8.1.5. 每天一次检查辖区内的试液试剂是否在校验有效期内,内容物是否沉淀、结晶等 现象,若过期或有沉淀结晶,立即按废物处理。并对其外表面进行清洁,确保试

DPPH自由基SOP

主要目的: ——为了测定样品清除DPPH自由基的能力。 主要原理: ——自由基清除剂与DPPH单电子配对而使其吸收逐渐消失,其褪色程度与其接受的电子数量成定量关系,因而可用酶标仪进行快速的定量分析。 实验室签章

一、试剂 ——1 ,1-二苯基-1-苦味肼基自由基(DPPH)——甲醇(分析纯) 二、仪器设备 ——96孔酶标板 ——UV-Vis可见多功能酶标仪 ——移液枪 ——200 μL量程枪头

三、实验方法 ◆前期准备 配置2 g/L 的DPPH甲醇标准溶液。 ◆DPPH自由基清除能力 参照Brand-Williams (1995)[1]报道的方法,将其稍加改动后应用在96孔酶标板中[2]。在酶标板的每孔中,依次加入不同体积(10、20、30、40、50、60、70、80、90和100 μL)的样品溶液和200 μL的DPPH标准溶液(2 g/L),最后用甲醇溶液补齐至总体积300 μL。 室温反应30 min后,于515 nm下用UV-Vis可见多功能酶标仪测定其吸光度(EL 340, Bio-Tek Instruments, Inc., Winooski, VT, USA)。番茄样品消除自由基的能力表示为EC50(清除1 μg DDPH至50 %所需的样品用量(μg干重))。 EC50越小,表示抗氧化活性越高。平行测定三次,取平均值计算。 清除DPPH自由基能力用如下公式计算: 清除率%=(1- Ac Aj Ai )×100% 其中:Ai为样品溶液加DPPH试剂混合液的吸光度,Aj为样品溶液加甲醇的吸光度,Ac为DPPH溶液加样品溶剂的吸光度。 [1] Brand-Williams W, Cuvelier M E. Berset C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity [J]. LWT - Food Science and Technology, 1995, 28(1): 25-30. [2] Verma A R, Vijayakumar M, Rao C V. Mathela C S. In vitro and in vivo antioxidant properties and DNA damage protective activity of green fruit of Ficus glomerata [J]. Food and Chemical Toxicology, 2010, 48(2): 704-709.

实验室标准SOP

实验室标准SOP I. 目的:Purpose 综述实验室运作管理各方面的规范。The purpose of this SOP is to summarize Lab Operation management II. 范围:Scope 该SOP的范围是XXXXXQC实验室的管理。This SOP is applicable for ShangHai XXXXXQC laboratory operation management. III. 职责:Responsibility QC经理负责建立该SOP和维护它的适用性和执行有效性, QC各主管及各组组长负责本SOP的具体实施。QC manager is responsible for developing this SOP and maintaining its suitability and effectiveness. All QC supervisors and group leaders shall implement this SOP. IV. 程序:Procedure A. 实验室运作SOPs的架构 Lab Operation SOPs main structure overview 1. 实验室人员, 设施管理: 包括但不限于实验室人员资格确认、健康安全卫生管理,设施管理,其主要内容见本SOP。 Lab personnel, facility management: including but not limited to Lab Personnel Qualification, healthy/safety/environment management, facility management. These items content are in this SOP. 2. 质量规格和测试方法管理SOP主要包括: Specifications and Test Methods management SOPs include: QC-2 原料/中间体/成品的质量规格的管理Quality Specification Management of Raw Material/Intermediate/Finished Product . 3.实验室仪器/设备的管理SOP主要包括: QC-3 实验室仪器/设备的确认Laboratory Instruments/Equipment Qualification, SLQC-4 实验室仪器的校准和维护 Laboratory Instruments Calibration and Maintenance以及每个仪器的操作程序 and all Lab Instruments/Equipment Operation Procedures. 3. 实验室样品的管理SOP:包括样品的接受,保存,监控,使用,处理以及留样 : QC-5 实验室样品管理 Laboratory Sample management, including Reserve Samples management. 4.标准品及试剂的管理Reference Standard and Reagents management: QC-6 实验室试剂管理 Lab Reagents Management, SLQC-7 实验室标准品管理Lab Reference Standard Management. 4. 实验室记录和文件管理Lab Records and Documentation Management: QC-8 实验室记录和文件管理规范Lab Records and Documentation Practice.

(完整版)抗氧化试验方法

一、试验方法 1、DPPH自由基清除率的测定 本实验采用1,1-diphenyl-2-picryhydrazyl(DPPH)法测定样品清除自由基活性。 1.1实验原理 1,1-二苯基-2-苦肼基(1,1-diphenyl-2-picryhydrazyl(DPPH))是一种稳定的以氮为中心的自由基,其乙醇溶液显紫色,最大吸收波长为517nm。当DPPH 溶液中加入自由基清除剂时,其孤对电子被配对时,吸收消失或减弱,导致溶液颜色变浅,显黄色或淡黄色,在517nm处的吸光度变小,其变化程度与自由基清除程度呈线性关系,故该法可用清除率表示,清除率越大,表明该物质清除能力越强。 1.2溶液的配制 0.08mmol/L DPPH溶液的配制:精密称取DPPH8.0mg,用无水乙醇溶解并定容至200ml棕色容量瓶中,得浓度为0.004%的DPPH溶液,避光保存,备用。 1.3实验步骤:分别取不同浓度的各样品溶液(0.24,0.48,0.72,0.96,1.20mg/ml)1.0ml,置10ml离心管中,加入3.0ml的DPPH溶液,室温避光反应30min,同时以无水乙醇为空白,于517nm波长处测定吸光值。按下列公式计算DPPH自由基清除率。 DPPH自由基清除率(%)= A0-(A s-A c)/ A0×100% 公式中,A0—1.0ml蒸馏水+3.0mlDPPH溶液的吸光度值 A s—1.0ml样品溶液+3.0mlDPPH溶液的吸光度值 A c—1.0ml样品溶液+3.0ml无水乙醇的吸光度值

将实验重复三次,求得清除率的平均值。 2、总的抗氧化活性的测定 总的抗氧化活性实验采用改良后的Prieto法。 2.1实验原理:磷钼络合物测定方法的原理是Mo(VI)被抗氧化物质还原成绿色的Mo(V)络合物,其最大吸收波长为695nm。抗氧化物质活性越强,测定的吸光度值越大。此方法操作简单,所用试剂低廉、方法重现性好,非常适合抗氧化性的测定。 2.2溶液的配制 样品液:同上 磷钼试剂:0.6mol/L浓硫酸溶液、28mmol/L磷酸钠溶液和4mmol/L钼酸胺溶液混匀,即得。 2.3实验步骤 分别取不同浓度的各样品溶液(0.24,0.48,0.72,0.96,1.20mg/ml)1.0ml,置10ml 离心管中,加入3.0ml试剂溶液(试剂溶液中包括0.6mol/L的硫酸、28mmol/L 的磷酸钠、4mmol/L的钼酸铵)。混合液于95℃水浴锅中分别水浴30min,60min、90 min、120 min、150 min。 放冷至室温,695nm处测吸光度值。以蒸馏水为空白,吸光度值越大,表明抗氧化能力越强。BHT做为阳性对照。将实验重复三次,求平均值。 三、还原力的测定 3.1 实验原理 以普鲁士蓝[Fe4(Fe(CN)6)3] 之生成量作为指标,将六氰合铁酸钾[K3 Fe(CN)6] 还原成K4Fe(CN)6,再利用Fe3+形成Fe4(Fe(CN)6)3,由700nm处吸光

清除自由基研究方法汇总

电子自旋共振法(ESR)、高效液相色谱法、化学发光法、比色法、分光光度法 自由基清除剂也称为抗氧化剂,可清除体内多余的自由基,减轻它们对机体的损伤。目前常用超氧阴离子自由基体系(O2-·)、羟基自由基体系(·OH)、二苯代苦味酰基自由基体系(DPPH·)对某抗氧化剂的体外清除自由基能力进行了研究。 其中ESR法和气相色谱法、HPLC 法对自由基的检测灵敏度高,但对设备要求较高,操作复杂,无法在一般实验室普及。而其中的分光光度法、化学发光法、荧光分析法等不需要昂贵的仪器,易于被一般实验室所采用,但测定过程中的干扰因素较多,容易对测定的准确性和灵敏度造成影响。分光光度法最常用。 原理部分: 1.DPPH·法测试机理 DPPH·(二苯代苦味脐基自由基)的甲醇溶液呈深紫色,可见光区最大吸收峰为492nm。当自由基清除剂加入到DPPH·溶液中时,DPPH·的单电子被配对而使其颜色变浅,在最大吸收波长处的吸光度减少,而且颜色变浅的程度与配电子数成化学计量关系,因此,可通过吸光度减弱的程度来评价自由基被消除的情况。 2. 羟基自由基(·OH) 1)邻二氮菲法[70]

实验原理:邻二氮菲可与Fe2+形成络合物,此络合物在510nm 处有最大吸收峰,是一常用的氧化还原指示剂,其颜色变化可敏锐地反映溶液氧化还原状态的改变。H2O2/ Fe2+体系可通过Fenton 反应产生羟自由基,邻二氮菲-Fe2+水溶液被羟自由基氧化为邻二氮菲-Fe3+后,其510nm 最大吸收峰消失。如果反应体系中同时存在羟自由基清除剂,则Fenton 反应产生的羟自由基将被此清除剂全部或部分清除,邻二氮菲-Fe2+络合物受到的破坏将会随之减少。根据这一原理,可建立以A510变化反映自由基清除剂对羟自由基清除作用的比色测定法。 2)水杨酸法[71] 实验原理:羟自由基易攻击芳环化合物产生羟基化合物,因此可用水杨酸捕集Fenton 反应体系中的·OH,生成的2,3-二羟基苯甲酸用乙醚萃取,用钨酸钠和亚硝酸钠显色,然后用分光光度计测定其在510nm 处的吸光值,此吸光值可反映体系中的羟自由基浓度。 3)甲基紫-Fe2+-H2O2反应体系 测定原理:在Fenton反应的基础上加入甲基紫作显色剂,反应式如下: Fe2++H2O2→Fe3++OH-+·OH 甲基紫在酸性溶液中呈现紫色[9],在578nm 处有强吸收。反应产生的·OH 具有高的反应活性,容易进攻高电子云密度点,会与甲基紫中具有高电子云密度的-C=C-基团发生亲电加成反应,使甲基紫褪色。通过测定甲基紫在578nm 处吸光度值的变化可间接测定出·OH 的生成量。当有清除自由基的物质存在时,会阻断甲基紫与·OH 的反应,从而使得甲基紫的颜色有所加重,因此可利用抗氧化剂加入前后溶液吸光度值的变化来评价物质的抗氧化性强弱。

实验室管理规程

1.目的 规范实验室工作管理,确保检测的科学合理进行,保证检测结果的准确可靠。 2.范围 适用于实验室的管理。 3.职责 3.1.质保部负责本规程的执行。 3.2.其他部门协作质保部执行本规程。 4.规程 4.1.人员 4.1.1.微生物实验室应设置质量负责人、技术管理者、检验人员、生物安全负责人、生物安全责任人、生物安全监督员、菌种管理员及相关设备和材料管理员岗,可以设置一人多岗设置。 4.1.2.从事药品微生物试验工作的人员应具备微生物学或相近专业知识的教育背景。 4.1.3.检验人员必须熟悉相关检测方法、程序、检测目的和结果评价。微生物实验室的管理者其专业技能和经验水平应与他们的职责范围相符,如:管理技能、实验室安全、试验安排、预算、实验研究、实验结果的评估和数据偏差的调查、技术报告书写等。 4.1.4.实验人员应依据所在岗位和职责接受相应的培训,在确认他们可以承担某一试验前,他们不能独立从事该项微生物试验。应保证所有人员在上岗前接受胜任工作所必需的设备操作、微生物检验技术等方面的培训,如无菌操作、培养基制备、消毒、灭菌、注平板、菌落计数、菌种的转种、传代和保藏、微生物检查方法和鉴定基本技术等,经考核合格后方可上岗。 4.1. 5.实验人员应经过实验室生物安全方面的培训,熟悉生物安全操作知识和消毒灭菌知识,保证自身安全,防止微生物在实验室内部污染。 4.1.6.实验室应制定所有级别实验人员的继续教育计划,保证知识与技能不断地更新。 4.1.7.实验室应确定人员具备承担实验室活动的能力,以及评估偏离影响程度的能力。可通过参加内部质量控制、能力验证或实验室间比对等方式客观评估检验人员的能力,并授权从事相应的实验室活动,必要时对其进行再培训并重新评估。当使用一种非经常使用的方法或

A清除自由基实验方法

1、DPPH 自由基清除实验 取0.2 mL 样品,加入4 mL 醋酸缓冲溶液、3.8 mL 乙醇和2 mLDPPH,混合均匀后室温避光放置30 min,测定在517 nm 处的吸光度A。同理,取0.2 mL 样品、4mL 醋酸缓冲溶液和3.8 mL 乙醇,测定在517nm处的吸光度A b。4 mL 醋酸缓冲溶液、4 mL 乙醇和2 mL DPPH,测定在517 nm 处的吸光度A0。自由基的清除率=[A0-(A-Ab)]/A0。 2、ABTS 自由基清除实验 20 mL 的7 mmol/L ABTS 和352 μL 的140 nmol/L 过硫酸钾混合,在室温、避光条件下静置过夜,形成ABTS+自由基储备液。该储备液在室温、避光的条件下稳定,使用前用无水乙醇稀释成工作液,要求其在30 ℃、734 nm 波长下的吸光度为0.7±0.02。加入的提取液0.1 mL、ABTS 工作液5 mL,混合均匀后在室温下避光反应10 min 后,在734 nm 处测定吸光度At。ABTS 溶液作空白吸光度为Ar,样品0.1 mL、乙醇5 mL 混合均匀吸光度为A0。 ABTS+自由基清除率(%)=[1-(At-A0)/Ar]×100 式中:At 为样品的吸光值;Ar 为空白的吸光值。 3、超氧阴离子清除实验 采用邻苯三酚自氧化法,取4 mL 0.1 mol/L pH8.2 Tris-HCl 缓冲溶液和蒸馏水2 mL,混匀后在25 ℃水浴中保温20min,然后加入样品溶液2 mL,取出后立即加入在25 ℃预热过的5 mmol/L 邻苯三酚0.5 mL(以10 mmol/L HCL 配制,空白管用10 mmol/L HCL 代替邻苯三酚的HCL 溶液),摇匀后倒入比色皿,325 nm下每隔30 s 测定吸光度,连续测定4 min,计算线性范围内每分钟吸光度的增加。在加入一定体积样品溶液时,减少蒸馏水的体积。 抑制率(%)=(△A0-△A)/△A0×100 式中:△A0 为邻苯三酚的自氧化速率;△A 为加入样品溶液后邻苯三酚的自氧化速率。

实验室的设置及管理sop

XX医院微生物实验室 工作程序文件 质量手册 实验操作者:XXXXXXXXXXXXXXXXX 执行日期:2003年4月6日

程序文件目录 01 实验室的设置及管理 02 实验室内务管理制度 03 实验室人员配置及管理 04 实验室工作人员职责 05 生物防护措施 06 废弃物的处理程序 07 实验室清洁程序 08 仪器设备的管理程序 09 仪器设备的操作程序 10 仪器设备维护和保养程序 11 仪器设备的校准程序 12 实验室临床检测项目操作程序 13 实验室试剂、耗材购买和管理程序 14 临床标本的管理程序 15 实验记录管理程序 16 检测结果报告程序 17 室内质量控制程序 18 室间质评管理程序 19 抱怨的处理程序 20 应急处理程序 21 实验室保密制度 22 实验室工作制度

实验室的设置及管理 1.目的:建立实验室的合理设置和科学管理,最大限度防止实验误差,保证检验结果的可靠 性。 2.本程序的改动程序: 3.本程序的改动,可由任一使用本程序的工作人员提出,经论证其合理性后,报经科主任 批准签字后实施。 4.适用范围:本程序适用于微生物检验实验室的设置、工作流程和日常管理等。 5.程序: 4 .1 微生物检验实验室为检验科下设的专业实验室,从事临床标本的微生物检验、感染控制及相关实验工作。 4.2 本实验室采用VITEK32全自动微生物分析系统作为临床微生物检验的主要手段,实验室分为配剂室、鉴定室、标本处理室和无菌室,每一工作区各配备专用的设备、仪器、辅助设施、耗材、清洁用品、办公用品。 4.3 各工作区有专用的仪器设备、办公用品、实验耗材和清洁用具等,不可混用。 4.4 各工作区配置、功能和内务管理见各区工作制度和相关SOP文件。 4.5 严格遵守微生物实验室的隔离制度,见相关SOP文件。 4.6 非本实验室工作人员,未经许可不得入内;进修、实习或其他科室人员因科 研活动需要,进入实验区域需首先熟悉本程序的各项规定并严格遵守执行,在本实验室人员监督指导下进行。 4.7 实验完毕后做好清洁消毒工作。 4.8污染的处理:实验中若在操作台面上发生标本或液体外泄,应立即用浸有10%次氯酸钠溶液的卫生纸覆盖发生污染处,半小时后再用软布浸水擦拭干净。 6.引用的文件及图表 5.1 实验室布局图:Lab_view 5.2 微生物检验实验室工作制度:proc_lab_12 5.3试剂配制区工作制度:Sop_regu_regnt; 5.4样本处理区工作制度:sop_regu_prep; 6.5鉴定区工作制度:sop_regu_measu; 5.6 实验室内务管理制度:proc_lab_2

PCR实验室7500SOP

【】ABI 7500型核酸扩增荧光检测仪使用、维护、校准程序-LAB-SOP-FZSW-011 1.目的:确保ABI7500仪器的正确使用及正常运行 2.适用范围:美国应用生物系统公司生产的ABI7500实时荧光定量PCR仪 3.运行环境:电源:推荐配备合适的UPS或稳压器。 通风:仪器的通风应该没有阻挡。 温度:推荐实验室配备空调,温度应该控制在10~30℃之间。 湿度:20-80%;对于潮湿的省份,推荐实验室配备除湿机。 空间:易于操作,安全。 4.操作程序: 4.1开关机程序: 开机顺序:先开电脑,待电脑完全启动后再开启定量PCR仪主机,等主机面板上的绿灯亮后即可打开ABI7500系统软件,进行实验。 关机顺序:确认实验已经结束后,首先关闭ABI7500系统软件,然后关掉定量PCR仪主机的电源,最后关闭电脑。 4.2 创建绝对定量反应板文件: 4.2.1依次选择 Start > Programs > Applied Biosystems 7500 >Applied Biosystems 7500 SDS Software ( ),以启动 SDS 软件;或在桌面双击Applied Biosystems 7500 SDS Software ( )图标。 4.2.2选择 File (文件) > New (新建)。 4.2.3在 New Document Wizard (新建文件向导)窗口中,从 Assay (实验)下拉列表中选择Absolute Quantification (Standard Curve)(绝对定量,标准曲线)。接受 Container (反应板类型)和 Template (模板)字段中的默认设置(即分别为 96-Well Clear(空白96 孔板)和 Blank Document(空白反应板))。 4.2.4在 Default Plate Name (默认反应板名)字段中输入反应板文件名,或接受默认文件名。 4.2.5单击 Next > (下一步>)。 4.2.6选择要添加到反应板文件的探针。 A)单击以选择一个探针。(按住 Ctrl 键单击可选择多个探针。)如果在 Detector Manager (探针管理器)列表中未列出探针,请创建探针。 B)单击 Add >>(添加>>)。探针即被添加到反应板文件。 C)单击 Next > (下一步>)。 4.2.7为每个反应孔指定探针和任务。 A)单击一个反应孔(或对于重复选择一组反应孔)以选取它(们)。 B)单击探针名,为反应孔选定探针。 C)单击 Task (任务)栏的下边,以指定探针任务。 D)为包含标准样本的反应孔输入量值。

实验室管理规程

实验室管理规程 1.目的: 建立实验室人员、设施、仪器、试剂、安全卫生等管理规程,以便全体试验人员遵照执行,确保试验工作的规范性。 2.责任者:全体研发人员 3.人员 3.1实验室人员应进行GMP知识和岗位专业知识的全员培训。 3.2实验室人员应熟悉掌握本岗位的操作规程与岗位质量责任制,并严格按现行标准操作规程执行。 3.3实验室人员应遵守公司的各项规章制度,不迟到、不早退。 3.4试验人员不仅应掌握专业基础知识,还应不断接受专业知识和相关法律法规的培训。 4.试验设施 4.1实验室条件应具备满足工作任务的要求,有完善的实验设施。各类实验室应与药品生产区分开;实验室的环境应清洁、卫生、安静、无污染。实验室内的管线设置应整齐,要有安全管理措施和报警、应急及急救设施。用于细菌试验的实验室,应有相适应的安全保护设施。 4.2菌种室、提取试验室、无菌试验室要分立;实验室内应具备相应的空调净化设施和环境,采用局部百级措施时,其环境应符合洁净度要求。实验室内禁放杂物,并应严格执行地面、门窗、墙壁、设施等的定期清洁、灭菌规程。 4.3有特殊要求的仪器应设专门仪器室;放置的场所应符合要求,便于仪器操作、清洁和维修,要有适当的防尘、防震、通风及专用的排气等设施;对温度或湿度变化敏感易影响检测结果的仪器,应备有恒温或除湿装置。仪器所用电源应保证电压恒定,有足够容量,并有良好的专用地线。 4.4仪器设备的种类、数量、各种参数,应能满足所生产的药品检验的需要,有必要的备品、备件和附件。仪器、仪表的量程、精度与分辨率等能覆盖被测药品标准技术指标的要求。4.5具有符合留存样品要求的留样间。 4.6对于易燃、剧毒和有腐蚀性的物质,应按规定存放、使用。各类压力容器的存放、使用,应有安全隔离设施。 5. 安全、卫生 5.1实验室内应按规定要求穿戴洁净的白大衣、工作鞋,必要时配戴护目镜及口罩,长发应束紧。与试验无关的物品禁止带入工作区。 5.2实验室内不得嬉闹、吸烟、吃东西,不准用实验器皿盛装食物。 5.3 进行化验时不得中途离开。 5.4 实验中所用仪器、试剂放置要合理,有序。实验台面要清洁整洁。实验工作结束或暂告一段落时,仪器试剂用品应放回原处,房间要打扫干净,垃圾应放入垃圾桶内,不得随意乱扔或抛入水池中。 5.5 玻璃仪器之清洗:应先以清水冲洗后,再以清洗液洗净,最后用纯化水冲洗,晾干。5.6 不可用口或鼻直接尝嗅化学试剂。 5.7 易燃、易爆试剂,须储放于阴凉通风处,不得直接暴露于阳光下或接近热源。 5.8 皮肤或衣服沾上化学试剂时,应立即用清水冲洗,若喷到眼睛应立即以洗眼器冲洗。5.9 工作完毕应立即洗手,特别是使用有毒物后。 5.10 稀释硫酸时只能将浓硫酸慢慢注入水中,边倒边搅拌,不得反向操作。 5.11配制溶液或在实验中能放出HCN NO2 H2S SO2 Br2 NH3等及其他有毒和腐蚀性气体时(如HCL H2SO4 HNO3 CCL4等)应在通风橱内进行。在使用中应将通风橱的玻璃门关得尽可能低,以提高排风效率并确保使用者安全。 5.12使用明火时,应查看周围有无可燃性化学试剂。 5.13加热易燃试剂时,不得使用明火和电炉直接加热,应采用水浴加热。

dpph自由基清除测定

dpph自由基清除测定 DPPH法测定黄芩黄酮的抗氧化活性 抗氧化就是任何以低浓度存在就能有效抑制自由基的氧化反应的物质,其作用机理可以是直接作用在自由基,或是间接消耗掉容易生成自由基的物质,防止发生进一步反应。 目前对自由基清除剂的研究方法主要有2类,一类是体外模型,另一类是体内模型,其中DPPH法是体外模型中最常用的方法。 DPPH又称1,1-二苯基-2-三硝基苯肼,是一种很稳定的氮中心的自由基,他的稳定性主要来自共振稳定作用的3个苯环的空间障碍,使夹在中间的氮原子上不成对的电子不能发挥其应有的电子成对作用。它的无水乙醇溶液呈紫色,在517nm波长处有最大吸收,吸光度与浓度呈线性关系。。向其中加入自由基清除剂时,可以结合或替代DPPH?,使自由基数量减少,吸光度变小,溶液颜色变浅,借此可评价清除自由基的能力。即通过在517nm波长处检测样品清除DPPH?的效果,来计算抗氧化能力。 [1]实验研究表明,黄芩黄酮中清除DPPH自由基活性的主要成分是黄芩苷,黄芩苷中含有羧羟基和酚羟基能与DPPH反应,反应式如下: ONON22 +H+NNONNONNH22 NONO22 DPPH与抗氧化剂反应原理 材料:DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼);无水乙醇; 仪器:分光光度计 1.DPPH贮备液的制备

准确称取DPPH试剂3(5mg,用无水乙醇溶解,并定量转入10mL容量瓶中,用无水乙醇定容至刻度,取2mL至100ml容量瓶中,摇匀得浓度为0.0178mmol,L DPPH贮备液,置于冰箱中冷藏备用。 2.试液的制备(只作参考) 准确称取5.2mg干燥的黄酮提取物(32.75%),用无水乙醇溶解,并定量转入 50ml容量瓶中,用无水乙醇定量至刻度,取10ml至100ml容量瓶中,摇匀得浓度为0.0233mmol,L试液。 3.DPPH?清除率的测定 在10mL比色管中依次加入4.0mLDPPH溶液和黄酮提取液,再加入无水乙醇至刻度,混匀立即用1cm比色皿在517nm波长处测吸光值(A),吸光值记为Ai,再在温室避光保存30min后测吸光值,记为Aj,对照试验为只加DPPH的乙醇溶液,其吸光值记为Ac。按下式计算自由基清除率(K): K(%)=[1-(Ai-Aj)/Ac]*100% 试验重复三次,取其平均值作为最后结果。 [1].刘玉萍,Purusotam Basnet,小松かっ子,曹晖.黄芩清除自由基活性与黄芩苷含量的相关性研究[J].中国中药杂志,2002,27(8):575-579 药品:DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼); 推荐厂家:上海如吉生物科技发展有限公司; 北京诺博莱德科技有限公司; 报价:380元/瓶;500元/瓶; 规格:1g/瓶; 含量:99%; 产地:日本进口 DPPH稳定性不好,要用时,新鲜配制 DPPH浓度要根据样品的活性来定,一般在20-100μg/mL

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