优雅薰衣草茎段再生体系的建立
第２９卷第３期２０１４年９月
河 北 林 果 研 究
ＨＥＢＥＩＪＯＵＲＮＡＬＯＦＦＯＲＥＳＴＲＹＡＮＤＯＲＣＨＡＲＤＲＥＳＥＡＲＣＨ
Ｖｏｌ．２９Ｎｏ．３
Ｓｅｐ．２０１４
文章编号：１００７‐４９６１（２０１４）０３‐０２９５‐０４ＤＯＩ：１０．１３３２０／ｊ．ｃｎｋｉ．ｈｊｆｏｒ．２０１４．００６６‘优雅’薰衣草茎段再生体系的建立
左利娟，李志强
（北京农业职业学院，北京１０２４４２）
摘要：以‘优雅’薰衣草带腋芽茎段为外植体，探讨外植体的最佳消毒时间和不同植物生长调节剂种类与水平等
因素对其腋芽增殖与不定根形成的影响。结果表明：利用０．１％的ＨｇＣｌ２消毒，外植体的最佳消毒时间以６ｍｉｎ
为宜；继代增殖培养基以ＭＳ＋ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ为宜；生根培养基以１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ
为宜。
关键词：‘优雅’薰衣草；茎段；离体培养；植株再生
中图分类号：Ｓ５７３．９文献标志码：Ａ
Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔｏｆｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｓｙｓｔｅｍｆｒｏｍｓｔｅｍｅｘｐｌａｎｔｓ
ｏｆＬａｖａｎｄｕｌａａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’
ＺＵＯＬｉｊｕａｎ，ＬＩＺｈｉｑｉａｎｇ
（ＢｅｉｊｉｎｇＶｏｃａｔｉｏｎａｌＣｏｌｌｅｇｅｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｂｅｉｊｉｎｇ１０２４４２，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅｐａｐｅｒａｉｍｅｄｔｏｓｅｌｅｃｔｔｈｅｂｅｓｔｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｃｏｎｄｉｔｉｏｎｏｆｔｉｓｓｕｅｃｕｌｔｕｒｅｔｅｃｈｎｏｌｏ‐
ｇｙｏｆＬａｖａｎｄｕｌａａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’．Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｋｉｎｄｓａｎｄｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ
ｏｆｈｏｒｍｏｎｅｓｏｎｔｈｅｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎａｎｄｒｏｏｔａｇｅｗｅｒｅｓｔｕｄｉｅｄｂｙｕｓｉｎｇｔｈｅｔｅｎｄｅｒｓｔｅｍｏｆＬ．
ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’ａｓｅｘｐｌａｎｔ．Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｔｈｅｂｅｓｔｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄｔｉｍｅｆｏｒｔｈｅ
ｅｘｐｌａｎｔｓｗａｓ６ｍｉｎｕｔｅｓｉｎ０．１％ＨｇＣｌ２，ｔｈｅｂｅｓｔｍｅｄｉｕｍｆｏｒｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎｗａｓＭＳ＋６ＢＡ
１．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ，ａｎｄｔｈｅｂｅｓｔｍｅｄｉｕｍｆｏｒｒｏｏｔｉｎｇｗａｓ１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｌａｖａｎｄｕｌａａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’；ｓｔｅｍ；ｉｎｖｉｔｒｏｃｕｌｔｕｒｅ；ｐｌａｎｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
‘优雅’薰衣草（Ｌａｖａｎｄｕｌａａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅ‐ｇａｎｃｙ’）为唇形科薰衣草属狭叶薰衣草一个矮生品种，为半灌木或矮灌木，原产欧洲南部及地中海地区［１］。它既是药用植物也是美化环境的优良植物，其外形美观且香气浓郁，可植于植物园、综合性公园及旅游景区或度假村，也可点缀于花坛、花境、花丛、树丛中［２３］。目前，国内栽培的薰衣草品种特性退化现象严重。通过植物组织培养方法快速繁殖薰衣草，可以很好解决品种退化的问题。结合转基因技术提高薰衣草的抗性，可以降低生产成本，提高经济效益和观赏价值。目前，关于薰衣草的组织培养已有部分报道［４７］。最近，廖苏梅等进行了芽增殖培养的研究［８］；国外学者通过器官发生途径从分化外植体如叶、茎或愈伤组织获得了不同种类薰衣草的再生植株［９１４］，但不同种类之间的离体繁育体系是否有差异尚不明确。为促进薰衣草规模化快繁和遗传转化体系的建立，针对狭叶薰衣草‘优雅’进行离体再生体系研究显得非常必要。
收稿日期：２０１４０６１５；修改稿收期：２０１４０６２８
基金项目：北京农业职业学院名师培养项目。
作者简介：左利娟（１９７９），女，河北邢台人，讲师，研究方向为花卉栽培与繁育技术。通讯作者：李志强（１９６５），男，陕西澄城人，副教授，研究方向为设施园艺。
２９６ 河 北 林 果 研 究第２９卷
１ 材料与方法
１．１ 试验材料
在２０１２年５月，选取北京农业职业学院科技示范园１ａ生‘优雅’薰衣草播种苗的带腋芽茎段为外植体。
１．２ 试验方法
１．２．１ 最佳消毒时间的筛选 将长２～３ｃｍ的幼嫩茎段，去掉叶片，洗净。用７５％乙醇消毒６０ｓ，再用无菌水洗净，切取顶端２ｃｍ带腋芽茎段。加适量的洗涤剂漂洗后用流水冲洗１ｈ，在超净工作台上用７５％的酒精浸泡８～１０ｓ，用无菌水冲洗３～５次，再分别用０．１％的ＨｇＣｌ２溶液浸泡２、４、６、８ｍｉｎ，用无菌水冲洗３～５次［１５］。再用灭菌后的滤纸吸干茎段上的水分，接种于ＭＳ培养基上进行培养。每个处理接种１５个外植体，培养１０ｄ后观察结果。１．２．２ 增殖培养 将接入ＭＳ培养基中成活的带腋芽的茎段，转入增殖培养基培养。增殖培养基为：ＭＳ＋６ＢＡ（０、０．１、０．５、１．０、１．５、２．０）ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ（０、０．０５、０．１、０．１５、０．２０）ｍｇ／Ｌ，加入蔗糖３０ｇ／Ｌ。每个处理３０个茎段，培养３０ｄ后进行统计。增殖系数为诱导芽的总数与接种外植体总数的比值［１６］。
１．２．３ 生根培养 将在增殖培养基上长至２．５ｃｍ健壮带腋芽茎段，转入以１／２ＭＳ＋ＩＢＡ（０．１、０．３、０畅５）ｍｇ／Ｌ和１／２ＭＳ＋ＮＡＡ（０．１、０．３、０．５）培养基（蔗糖１５ｇ／Ｌ）诱导生根，２５ｄ后统计生根结果。１．２．４ 培养条件 以上试验各阶段培养基的ｐＨ值为５．８～６．０；置于培养温度（２３±２）℃，每天光照时间１２ｈ，光照强度３０μｍｏｌ／（ｍ２?ｓ）左右条件下进行培养。每个试验均重复３次。
２ 结果与分析
２．１ 不同消毒时间对萌发率和污染率的影响不同消毒时间对萌发率和污染率的影响见表１。表１ ＨｇＣｌ２消毒时间对外植体萌发率和污染率的影响Ｔａｂｌｅ１ Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎｔｉｍｅ
ｏｎｂｕｒｇｅｏｎｒａｔｅａｎｄｐｏｌｌｕｔｉｏｎｒａｔｅ
消毒时间／ｍｉｎ
Ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ
ｔｉｍｅ
样本数
Ｓａｍｐｌｅ
ｎｕｍｂｅｒ
萌发率／％
Ｂｕｒｇｅｏｎ
ｒａｔｅ
污染率／％
Ｐｏｌｌｕｔｉｏｎ
ｒａｔｅ０１５５．２１００．０
２１５７３．０５８．５
４１５８６．５７．６
６１５７０．００
８１５５５．００
由表１可知，在研究ＨｇＣｌ２不同消毒时间对腋芽萌发和污染率的影响时发现，外植体的萌发率先随处理时间的增加而增加，然后又迅速减少，而污染率呈下降趋势。由表１还可以看出，‘优雅’薰衣草茎段的最佳消毒时间为６ｍｉｎ。
２．２ 不同培养基对薰衣草继代增殖的影响
将带芽茎段接种于继代增殖培养基上，５ｄ后，腋芽开始陆续萌动，２５～３５ｄ腋芽萌发形成芽丛。不同培养基对薰衣草继代增殖的影响见表２。
表２ 不同植物生长调节剂对‘优雅’薰衣草增殖的影响
Ｔａｂｌｅ２ Ｅｆｆｅｃｔｏｆｐｌａｎｔｇｒｏｗｔｈｒｅｇｕｌａｔｏｒ（ＰＧＲ）ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓｏｎｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆＬ．ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ６ＢＡ／
（ｍｇ?Ｌ－１）
ＩＢＡ／
（ｍｇ?Ｌ－１）
样本数
Ｓａｍｐｌｅｎｕｍｂｅｒ
增殖系数
Ｂｒｅｅｄｉｎｇｒａｔｉｏ
芽平均长度／ｃｍ
Ａｖｅｒａｇｅｂｕｄｌｅｎｇｔｈ
生长势
Ｇｒｏｗｔｈｓｔａｔｕｓ
１０ ０ ３０１．８０．６７＋＋ ２０．１０．０５３０２．２１．２０＋＋ ３０．１０．１０３０２．４１．３０＋＋ ４０．１０．１５３０２．５１．６３＋＋＋５０．１０．２０３０３．１１．８７＋＋＋６０．５０．０５３０３．１１．８４＋＋＋７０．５０．１０３０３．６２．１５＋＋＋８０．５０．１５３０３．８２．５３＋＋＋
第３期左利娟等：‘优雅’薰衣草茎段再生体系的建立２９７
表２（续）
处理Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
６ＢＡ／
（ｍｇ?Ｌ－１）
ＩＢＡ／
（ｍｇ?Ｌ－１）
样本数
Ｓａｍｐｌｅｎｕｍｂｅｒ
增殖系数
Ｂｒｅｅｄｉｎｇｒａｔｉｏ
芽平均长度／ｃｍ
Ａｖｅｒａｇｅｂｕｄｌｅｎｇｔｈ
生长势
Ｇｒｏｗｔｈｓｔａｔｕｓ
９０．５０．２０３０２．６７３．１２＋＋＋１０１．００．０５３０３．３２３．１１＋＋＋１１１．００．１０３０３．３３３．５７＋＋＋１２１．００．１５３０３．４０３．６６＋＋＋＋１３１．００．２０３０３．１０３．３３＋＋＋１４１．５０．０５３０３．４０３．６３＋＋＋１５１．５０．１０３０４．３０３．９７＋＋＋１６１．５０．１５３０４．７０３．９６＋＋
１７１．５０．２０３０３．３０４．０１＋
１８２．００．０５３０４．４０４．３０－
１９２．００．１０３０４．７０４．１８－
２０２．００．１５３０４．６０４．２０－
２１２．００．２０３０４．５０４．１５－
注：＋＋＋表示长势最好，＋＋表示次之，＋表示一般，－表示长势较弱。
由表２可知，附加不同水平的６ＢＡ与ＩＢＡ，芽的增殖率与长势不同。薰衣草主要以腋芽萌发形成茎段形式进行增殖。其增殖率与６ＢＡ浓度有关，在６ＢＡ浓度较低时（＜０．５ｍｇ／Ｌ），增殖率较低，但芽健壮；当６ＢＡ浓度高于１．５ｍｇ／Ｌ时，增殖系数呈下降趋势，丛芽细弱。所以ＭＳ＋６ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ为最佳继代增殖培养基。２．３ 不同培养基对薰衣草生根的影响
将长度在３ｃｍ左右带腋芽的健壮薰衣草无菌苗转入不同生根培养基上。接种２０ｄ以后，统计试验结果，见表３。
表３ 不同植物生长调节剂对组培苗生根的影响
Ｔａｂｌｅ３ Ｅｆｆｅｃｔｏｆｐｌａｎｔｇｒｏｗｔｈｒｅｇｕｌａｔｏｒ（ＰＧＲ）ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓｏｎｒｏｏｔｉｎｇｏｆＬ．ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ‘Ｅｌｅｇａｎｃｙ’
处理Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ植物生长调节剂
配比／（ｍｇ?Ｌ－１）
Ｈｏｒｍｏｎｅｒａｔｉｏｓ
样本数
Ｓａｍｐｌｅｎｕｍｂｅｒ生根率／％
Ｒｏｏｔｉｎｇｒａｔｅ平均根长度／ｃｍ
Ａｖｅｒａｇｅｒｏｏｔｌｅｎｇｔｈ根系生长状况
Ｒｏｏｔｇｒｏｗｔｈｓｔａｔｕｓ
１１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．１３０４６．６１．１根生长一般，生根量少
２１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．３３０６１．０２．９根健壮，生根量一般
３１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５３０９５．５４．２根健壮，生根量多
４１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１．０３０９７．８４．１根弱，生根量多，根茎处有
愈伤组织
５１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．１３０７４．５０．９根生长一般，生根量少
６１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．３３０８１．０２．１根健壮，生根量少
７１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．５３０９１．４２．９根健壮，生根量多
８１／２ＭＳ＋ＮＡＡ１．０３０９３．２３．０根细弱，生根量较多，根茎处有
愈伤组织
由表３可知，在１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ培养基上生根效果最好，２０ｄ后生根率就达到９５．５％，根系较发达。３ 结论
以‘优雅’薰衣草带腋芽茎段为外植体，探讨外
２９８ 河 北 林 果 研 究第２９卷
植体的最佳消毒时间和不同植物生长调节剂对其腋芽增殖与不定根形成的影响，结果发现：利用０畅１％的ＨｇＣｌ２消毒，外植体的最佳消毒时间以
６ｍｉｎ为宜；继代增殖培养基以ＭＳ＋６ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ为宜；生根培养基以１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ为宜。
再生体系的建立与外植体的消毒有很大关系。试验结果表明，在薰衣草茎段离体培养中，幼嫩茎段消毒时用０．１％升汞消毒６ｍｉｎ为最佳，这与何家涛等的研究结果类似［１７］。
植物生长调节剂在薰衣草的离体增殖中起着重要的作用。低浓度的６ＢＡ对不定芽诱导及增殖的效果较好，这与许多学者的结果相似［１８１９］。在继代增殖阶段，幼苗在附加不同浓度的６ＢＡ和ＩＢＡ的增殖培养基上的生长效果不尽相同。综合来看，在以ＭＳ为基本培养基附加６ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ和ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ的组合上，幼苗增殖效果较好，腋芽可以直接萌发形成茎段，长势较健壮。生根培养基筛选以１／２ＭＳ为基本培养基附加不同浓度的ＩＢＡ和ＮＡＡ进行试验。从根的生长质量和生根率来看，附加ＩＢＡ的生根效果普遍好于附加ＮＡＡ的。将带腋芽茎段接种于ＩＢＡ浓度为０．５ｍｇ／Ｌ的生根培养基上，１０ｄ左右切口处出现白色根状突起，培养２０ｄ左右，根系均能长到４ｃｍ左右。虽然在ＩＢＡ浓度为１．０ｍｇ／Ｌ的生根培养基中，根系生长速度快、生根率高，但是幼苗在根茎部位集聚较多愈伤组织，根系较细弱。为了得到较全面的试验结果，进行了部分后续试验，结果表明：随继代次数增加，出现幼苗生长弱化现象，不利于后期的生根。在‘优雅’薰衣草增殖培养中，以ＭＳ为基本培养基附加６ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ和ＩＢＡ０．１５ｍｇ／Ｌ组合幼苗增殖率较高，腋芽萌发形成茎段较健壮。有的学者认为在生根阶段，加入ＧＡ３对薰衣草丛芽的分化生长有利。是否还有其他植物生长调节剂对其生长、增殖起到促进作用还有待于进一步研究［１８１９］。
参考文献：
［１］周太炎．中国植物志：６５卷［Ｍ］．北京：科学出版社，１９８７：２４９．［２］万禹，潘远智．芳香植物的应用特点及应用方式探析［Ｊ］．安徽农业科学，２０１１，３９（１９）：２４２６．［３］陈奕静，许先升．芳香植物在海南地区景观建设中的应用［Ｊ］．安
徽农业科学，２０１１，３９（２１）：５２５３．
［４］解成喜，王强，崔晓明．薰衣草挥发油化学成分的ＧＣＭＳ分析［Ｊ］．新疆大学学报：自然科学版，２００２，１９（３）：２９４２９６．
［５］ＣＳｕｄｒｉａ，ＭＴＰｉｎｏ，ｌＪＰａｌａｚｏｎ，ｅｔａｌ．ＩｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆｐｌａｎｔｇｒｏｗｔｈｒｅｇｕｌａｔｏｒｓｏｎｔｈｅｇｒｏｗｔｈａｎｄｅｓｓｅｎｔｉａｌｏｉｌｃｏｎｔｅｎｔｏｆｃｕｌｔｕｒｅｄＬａ‐ｖａｎｄｕｌａｄｅｎｔａｔｅｐｌａｎｔｌｅｔｓ［Ｊ］．ＰｌａｎｔＣｅｌｌ，ＴｉｓｓｕｅａｎｄＯｒｇａｎＣｕｌ‐ｔｕｒｅ，１９９９，５８：１７７１８４．
［６］ＪｏｒｄａｎＡＭ，ＣａｌｖｏＭＣ．ＭｉｃｒｏｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎｏｆａｄｕｌｔＬａｖａｎ‐ｄｕｌａｄｅｎｔａｔｅｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｔｅｃｈ，１９９８，７３（１）：９３９６．
［７］许耀祖，韦彦余，王晓军，等．薰衣草叶片高频再生体系的建立［Ｊ］．园艺学报，２００６，３３（１）：１８２１８５．
［８］廖苏梅，周巍，徐程．薰衣草的组织培养［Ｊ］．植物生理学通讯，２００４，４０（３）：３３６．
［９］ＪｏｒｄａｎＡＭ．ＭｉｃｒｏｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎｏｆａｄｕｌｔＬ．ｄｅｎｔａｔｅｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｔｅｃｈ，１９９８，７３（１）：９３‐９６．
［１０］ＤｉａｓＭＣ，ＡｌｍｅｉｄａＲ，ＲｏｍａｎｏＡ．ＲａｐｉｄｃｌｏｎａｌｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆＬａｖａｎｄｕｌａｖｉｒｉｄｉｓＬｐＨüｒｔｈｒｏｕｇｈｉｎｖｉｔｒｏａｘｉｌｌａｒｙｂｕｄｐｒｏ‐ｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ］．ＰｌａｎｔＣｅｌｌＴｉｓｓｕｅａｎｄＯｒｇａｎＣｕｌｔｕｒｅ，２００２，６８（１）：９９－１０２．
［１１］ＣａｌｖｏＭＣ，ＳｅｇｕｒａＪ．ＩｎｖｉｔｒｏｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｓｉｓｆｒｏｍｅｘｐｌａｎｔｓｏｆＬａｖａｎｄｕｌａｌａｔｉｆｏｌｉａａｎｄＬａｖａｎｄｕｌａｓｔｏｅｃｈａｓｓｅｅｄｌｉｎｇｓ［Ｊ］．ＳｃｉｅｎｔｉａＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ，１９８８，３６（１－２）：１３１１３７．
［１２］ＴｓｕｒｏＭ，ＫｏｄａＭ．ＩｎｏｕｅＭ．Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔｐｌａｎｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｆｒｏｍｍｕｌｔｉｐｌｅｂｕｄｓｆｏｒｍｅｄｉｎｔｈｅｌｅａ‐ｆｄｅｒｉｖｅｄｃａｌｌｕｓｏｆＬａｖａｎ‐ｄｕｌａｖｅｒａ，ｕｓｉｎｇｔｈｅ‐ｏｐｅｎｃｕｌｔｕｒｅｓｙｓｔｅｍ［Ｊ］．ＳｃｉｅｎｔｉａＨｏｒｔｉ‐ｃｕｌｔｕｒａｅ，２０００，８６（１）：８１８８．
［１３］ＴｓｕｒｏＭ，ＫｏｄａＭ，ＩｎｏｕｅＭ．Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅｅｆｆｅｃｔｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｔｙｐｅｓｏｆｃｙｔｏｋｉｎｉｎｆｏｒｂｕｄｆｏｒｍａｔｉｏｎａｎｄｐｌａｎｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｉｎｌｅａｆ－ｄｅｒｉｖｅｄｃａｌｌｕｓｏｆｌａｖｅｎｄｅｒ（ＬａｖａｎｄｕｌａｖｅｒａＤＣ）［Ｊ］．Ｓｃｉ‐ｅｎｔｉａＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ，１９９９，８１（３）：３３１３３６．
［１４］ＰａｎｉｚｚａＭ，ＴｏｇｎｏｎｉＦ．Ｃｌｏｎａｌｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ，ｃａｌｌｕｓｆｏｒｍａｔｉｏｎａｎｄｐｌａｎｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｏｆｌａｖａｎｄｅｒ［Ｊ］．ＳｃｉｅｎｔｉａＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ，１９８８，３７（１－２）：１５７１６３．
［１５］李佳，张智俊，周长芳，等．明日叶的组织培养与快速繁殖［Ｊ］．植物生理学通讯，２００６，４２（６）：１１４２．
［１６］廉玉姬，赵小梅，林光哲．朝鲜白头翁的组织培养与快速繁殖［Ｊ］．园艺学报，２０１０，３７（３）：４９１４９８．
［１７］何家涛，王会，董珍文，等．薰衣草茎段再生体系的建立［Ｊ］．江西农业学报，２００６，１８（４）：９１９３．
［１８］许耀祖，王晓军，赵民安，等．薰衣草高频植株再生系统的建立［Ｊ］．西南农业大学学报，２００５（６）：３４４３４９．
［１９］苏秀娟，陈全家，马林等．英国薰衣草叶片再生体系的建立［Ｊ］．新疆农业大学学报，２００６，２９（２）：２２２５．
（编辑 郭丽娟）
‘优雅’薰衣草茎段再生体系的建立
作者：左利娟， 李志强， ZUO Lijuan， LI Zhiqiang
作者单位：北京农业职业学院,北京,102442
刊名：
河北林果研究
英文刊名：Hebei Journal of Forestry and Orchard Research
年，卷(期)：2014(3)
参考文献(19条)
1.周太炎中国植物志:65卷 1987
2.万禹;潘远智芳香植物的应用特点及应用方式探析 2011(19)
3.陈奕静;许先升芳香植物在海南地区景观建设中的应用 2011(21)
4.解成喜;王强;崔晓明薰衣草挥发油化学成分的GC MS分析 2002(03)
5.C Sudria;M T Pino;l J Palazon Influence of plantgrowth regulators on the growth and essential oil content ofculturedLa-vandula dentateplantlets 1999
6.Jordan A M;Calvo M C Micropropagation of adultLavan-dula dentateplants 1998(01)
7.许耀祖;韦彦余;王晓军薰衣草叶片高频再生体系的建立 2006(01)
8.廖苏梅;周巍;徐程薰衣草的组织培养 2004(03)
9.Jordan A M;Micropropagation of adult L dentate plants 1998(01)
10.Dias M C;Almeida R;Romano A Rapid clonalmultiplication of Lavandula viridis LpHür through in vitro axillary bud pro-liferation 2002(01)
11.Calvo M C;Segura J In vitro morphogenesis from explants of Lavandula latifolia and Lavandula stoechas seedlings 1988(1-2)
12.Tsuro M;Koda M;Inoue M Efficient plant regeneration from multiple buds formed in the lea-fderived callus of Lavan-dula vera,using the-open culture system 2000(01)
13.Tsuro M;Koda M;Inoue M Comparative effect of different types of cytokinin for bud formation and plant regeneration in leaf-derived callus of lavender (Lavandulavera DC) 1999(03)
14.Panizza M;Tognoni F Clonal propagation,callus formation and plant regeneration of lavander 1988(1-2)
15.李佳;张智俊;周长芳明日叶的组织培养与快速繁殖 2006(06)
16.廉玉姬;赵小梅;林光哲朝鲜白头翁的组织培养与快速繁殖 2010(03)
17.何家涛;王会;董珍文薰衣草茎段再生体系的建立 2006(04)
18.许耀祖;王晓军;赵民安薰衣草高频植株再生系统的建立 2005(06)
19.苏秀娟;陈全家;马林英国薰衣草叶片再生体系的建立 2006(02)
引用本文格式：左利娟.李志强.ZUO Lijuan.LI Zhiqiang‘优雅’薰衣草茎段再生体系的建立[期刊论文]-河北林果研究 2014(3)