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凉血退赤方含药血清对人脐静脉内皮细胞VEGF、bFGF、ANG-1及PEDF表达的影响

凉血退赤方含药血清对人脐静脉内皮细胞VEGF、bFGF、ANG-1及PEDF表达的影响
凉血退赤方含药血清对人脐静脉内皮细胞VEGF、bFGF、ANG-1及PEDF表达的影响

小鼠主动脉内皮细胞使用说明

小鼠主动脉内皮细胞 小鼠主动脉内皮细胞产品说明: 为使能尽快开展实验,派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期,且每次发货为汇合率达到70%的细胞,收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠主动脉内皮细胞取自新鲜的组织,按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠主动脉内皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件,降低杂细胞污染,保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时,派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程,所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测,保证细胞纯度在90%以上;同时也需经过微生物检测,保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 注意事项: 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研,不得用于临床应用。 小鼠主动脉内皮细胞产品简介: 1、产品名称:C57小鼠主动脉内皮细胞(Mouse Aortic Endothelial Cells) 2、组织来源:C57小鼠心肌主动脉 3、产品规格:5×105cells / 25cm2培养瓶 小鼠主动脉内皮细胞简介: 心肌主动脉是供给心脏血液的动脉。主动脉内皮细胞分离自正常C57小鼠心肌主动脉,呈单层扁平分布。内皮细胞或血管内皮是一薄层的专门上皮细胞,由一层扁平细胞所组成。它形成血管的内壁,是血管管腔内血液及其他血管壁(单层鳞状上皮)的接口。内皮细胞是沿着整个循环系统,由心脏直至最少的微血管。 本公司生产的C57小鼠主动脉内皮细胞采用混合酶消化而来,细胞总量约为5×105cells/瓶,CK-18免疫荧光鉴定细胞纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

人脐静脉内皮细胞的培养及鉴定

本课题为安徽省自然科学基金安科医药专项资助项目(01043708)作者单位:230001 合肥 安徽省立医院普外科 安徽医科大学2001级硕士研究生(傅斌生) 人脐静脉内皮细胞的培养及鉴定 余继海 许戈良 汪 建 荚卫东 傅斌生 [摘 要] 目的 探讨新生儿脐静脉内皮细胞的培养及鉴定方法,建立血管内皮细胞培养模型,为体外研究血管内皮细胞提供实验手段。方法 采用胶原酶 灌流消化法培养人脐静脉内皮细胞,当原代培养细胞80%以上汇合后,用胰蛋白酶消化传代;根据细胞生长特点、形态特征、细胞表型和分泌蛋白流式细胞术(F M 术)免疫荧光检查对细胞进行鉴定。结果 种植在培养瓶中的内皮细胞12小时贴壁生长,48~72小时生长最快,7~10天汇合。内皮细胞呈接触抑制生长、呈鹅卵石样外观,FM 术检测CD31和V -R-Ag 均为阳性表达。结论 消化酶灌注脐静脉消化内皮细胞是获取血管内皮细胞的一种好方法,可靠性大,成功率高,可以构建体外研究血管内皮细胞的模型。 [关键词] 内皮细胞;培养 C ulture and identif ication of human endothelial cells derived f rom umbilical veins Y u Jihai ,Xu Geliang,W ang J ian,et al A nhui Prouincial H osp ital,H ef ei 230001 [Abstract] Objective T o extablish the methods of culturing human endothelial cells (EC)and identifing the cells ac cording to t he antigens expressed and their morpholog ical aspect.Methods A fter digestion w ith t ype collagenase at 37!for 10minutes,the cells were centrifuged,and the cell pellet was resuspended in DEM E medium containing fetal bovine serum (10%vol/vol),seeded on gelatin(0.1%w t/vol)procoated dishes at aconcentr at ion of 10,000per square centimeter.T he medium was changed 1days later when the cells w er e attached and every 2days,until the cells reached confluence.Phase con trast microscopy and flow cy tometry with specific antisera against von willebrand factor and CD31were used to obser ve and i dentify the culturedcells.Results At confuluence (7~9days),the cultured cells had a cobbestone appear ance wit h a strict monolayer grow th and contact inhibition.T he mean fluorescence intensity of the cells was similar w ith both antibodies for the cultured cells vs controls.C onclusion T he cultured cells are endothelial cells,and the method of identification is practical and convenient. [Key words] Endot helial cells;Culture 我们采用胶原酶 灌流消化法成功培养人脐静脉内皮细胞,根据细胞生长特点、形态特征、细胞表型和分泌蛋白流式细胞术免疫荧光检查对细胞进行鉴定,从而构建体外研究血管内皮细胞的模型,现报告如下。 材料与方法 一、材料与培养用液的配制 CK 型倒置显微镜(日本Olympus Tokyo 公司),流式细胞仪(Coulter 公司),BB 5060型CO 2培养箱(美国Heraeus),Cryfuge500S 型低温离心机,胎牛血清(FBS,100ml/瓶,H yclone 公司),人血管内皮生长因子(VEGF,10 g/支,Pepro Tech 公司),CD31PE 购自Becton Dickison 公司(编号:340297)。 培养用液:(1)PBS 液:Nacl 8.5g 、Kcl 0.2g 、NaH 2PO 4H 2O 2g 、KH 2PO 40.2g 溶于1000三蒸水中,120!灭菌20m in,分装备用。(2)胶原酶(Gibco 公司,10mg/支)和胰蛋白酶(上海华美公司)分别溶于100ml PBS 中,浓度分别为0.1%和0.25%,抽滤消毒备用。(3)DMEM 培养基(购自BRL-Gibco 生命技术公司):按照说明书操作,将一袋干粉溶于1000ml 三蒸水中,抽滤消毒,加入胎牛血清终浓度为10%,4!贮存备用。 二、方法 1.内皮细胞原代培养:无菌获取新生儿脐带,立即用生理盐水冲洗血迹,剪去钳痕和血肿部位,再用PBS 液冲净脐静脉内血迹。将脐带一端用丝线结扎固定,用注射器向脐静脉另一端内注满0.1%胶原酶液,止血钳钳夹后放入水浴锅内孵育15min 。取出脐带松开血管钳释放酶细胞混合液于离心管中,再用PBS 液冲洗脐静脉后一并收集于离心管中,1000rpm ?8min 。弃去上清液,转移至35cm 2 培养瓶(Falcon 公司)中,加入DM EM 培养液(内含10%胎牛血清,青霉

细胞划痕试验

直尺20微升枪头(灭菌)无血清培养基PBS 准备: 所有能灭菌的器械都要灭菌,直尺和marker笔在操作前紫外照射30min(超净台内) 流程: 1。先用marker笔在6孔板背后,用直尺比着,均匀得划横线,大约每隔0.5~1cm一道,横穿过孔。每孔至少穿过5条线。 2。在空中加入约5X105个细胞,具体数量因细胞不同而不同,掌握为过夜能铺满。 3。第二天用枪头比着直尺,尽量垂至于背后的横线划痕,枪头要垂直,不能倾斜。 4。用PBS洗细胞3次,去处划下的细胞,加入无血清培养基。 5。放入37度5%co2培养箱,培养。按0,6,12,24小时取样,拍照。 NOTE 6空板可以保证有相当距离的平直划痕,我觉得挺不错的。而且因为有5条定位线,与划痕相交,这样就有10个可固定监测点,不作重复,误差也很小。 如果你连续监测24小时,你需要考虑到划痕缩小是细胞迁移和细胞繁殖共同作用的结果,而不是单纯的细胞迁移。如果你要单纯的考虑细胞迁移,你可以先用丝裂霉素(1ug/ml)处理一小时,抑制细胞的分裂,这样你的结果就是细胞迁移的作用了。 照片拍完之后,可以用image J 来测量划痕区域的像素定量比较细胞迁移的速度。 无血清的话,应该一个细胞周期内,增殖可以忽略吧。而且我定点监测的话,差不多可以对应到每个细胞。好像没有看见很明显的增殖现象。丝裂霉素貌似很贵的说。。。如果用这个还不如直接用transwell呢。 另,image J 哪里有下载么?谢谢。 ImageJ 下载网址:https://www.wendangku.net/doc/848909537.html,/ij/download.html 无血清培养,确实细胞增殖可以忽略了,不过由于细胞内信号传导系统整体性的下调节,细胞迁移的速度也会慢很多。不知道是不是大多数文献都用无血清培养状态下作划痕实验呢?目前最好的方法还是transwell法 一般做划痕实验,都是无血清或者低血清(《2%)否则细胞增殖就不能忽略。一般认为细胞周期是24小时,但对于一些特殊的细胞系来说,生长可能会快一点。因此好像还没看见用带血清培养,短时间检测的。不过我会去试试看。可能是个好方法。 划痕法的意义在于,价格低廉,操作简单。还有很重要的一点在于细胞外围环境简单单纯,容易控制。(比如做加药的,可能会和血清的组分有反映,而且受血清批次的影响,造成误差。如果是铺了ECM物质的,组分就更复杂了。) 划痕法的不足也很明显,适用的细胞系很窄,一般只能用于上皮,纤维样细胞系。因为1。这些细胞本身有迁移能力,且较强。 2。细胞有极性,方便测量,观察。 3。细胞对无血清有较强的忍受力(至少24小时),因此很多肿瘤细胞系是不适合做划痕的,很多肿瘤细胞系在无血清培养下,12小时细胞凋亡就超过50%。这也就是transwell发展的最大要求。而一些上皮样细胞系甚至可以忍受高达72小时的无血清实验。足以弥合划痕。

小鼠主动脉内皮细胞C57

/ 产品说明 细胞名称:小鼠主动脉内皮细胞C57 货号:CRC57 物种来源:小鼠数量:1X10^6 传代次数:2~3是否肿瘤:否 培养条件:90%DMEM高糖培养基+10%胎牛血清培养温度温度:37℃ 注意事项: 1、收到细胞,请查看瓶子是否有破裂,培养基是否漏出,是否浑浊,如有请尽快联系。 2、收到细胞,如包装完好,请在显微镜下观察细胞。,由于运输过程中的问题,细胞培养瓶中的贴壁细胞有可能从瓶壁中脱落下来,显微镜下观察会出现细胞悬浮的情况,出现此状态时,请不要打开细胞培养瓶,应立即将培养瓶置于细胞培养箱里静止3-5小时左右,让细胞先稳定下,再于显微镜下观察,此时多数细胞会重新贴附于瓶壁。如细胞仍不能贴壁,请用台盼蓝染色法鉴定细胞活力,如台盼蓝染色证实细胞活力正常请按悬浮细胞的方法处理。 3、收到细胞后,请镜下观察细胞,用恰当方式处理细胞。若悬浮的细胞较多,请离心收集细胞,接种到一个新的培养瓶中。弃掉原液,使用新鲜配制的培养基,使用进口胎牛血清. 刚接到细胞,若细胞不多时血清浓度可以加到15%去培养。若细胞迏到80%左右,血清浓度还是在10%。 4、收到细胞时如无异常情况,请在显微镜下观察细胞密度,如为贴壁细胞,未超过80%汇合度时,将培养瓶中培养基吸出,留下 5-10ML培养基继续培养:超过80%汇合度时,请按细胞培养条件传代培养。如为悬浮细胞,吸出培养液,1000转/分钟离心3分钟,吸出上清,管底细胞用新鲜培养基悬浮细胞后移回培养瓶。 5、将培养瓶置于37℃培养箱中培养,盖子微微拧松。吸出的培养基可以保存在灭菌过的瓶子里,存放于4℃冰箱,以备不时之需。 6、24小时后,细胞形态已恢复并贴满瓶壁,即可传代。(贴壁细胞)将培养瓶里的培养基倒去,加3-5ml(以能覆盖细胞生长面为准)PBS或Hanks’液洗涤后弃去。加0.5-1ml 0.25%含EDTA的胰酶消化,消化时间以具体细胞为准,一般1-3分钟,不超过5分钟。可以放入37℃培养箱消化。轻轻晃动瓶壁,见细胞脱落下来,加入3-5ml培养基终止消化。用移液管轻轻吹打瓶壁上的细胞,使之完全脱落,然后将溶液吸入离心管内离心,1000rpm/5min。弃上清,视细胞数量决定分瓶数,一般一传二,如细胞量多可一传三,有些细胞不易传得过稀,有些生长较快的细胞则可以多传几瓶,以具体细胞和经验为准。(悬浮细胞)用移液管轻轻吹打瓶壁,直接将溶液吸入离心管离心即可。 7、贴壁细胞,悬浮细胞。严格无菌操作。换液时,换新的细胞培养瓶和换新鲜的培养液,37℃,5%CO2 培养。

实验室常用实验方法-人脐静脉内皮细胞(HUVEC)培养

人脐静脉内皮细胞(HUVEC)培养 1.将15-20cm 长的新生儿脐带放入无菌的PBS 溶液中储存。 (注:4℃下最多贮存24 小时,室温下不超过6 小时,否则废弃) 2.用一个钝头的针头扎入脐带静脉管中,用无菌的PBS 溶液冲洗3-5 次,将污 血冲洗干净为止。 3.用手术钳夹紧脐带下端,加入15m l的胶原酶(1m g/ml)室温下消化15-20 分钟,并不时上下摇动脐带。 4.消化完后,将下端手术钳松开,消化液流入一个50 m l无菌离心管中,用无 菌的PBS 溶液冲洗脐带2-3 次。 5.将收集液离心(2000 转/分)3 分钟。 6.倒去上清,加入10m l M199培养基(加入10U/m l的bF G F),用弯管吹散细 胞,将所有液体转入一个用明胶包被好的培养瓶中,37℃培养。 (注:每个培养瓶中加入3-4ml 无菌的1%的明胶溶液,摇匀使得明胶溶液完全铺满瓶底,放入37℃孵育,最少2 小时,用前将明胶溶液倒了即可,明胶包被有利于细胞贴壁。) 7.培养24 小时后,倒掉培养基,并用无菌的PBS 溶液清洗2-3 次,洗掉红细 胞和死细胞,加入10 m l新鲜的M199培养基。 8.以后每2 天换一次培养基(每次换掉2/3 的培养基)。 9.一般培养5-7 天,细胞可长满至80-90%单层,这时可以传代。 10.倒掉培养基,用无菌的PBS溶液清洗2-3 次,加入2-3m l消化液(0.25%胰酶 +0.1%EDTA)消化细胞,在显微镜下观察,一旦细胞变圆,即加入2-3 倍的——————————————————————————————————————————————

见血清的功效与作用

见血清的功效与作用 【别名】羊耳蒜、立地好、毛慈姑、岩芋、黑兰、矮胖儿、肉螃蟹、铁耙梳、倒岩提、走子草、肉龙箭、香花羊耳蒜、紫星羊耳蒜、香羊耳蒜 【来源】 药材基源:为兰科植物脉羊耳兰的全草。 采收和储藏:夏、秋季采收,鲜用或切段晒干。 【原形态】脉羊耳兰,多年生草本。根状茎发达,褐色,横卧,其上着生细长的根数条;假鳞茎细长,圆柱形,长达8cm,粗6mm,具叶3-5枚。叶卵形至长圆形,长10-15cm,先端渐尖,全缘,基部鞘状抱茎。总状花序疏散,长7-15cm;苞片细小;萼片和花瓣常为黄绿色,长约8mm,侧面2枚萼片狭长圆形,中萼片狭长圆形,花瓣线形;唇瓣紫色或紫红色,卵形或倒卵形,先端钝或凹入,基部有2个小瘤体;蕊柱近先端的翅钝圆,基部稍膨大鼓出。蒴果纺锤形。 【生境分布】 生态环境:生于海拔850-1000m的山坡阔叶林下。 资源分布:分布于江西、湖南、福建、台湾、广东、广西及西南地区。 【性味】苦;涩;凉 【归经】肺;肾经 【功能主治】凉血止血;清热解毒。主胃热吐血;肺热咯血;肠风下血;崩漏;手术出血;创伤出血;疮疡肿毒;毒蛇咬伤;跌打损伤 【用法用量】内服:煎汤,9-15g,鲜品30-60g;或研末,每次9g。外用:适量,鲜品捣敷;或研末调敷。 【各家论述】 1.《民间常用草药汇编》:清血,凉血,止血。治牙痛。酒泡服治跌打损伤。 2.《浙江民间常用草药》:清热解毒,补肺止血。 3.《四川常用中草药》:生新散瘀,清肺,止吐血。治各种吐血,劳伤咳嗽,肺肾阴虚咯血,肠风下血,红崩,拔脓生肌,刀伤。 4.《贵州药植目录》:治劳伤,小儿走子,搭背。 见血清价格,市场供货量增加,零星货源走势虽不错,但整体行情不乐观,现荷市含泥

人脐静脉内皮细胞的体外分离培养及鉴定.

人脐静脉内皮细胞的体外分离培养及鉴定 作者:秦明春,王若光,秦莉花,刘小丽,李春梅,刘惠萍,叶赞 【摘要】目的探讨人脐静脉内皮细胞的原代培养方法,提高体外分离培养血管内皮细胞的成功率。建立血管内皮细胞培养模型,为体外研究血管内皮细胞提供实验基础。方法取2根脐带(至少20 cm)冲净淤血,采用加工穿刺针固定脐静脉灌注消化液, 一根用0.2%胶原酶Ⅱ,另一根用0.1%胶原酶Ⅰ和0.25%胰酶等比混合消化液,比较两种酶的消化效果。收集细胞并用含有10 ng/mL的VEGF的培养基中培养,观察细胞的生长及传代。并在倒置显微镜下观察细胞的形态学特点,同时用免疫组织化学的方法对所得细胞进行鉴定。用流式细胞术观察细胞周期。结果两种消化酶方法均获得了相当数量的人脐静脉内皮细胞,胶原酶Ⅱ的消化效果稍优于混合消化酶,且比较理想的消化时间均为13 min,细胞接种后4~5 h开始贴壁生长,1周左右可生长成单层,光镜下呈多角形,“铺路石”样排列,免疫组织化学法可见内皮细胞胞浆中人第Ⅷ因子相关抗原呈阳性反应。细胞周期显示约有50.6%的细胞处于G0/G1期。结论胶原酶Ⅱ和胶原酶Ⅰ与胰酶等比混合消化液灌注法是获得脐静脉内皮细胞的一种可取方法,而胶原酶是分离培养脐静脉内皮细胞的首选消化液,成功率高,可靠性大,可成功构建体外研究血管内皮细胞的模型。 【关键词】人脐静脉内皮细胞;细胞培养;流式细胞术;细胞周期;分离;鉴定 Cultivation and in vitro identification of endothelial cells from human umbilical vein 〔Abstract〕Objectiv eTo explore the primary culture method of human vascular endothelial cells(ECs) from umbilical vein, enhance the succes s rate of separating and culturing ECs in vitro, establish the model of human vascular ECs, and provide an experimental method for research of ECs. Methods The umbilical veins in human umbilical cords, 20 cm long, were fixed and filled the digestive fluids, 0.2% collagenenaseⅡin one cord and t he complex enzyme of 0.25% trypsin and 0.1% collagenaseⅠin an other, and the digestive results were compared. All the cells were collected and cultured in fluid with 10 mg/mL VE GF, their procreation and generation were observed, the morph ologic characteristics of ECs were observed with light micros copy and immunohistochemistry under inverted microscope, and t he cell cycle was observed by flow cytometer. Results Enough

实验室细胞划痕实验简介

实验室细胞划痕实验简介 细胞划痕实验是一种操作简单,经济实惠的研究细胞迁移/肿瘤侵袭的体外试验方法。这种方法的原理是,当细胞长到融合成单层状态时,在融合的单层细胞上人为制造一个空白区域,称为“划痕”。划痕边缘的细胞会逐渐进入空白区域使“划痕”愈合。 基本的步骤包括“划痕”的制造,细胞迁移期间图像的获得以及后期数据的处理。特点: 1,在一定程度上模拟了体内细胞迁移的过程。 2, 非常适合研究细胞与胞外基质(ECM),细胞与细胞之间相互作用引起的细胞迁移。 3,与包括活细胞成像在内的显微镜系统兼容,可用于分析细胞间的相互作用。4,研究细胞迁移的体外实验中最简单的方法。 传统实验方法 实验步骤: 1,培养板接种细胞之前先用marker笔在12孔板背面画横线标记(方便拍照时定位同一个视野)。 2,细胞消化后接入12孔板,数量以贴壁后铺满板底为宜(数量少时可培养一段时间至铺满板底)。 3, 细胞铺满板底后,用1ml枪头垂直于孔板制造细胞划痕,尽量保证各个划痕宽度一致。(人工枪头制造划痕难以保证划痕宽度的一致性,影响实验结果,这也是该方法最大的缺陷。) 4,吸去细胞培养液,用PBS冲洗孔板三次,洗去划痕产生的细胞碎片。 5,加入无血清培养基,拍照记录。 6,将培养板放入培养箱培养,每隔4-6小时取出拍照 7,根据收集图片数据分析实验结果。 德国IBIDI(易必迪)公司Culture Insert方法 1,准备细胞,培养液,culture Insert。 2,如图,将细胞接种于Dish中间的Insert,细胞长满Insert 区域后用镊子移除Insert即可产生500μm宽度的划痕。 3,每隔4-6小时拍照记录。 4,根据收集图片数据分析实验结果。

第十三章 内分泌疾病的检查

第十三章内分泌疾病的检查 本章考点: 1.甲状腺内分泌功能紊乱的检查 (1)甲状腺激素代谢及其调节 (2)甲状腺功能紊乱与其主要临床生化改变 (3)甲状腺激素与促甲状腺激素测定及其临床意义、相关疾病的实验诊断程序 2.肾上腺内分泌功能紊乱的检查 (1)肾上腺激素代谢及其调节 (2)肾上腺功能紊乱与主要临床生化改变 (3)肾上腺髓质激素代谢物测定在嗜铬细胞病诊断中的应用 (4)血、尿中糖皮质激素代谢物测定的临床意义 3.下丘脑-垂体内分泌功能紊乱的检查 (1)下丘脑-垂体内分泌激素代谢及其调节 (2)下丘脑-垂体内分泌功能紊乱与临床生化改变 (3)生长激素测定的临床意义 4.性腺内分泌功能紊乱的检查 (1)性激素的功能及其分泌调节 (2)性激素分泌功能紊乱与临床生化改变 (3)性激素测定的临床意义、相关疾病的实验诊断选择 内分泌是指机体某些腺体或散在的特化细胞,能合成并释放具有高效能的生物活性的物质,这些物质随血液循环运送到身体其他部位的靶器官、靶细胞,传递细胞间信息,调节这些器官或细胞的代谢和功能。 内分泌系统除其固有的内分泌腺(垂体、甲状腺、甲状旁腺、肾上腺、胰岛和性腺等)外,全身几乎所有器官、组织如心、肺、肝、胃肠、肾、脑都分布有内分泌组织和细胞。 广义的激素的概念,包括了原经典激素和众多的生长因子、细胞因子、神经肽和神经递质。 激素作用时要通过受体 按化学性质可将激素分为: ①含氮类激素:此类激素包括蛋白质类、肽类和胺类,此类激素通过膜受体作用。 ②类固醇激素:这些激素由胆固醇衍生而来。 此类激素通过细胞内受体作用。 蛋白质或多肽类激素可溶于血浆,但易被消化酶水解; 类固醇激素水溶性较差,必须与特殊的血浆蛋白结合来运输。 体内各种激素是在神经系统的参与下,通过复杂而精细的调节机制,保持在与机体发育阶段和功能状态相适应的水平。 主要的调节是通过下丘脑-垂体-内分泌腺-激素系统进行的调控,其中任一个环节异常,都将导致激素水 有关内分泌疾病的临床生化诊断方法有以下三类: ①对某内分泌腺特有的,或其分泌的激素调节的生理、生化过程的检验。 如甲状腺功能的碘摄取试验或基础代谢测定;甲状旁腺功能紊乱时血钙测定。 ②直接测定体液中某激素或其代谢物的水平。 ③动态功能试验。 这三类方法中,以第二类方法应用最多。 激素的测定多采用免疫分析法。 与其他化验相比,激素测定的样品采集较复杂,有些测定项目受采血时间、姿势、状态、饮食和药物的影响。 样本的采集和保存应注意尽快在低温下分离血浆使用。 用肝素抗凝剂对免疫分析有干扰作用,故一般采用EDTA做为抗凝剂。

人冠状动脉内皮细胞

Human Coronary Artery Endothelial Cells (HCAEC) Catalog Number: 6020 Cell Specification Endothelial cells constitute the natural interface between the blood and the underlying tissue. Changes in endothelial cell function appear to play a key role in the pathogenesis of atherosclerosis. Endothelial cells synthesize and secrete activators as well as inhibitors of both the coagulation system and the fibrinolysis system in addition to mediators that influence the adhesion and aggregation of blood platelets. Endothelial cells also release molecules that control cell proliferation and modulate vessel wall tone [1]. Human endothelial cells produce antithrombotic and thrombotic factors such as t-PA and PAI-1 and respond to TNF-alpha by modifying growth characteristics, producing cytokines such as GM-CSF, expressing ICAM-1 on the surface and producing large amounts of nitric oxide and endothelin [2]. Endothelial injury, with consequent endothelial dysfunction, is caused by percutaneous transluminal coronary angioplasty [3] and may play an important role in subsequent restenosis [4]. Many of the endothelial processes can be studied in vitro using cultured cells, and HCAEC will surely be very useful to studying and understanding the molecular mechanisms involved in coronary artery diseases. HCAEC from ScienCell Research Laboratories are isolated from human coronary artery. HCAEC are cryopreserved at passage one and delivered frozen. Each vial contains >5 x 105 cells in 1 ml volume. HCAEC are characterized by immunofluorescent method with antibodies to vWF/Factor VIII and CD31 (P-CAM) and by uptake of DiI-Ac-LDL. HCAEC are negative for HIV-1, HBV, HCV, mycoplasma, bacteria, yeast and fungi. HCAEC are guaranteed to further expand for 15 population doublings at the conditions provided by ScienCell Research Laboratories. Recommended Medium It is recommended to use Endothelial Cell Medium (ECM, Cat. No. 1001) for the culturing of HCAEC in vitro. Product Use HCAEC are for research use only. It is not approved for human or animal use, or for application in in vitro diagnostic procedures. Storage Directly and immediately transfer cells from dry ice to liquid nitrogen upon receiving and keep the cells in liquid nitrogen until cell culture needed for experiments. Shipping Dry ice. Reference [1] Elhadj, S. and Forsten, K. E. (2001) Chronic shear stress affects bovine aortic endothelial cell secreted proteoglycan production in vitro. Bioengineering Conference, Vol. 50:767-768. [2] Donnini, D., Perrella, G., Stel, G., Ambesi-Impiombato, F. S., Curcio, F. (2000) A new model of human aortic endothelial cells in vitro. Biochimie 82:1107-14. [3] Vassanelli C, Menegatti G, Zanolla L, Molinari J, Zanotto G, Zardini P. (1994) Coronary vasoconstriction in response to acetylcholine after balloon angioplasty: possible role of endothelial dysfunction. Coron Artery Dis. 5:979-986. [4] Meurice T, Vallet B, Bauters C, Dupuis B, Lablanche JM, Bertrand ME. (1996) Role of endothelial cells in restenosis after coronary angioplasty. Fundam Clin Pharmacol. 10:234-242.

如何使用Image-Pro Plus分析划痕实验

划痕攻略之如何使用Image-Pro Plus分析划痕实验划痕实验大家做了不少,但是如何能快速地将实验结果量化呢?今天给大家介绍如何用Image-Pro Plus分析划痕实验。 我们先回顾一下划痕实验的实验原理和步骤 实验原理:细胞划痕法是测定肿瘤细胞的运动特性的方法之一,是在体外培养的单层细胞上划痕致伤,观察肿瘤细胞的迁移情况。 实验步骤:1、培养板接种细胞之前先用marker笔在6孔板背面画横线标记(方便拍照时定位同一个视野)。 2、细胞消化后接入6孔板,数量以贴壁后铺满板底为宜(数量少时 可培养一段时间至铺满板底)。 3、细胞铺满板底后,用10μL枪头垂直于孔板制造细胞划痕,尽量 保证各个划痕宽度一致。 4、吸去细胞培养液,用PBS冲洗孔板三次,洗去划痕产生的细胞碎 片。 5、加入含有4μg/m L丝裂霉素(防止细胞增殖过快)的完全/基础培 养基,拍照记录。 6、将培养板放入培养箱培养,不同时间点取出拍照。 7、Image-Pro Plus分析实验结果。 划痕实验的结果是以照片的形式呈现的,那么如何将这一大批的图片进行量化呢?下面我给大家介绍一下运用Image-Pro Plus来分析划划痕实验结果。 我用的是Image-Pro Plus 6.0版本(需要的小伙伴可以私信拿安装包) 1.首先打开Image-Pro Plus,在File菜单栏下的open那里选择你要分析的图片或者把你要分析的图片直接拖入软件中(fig.1)。

Fig.1 2.选择工具栏里的计算和测量工具即红色箭头所指(Fig.2) Fig.2 3.在count/Size小窗口里选择measure下拉栏里的select measurements 选择我们要分析的面积(Area)和宽度(Box width)(Fig.3)

人脐静脉血管内皮细胞

HUVEC 人脐静脉血管内皮细胞General Information: Culture Method:

具体情况,以便我们的技术人员跟踪回访直至问题解决。由于运输的原因,个别敏感细胞会出现不稳定的情况,请及时和我们联系, 时和我们联系武汉普诺赛生命科技有限公司 全国免费服务电话:400-650-3656 邮箱:techsupport@https://www.wendangku.net/doc/848909537.html, sales@https://www.wendangku.net/doc/848909537.html, 注意事项: 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象 发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需 细胞因子等,确保细胞培养条件一致。若由于培养条件不一致而导致细胞出现问题,责任由客户自行承担。 3. 用75%酒精擦拭细胞瓶表面,显微镜下观察细胞状态。因运输问题贴壁细胞会有少量 从瓶壁脱落,将细胞置于培养箱内静置培养过夜,隔天再取出观察。此时多数细胞均会贴壁,若细胞仍不能贴壁请用台盼蓝染色测定细胞活力,如果证实细胞活力正常,请将细胞离心后用新鲜培养基再次贴壁培养;如果染色结果显示细胞无活力,请拍下照片及 4. 静置细胞贴壁后,请将细胞瓶内的培养基倒出,留6~8mL 维持细胞正常培养,待细胞 汇合度90%左右时正常传代。 5. 请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传 代时可以一定比例和客户自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件。 6. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态,便于和技术部 沟通交流 告知细胞的

人脐静脉内皮细胞的原代传代冻存复苏及鉴定

人脐静脉内皮细胞的原代培养和传代、 冻存、复苏及鉴定 1人脐静脉内皮细胞的分离及培养 1.1 原代血管内皮细胞的获取与培养 在细胞的获取方法上,有机械刮取、组织块移植和酶消化法3种。前两种易混杂其他血管壁细胞,近年已逐渐被酶消化法取代。其中胰蛋白酶灌注法及胶原酶消化法获取原代人脐静脉血管内皮细胞的方法。 1.1.1胰蛋白酶消化法 在无菌条件下取新生儿脐带,剪去钳痕和凝血块阻塞部分,找到脐静脉。一端插上带有胶管的玻璃管后结扎固定,经胶管接注射器,用生理盐水灌洗。待脐静脉内的残血除净后,用37℃磷酸盐缓冲液(浓度0.01 mol/L,pH=7.6)冲洗2次,将另一端用铁夹夹闭,向脐静脉内灌注0.25%胰蛋白酶8~10 mL,夹闭胶管放入已灭菌的大平皿中。37℃孵育12 min,在此期间经常翻动脐带,使酶溶液在血管内流动,促使内皮细胞与酶均匀接触。取出脐带轻轻挤压管壁,将含有内皮细胞的胰蛋白酶注入50 mL锥形离心管中,加入小牛血清2 mL终止酶反应,再以30 mL磷酸盐缓冲液冲洗管腔,流出液一并入离心管,1000 r/min离心10 min,弃上清(小牛血清及磷酸盐缓冲液),加入含有10%小牛血清的IMDM培养液,充分混合制成细胞悬液。取0.1mL细胞悬液在血细胞计数板计数。最后调细胞数,以1×105mL接种至24孔培养板中,每孔1mL。置于5% CO2,37℃静止培养24 h更换培养液,以除去未贴壁的细胞。以后每隔2天换液1次,维持细胞的营养和内环境稳定。 1.1.2胶原酶消化法 在无菌条件下取新生儿脐带,剪去钳痕和凝血块阻塞部分,用磷酸盐缓冲液

初步清洗,找到脐静脉后,用50 mL注射器吸取磷酸盐缓冲液反复灌注冲洗,洗净残留的血液后用止血钳封住一端,用注射器从另一端灌入15mLⅡ型胶原酶。超净台内温度一般高于室温,此条件下胶原酶作用15min,期间可不时晃动。消化完毕打开止血钳,将消化液流入事先准备好的离心管中,用注射器吸取1倍于消化液体积的内皮细胞培养基灌洗消化后的血管,收集并与消化液合并,900 r/min离心10min,弃去上清,加入事先孵育至37℃的细胞培养液,吹打均匀。取明胶包被的六孔细胞培养板,吸去明胶,每孔加入内皮细胞悬液2.5mL,置于5% CO2饱和度的37℃孵箱中静置培养,24 h后更换培养液以除去未贴壁的细胞。然后每隔3d换液1次至生长汇合。 1.2 传代内皮细胞的培养 原代内皮细胞融合后用培养液冲洗2次,然后用0.25%胰酶和0.25%乙二胺四乙酸以1:1的比例充分混匀后加入到内皮细胞中,每孔0.3 mL。边消化边在倒置显微镜下观察。细胞出现皱缩、边缘略变圆、彼此分离或呈大片状分离,此时即可吸弃消化液终止消化。加入含有10%小牛血清的培养液,用吸管吹打,制成细胞悬液,计数后按10个细胞/mL,并置于5% CO2饱和度的37℃孵箱中继续静置培养。每隔2~3d换液1次。 1.3 人脐静脉内皮细胞的冷冻和复苏 传代细胞贴壁80%后0.25%胰酶消化,离心1200 r/min,5min,弃上清,加入冻存液(含10%甘油、90%细胞外基质)重悬后置4℃30 min,-20℃2 h,-80℃过夜后置入液氮中保存。复苏时在37.2℃水浴中迅速轻摇解冻,胎盘蓝染色,计算细胞存活率。 1.4 影响脐静脉内皮细胞体外生长的因素 影响脐静脉内皮细胞体外生长的因素包括: 1培养液的pH值。最适pH值为7.0~7.2,脐静脉内皮细胞耐酶不耐碱,pH 值为7.4时贴壁困难,pH值7.6以上贴壁细胞脱落受损失去活力。

细胞迁移划痕实验

细胞迁移实验技术 —划痕实验 一、基本原理 细胞划痕(修复)法是简捷测定细胞迁移运动与修复能力的方法,类似体外伤口愈合模型,在体外培养皿或平板培养的单层贴壁细胞上,用微量枪头或其它硬物在细胞生长的中央区域划线,去除中央部分的细胞,然后继续培养细胞至实验设定的时间(例如72h),取出细胞培养板,观察周边细胞是否生长(修复)至中央划痕区,以此判断细胞的生长迁移能力,实验通常需设定正常对照组和实验组,实验组是加了某种处理因素或药物、外源性基因等的组别,通过不同分组之间的细胞对于划痕区的修复能力,可以判断各组细胞的迁移与修复能力。 二、操作步骤 1.先用marker笔在6孔板背后,用直尺比着,均匀的划横线,大约每隔0.5~1cm一道,横穿过孔。每孔至少穿过5条线。 2.在孔中加入约5×105个细胞,具体数量因细胞种类不同而不同,接种原则为过夜后融合率达到100%。 3.第二天用枪头比着直尺,尽量垂至于背后的横线划痕,枪头要垂直,不能倾斜(不同孔之间最好使用同一只枪头)。 4.PBS洗细胞3次,去处划下的细胞,加入无血清培养基。 5.放入37℃5%CO2培养箱,培养。可按0,6,12,24h时间点取样,拍照(具体时间依实验需要而定)。 6.统计方法:使用ImageJ软件打开图片后,随机划取6至8条水平线,计算细胞间距离的均值。

三、注意事项: 1.在用PBS 缓冲液冲洗时,注意贴壁慢慢加入,以免冲散单层贴壁细胞,影响实验拍照结果。 2.一般做划痕实验,都是无血清或者低血清(<2%)否则细胞增殖就不能忽略。 3.按照6孔板背后画线的垂直方向划痕,可以形成若干交叉点,作为固定的检测点,以解决了前后观察时位置不固定的问题。

简便有效分离培养大鼠主动脉内皮细胞的一种新方法

简便有效分离培养大鼠主动脉内皮细胞的 一种新方法 【摘要】目的:探索分离、培养鼠主动脉内皮细胞的有效方法。方法:将鼠主动脉内膜翻向外,结扎两端,置于50 mL培养瓶中培养、传代,Ⅷ因子相关抗原免疫细胞化学染色。结果:培养6~8 d 时有少量细胞自主动脉迁移出并贴壁生长;12~14 d 时贴壁细胞覆盖大部分培养瓶面,约80%的细胞汇合成单层;传代细胞生长旺盛;细胞汇合后呈现典型的“鹅卵石”样内皮细胞特征,内皮细胞标志物Ⅷ因子相关抗原表达阳性;未见杂细胞。结论:此方法无损伤、不需要酶消化,能比较容易的获得高纯度大鼠原代主动脉内皮细胞,适用于细小血管内皮细胞的分离与培养。 【关键词】主动脉·体外培养·内皮细胞·大鼠 A new method for isolation and culture of the endothelial cells of the rat aorta 【ABSTRACT】Objective:To investigate a modified method of isolating and culturing the endothelial cells from the rat aorta for endothelial bioresearch. Methods:Turned inside out, the aorta of the rat, of which the intima tunica was exposed, was ligated at both ends and cultured in a 50 mL culture bottle. Results:A small amount of cells migrated out from the aorta 6

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