大鼠水合氯醛麻醉心得

大鼠水合氯醛麻醉心得

本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间）

现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。

动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。

结果：如下表格所示：

水合氯醛浓度 4% 7% 7% 10% 10%

水合氯醛剂量 0.5mL/100g 0.3mL/100g 0.2mL/100g 0.2 mL/100g 0.3 mL/100g

诱导时间约7min 约4min 约7min 约4min 约4min

麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉

麻醉开始清醒时间约90min 约100min 未观察约68min 114min 结论：

1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。

2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。

3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关

在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样：

（1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。

（2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。

（3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。

由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。

我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h左右。

lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。

楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果？值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。

关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%, 10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g （这个剂量应该跟cma1954站友用的3% ，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够？不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，

1ml/100g，”一样啊。水合氯醛的质量问题？比较差？有可能吧。

至于安全性，我用10%，0.3ml/100g，没有发现是因为是麻醉过度死亡的。应该还

是蛮可靠的。当然，我也同意，浓度低至3%~5%,安全的可信度高，然而，就我个人而言，我必须使用10%的浓度才能达到我要的麻醉深度。我目前也正在考虑水合氯醛的质量问题，看看要不要自己配制。

我认为：10%水合氯醛300～350mg腹腔注射效果还可以。麻醉其效时间约3～5分钟，麻醉维持时间1小时左右。如果手术时间长还可以追加1/3～1/4量。

水合氯醛是比较好的选择，如果手术实验要求麻醉时间较长，可以使用乌拉坦，该药不贵，一次腹腔注射可以维持麻醉5～8个小时，基本能满足手术要求。

实验报告-大鼠

姓名：薛桂凤学号：132015200300 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于0.1ml （麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针）（3）腹腔注射0.01-0.02ml/g（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为 1.26ml，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构

小儿麻醉药物剂量及小儿麻醉相关参数参考值计算公式(整理).doc

小儿麻醉药物剂量及小儿麻醉相关参数参考值计算公式 小儿麻醉常用药物剂量药物用途/途径剂量咪唑安定（Midazolam）镇静IV术前用药PO0.05mg/kg0.5mg/kg丙泊酚（Propofol）诱导IV持续输注IV2-3mg/kg60-250ug/kg/min 氯胺酮（Ketamine）诱导IV诱导IM1-2mg/kg6-10mg/kg罗库溴铵（Rocuronium）插管IV0.6-1.2mg/kg阿曲库铵（Atracurium）插管IV0.5mg/kg顺阿曲库铵（Cisatracurium）插管IV0.15mg/kg琥珀酰胆碱（Succinylcholine）（稀释 100mg/5ml）插管IV插管IM2-3mg/kg4-6mg/kg芬太尼（Fentanyl）（稀释100ug/5ml）镇痛IV麻醉辅助用药IV持续输注IV1-2ug/kg1-5ug/kg2-4ug/kg舒芬太尼（Sufentanil）麻醉辅助用药IV持续输注IV0.5-1ug/kg0.5-2ug/kg/h雷米芬太尼（Remifentanil）Bolus IV持续输注IV0.25-1ug/kg0.05-2 ug/kg/min吗啡（Morphine）镇痛IV0.025-0.1mg/kg纳洛酮（Naloxone）IV0.01mg/kg昂丹司琼（Ondansetron）IV0.1mg/kg 地塞米松（Dexamethasone）IV0.1-0.5mg/kg新斯的明（Neostigmine）依据肌松程度IV0.04-0.07mg/kg阿托品（Atropine）（稀释：0.5mg/5ml）IVIM0.01-0.02mg/kg0.02mg/kg 麻黄碱（Ephedrine）IV0.1-0.3mg/kg肾上腺素（Epinephrine）Bolus IV气管内给药持续输注 IV0.01mg/kg0.1mg/kg0.1-1ug/kg/min利多卡因（Lidocaine） .精品.

实验报告-大鼠

姓名：薛桂凤学号： 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于（麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针） （3）腹腔注射（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构

动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉方法及给药剂量 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法： 吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。 1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。动物先兴奋后抑制，自行倒下。当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。 2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。

大鼠水合氯醛麻醉心得[参考内容]

大鼠水合氯醛麻醉心得 本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间） 现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。 动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。 结果：如下表格所示： 水合氯醛浓度 4% 7% 7% 10% 10% 水合氯醛剂量 0.5mL/100g 0.3mL/100g 0.2mL/100g 0.2 mL/100g 0.3 mL/100g 诱导时间约7min 约4min 约7min 约4min 约4min 麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉 麻醉开始清醒时间约90min 约100min 未观察约68min 114min 结论： 1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。 2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。 3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关 在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，

我的经验是这样： （1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。 （2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。 （3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。 由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。 我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h左右。 lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。 楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果？值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。 关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%, 10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g （这个剂量应该跟cma1954站友用的3% ，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够？不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，

大鼠的麻醉

大鼠的麻醉 集团企业公司编码：（LL3698-KKI1269-TM2483-LUI12689-ITT289-

大鼠的麻醉 点击次数：3690?发表于：2008-06-2522:38转载请注明来自丁香园 来源：

可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。 3、SD大鼠经口气管插管 腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G 或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。 二、异氟醚大鼠麻醉 安全且具有麻醉科特色。 我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发

小鼠(mouse)麻醉剂量表

小鼠(mouse)麻醉剂量表 IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入

大鼠(Rat)麻醉剂量表 IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。(中华实验动物学会出版2004) 2.Clinical laboratory animal medicine。(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)

IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。(中华实验动物学会出版2004) 2.Clinical laboratory animal medicine。(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)

IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。(中华实验动物学会出版2004) 2.Clinical laboratory animal medicine。(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)

仓鼠(Hamster)麻醉剂量表 IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)

实验动物的麻醉方法

实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg 才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放臵1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快，一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的

实验动物的麻醉方法知识

实验动物的麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成 0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物 神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。并施行必要的人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法：大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续2-4小时，所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～3%生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重，腹腔注射40～45mg/kg体重，大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。但动物个体间差异颇大。用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。镇痛效果差，恢复时间长，尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。近来使用日趋减少。

戊巴比妥钠麻醉大鼠时剂量与浓度选择

结果和讨论 1.两种灭菌饲料的营养成分　从表1可见,与对照组饲料相比,高热组粗蛋白损失11. 88%(P<0.05),而辐照组无显著差异。从表2可见,辐照组饲料维生素含量轻度下降,或无变化;高热组饲料维生素A、E、B1、B2、B6与对照组比,减少明显,其中维生素B1、B6损失达25%以上。 2.生长发育　饲喂辐照组饲料的小鼠体重增加明显高于高热组,特别是4、5、6周龄体重差异显著(P<0.05,表3),这可能与60Co C射线辐照后饲料营养成分特别是粗蛋白、维生素损失较少有关。 3.繁殖状况　如表4所示,饲喂辐照组饲料的小鼠其离乳数与高热组相比无明显差异(P>0.05),而窝产仔数、初生窝重、离乳窝重明显高于高热组饲料(P<0.05)。如果饲料中的蛋白质不足,动物可能出现负氮平衡。加上维生素摄入不足,从而影响胚胎发育。 由此可见,饲喂辐照饲料,小鼠不仅体重增长快,而且窝产仔数、初生窝重、离乳窝重均高于饲喂高压灭菌饲料,值得推广应用。 参考文献 1　王四旺,施新猷,娄清林,等.实验动物饲料60Co C 射线辐照后营养成分分析.上海实验动物科学, 1988,8(3):147149 2　张周,张素胤,杨秋龙,等.60Co C射线辐照消毒大鼠与小鼠饲料的效果.上海实验动物科学,1995,15 (4):201205 (收稿日期:19970515)　 戊巴比妥钠麻醉大鼠时剂量与浓度选择 朱森树　宋淑君 (解放军第251医院动物中心,张家口075000) 戊巴比妥钠为白色粉末,其水溶液不稳定,易析出结晶。它是一种镇静和抗癫痫药,用于动物实验麻醉与诱导麻醉的时间已较长。用于鼠类实验时,在使用剂量、浓度上各家做法不一。 我院动物中心曾配合烧伤医治研究中心、神经脊髓损伤治疗中心、骨科等科室,应用大鼠作动物实验。近几年以1%戊巴比妥钠液40mg/kg剂量,用于实验大鼠达2000多只,均收到良好效果,现将应用经验总结如下: 1.应用领域 (1)用于烧伤实验:用W istar大鼠,体重200～300g,术前禁食12h,以1%戊巴比妥钠40mg/kg剂量作腹腔注射麻醉。对大鼠分别施以各种化学烧伤,共用大鼠2063只。 (2)用于神经外科实验:用W istar大鼠,体重190～320g。术前禁食,以1%戊巴比妥钠40mg/kg麻醉,头部实验区脱毛。在急性脑损伤的微血管和超微结构实验研究及其药物治疗实验中共用大鼠350只。 (3)用于骨科实验:用SD和W istar大鼠,体重250～350g。实验前禁食,以1%戊巴比妥钠40mg/kg麻醉,将实验部位、鼠尾、四肢脱毛,做显微外科实验,用大鼠350只。 2.应用经验　戊巴比妥钠麻醉后,行大鼠动物实验是安全可靠的,且易控制。作者曾将2%～3%、0.5%浓度,以30mg/kg的剂量作效果比较试验,发现浓度较高,注射时稍有不慎易造成死亡。以3%戊巴比妥钠和30mg/kg的剂量麻醉,对体重250g的大鼠只能注射0. 25ml,剂量不易控制。若以0.5%戊巴比妥钠30mg/kg 的剂量注入,则需要注射1.25ml,剂量仍偏低,不能达到持续麻醉的效果,对实验时间较长的实验还需追加注射,妨碍实验,且可能造成麻醉药蓄积中毒。 我院在1993～1997年间,用大鼠作动物试验,用大鼠量达2700余只。实验前均禁食12h,均用1%戊巴比妥钠液以40mg/kg剂量作腹腔注射,麻醉成功率在96. 3%以上。作者认为,这一剂量和浓度是适用的。 (收稿日期:19960921) — 35 —

2008 实验动物常用镇静、麻醉、止痛药剂参考剂量表

實驗動物常用鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表 -2008 周京玉 使用說明: 1.以下內容為國內常用實驗動物之鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表。 2.本表內容僅供研究人員參考用, 實際劑量視實驗動物品種、品系、性別、年齡、生理狀況、 飼養條件、實驗需求而調整之。 3.由於多數藥劑屬管制藥品, 研究人員需先取得相關證照後使用。人員不得為了迴避管制藥品 相關法令而選擇使用非管制類藥劑, 除非該藥劑有科學研究之需求、並能提供充分的的實驗依據供動物實驗管理小組審核。 4.關於藥物的選擇、投藥方式等, 建議與獸醫師商討。如需進行外科手術, 動物必須進入手術 期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度（眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射）, 再進行手術。 5.CO2+ 10-50%O2 混合氣體其作用時間較短，且因兩種氣體密度不同，易造成O2在鋼瓶上 層、CO2在底部，導致氣體混合不均，需注意。 6.AVERTIN需經動物實驗管理委員會審查同意，確定有其科學研究之需求與依據、並且無其 他替代藥物可使用時，才得以使用本藥劑。如製作及保存得宜，於4℃避光冷藏可保存4個月，但是如果製作或儲藏時未適當地避光，將使動物致命，因此建議新鮮泡製使用，並於每次使用前確認其pH值＞5。本藥劑由於對腹腔刺激性強，不得重複注射於同一隻動物。 7.有些藥物如Pentobarbital、ketamine等，當靜脈注射藥劑不慎漏出血管外時，建議以生理 食鹽水稀釋5﹪lidocaine後注射至藥劑洩漏周圍組織，以減低動物的疼痛並降低組織潰爛或壞死的後遺症。 8.非類固醇類止痛藥（NSAID）對狗和貓的副作用大，建議使用前與獸醫師商討。 9.由於非人類靈長類（NHP）品種差異性大, 本劑量表以Rhesus monkey (M.Mulatta) 為對 象撰寫。 10.參考資料: 1)Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. Dennis F. Kohn.et.al., 1997.Academic Press. 2)Lab Animals. (2003) 37 (Suppl.1) BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW Joint Working Group on Refinement. 3)NIH Anesthesia and Analgesia Fornulary. 2005.

大鼠水合氯醛麻醉心得

大鼠水合氯醛麻醉心得本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间） 现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。 动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。 结果：如下表格所示： 水合氯醛浓度4%7%7%10%10% 水合氯醛剂量0.5mL/100g0.3mL/100g0.2mL/100g0.2mL/100g0.3mL/100g 诱导时间约7min约4min约7min约4min约4min 麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉 麻醉开始清醒时间约90min约100min未观察约68min114min 结论： 1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。 2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。 3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关 在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样：

（1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。 （2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。 （3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛 0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。 由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。 我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h 左右。 lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。 楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果？值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。 关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%,10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g（这个剂量应该跟cma1954站友用的3%，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够？不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，1ml/100g，”一样啊。水合氯醛的质量问题？比较差？有可能吧。 至于安全性，我用10%，0.3ml/100g，没有发现是因为是麻醉过度死亡的。应该还是蛮可靠的。当然，我也同意，浓度低至3%~5%,安全的可信度高，然而，就我个人而言，我必须使用10%的浓度才能达到我要的麻醉深度。我目前也正在考虑水合氯醛的质量问题，看看要不要自己配制。

麻醉常用药物剂量

麻醉科常用的药物及配置 麻醉前用药 阿托品：配置：0.1mg/ ml 用法：成人0.5mg iv/ im; 儿童 0.01mg/kg iv 长托宁：配置：0.1mg/ ml 用法：成人0.01mg/ kg iv/ 1mg im; 儿童 0.02mg/kg iv 东莨胆碱: 用法：成人 0.3mg im(心脏手术) 吗啡：用法：成人0.01mg/kg im(心脏手术) 麻醉药镇静药： 力月西配置：成人1mg/ml；儿童（＜10kg）0.5mg /ml 用法：诱导：成人 0.03- 0.05 mg/kg；儿童 0.1mg/ml 苯二氮卓类镇静药物的拮抗剂：氟马西尼用法：0.3mg iv 镇痛药： 芬太尼：配置：成人 25ug /ml 或 50ug /ml（心脏手术）；儿童 10ug /ml 用法：诱导：3-4 ug/kg，维持1-2ug/h 舒芬太尼：配置：成人 2.5ug /ml 或 5ug /ml（心脏手术）；儿童 1ug /ml 用法：诱导：0.3-0.4 ug/kg，维持0.1-0.2ug/h 瑞芬太尼：配置：成人 50ug/ml，儿童 10-25ug/ml 用法：负荷剂量0.5-1ug/kg，麻 醉维持 0.1-0.2ug/kg.min 阿片类镇痛药物的拮抗剂：纳洛酮配置：0.04mg/ml，用法：3-5ug/kg iv 曲马多：用法成人或儿童 1-2mg/kg 特耐（帕瑞昔布): 成人 40mg iv/im（磺胺过敏禁用，儿童不用） 肌肉松弛剂（神经肌肉接头阻滞剂） 维库溴铵：配置：成人 1mg/ml；儿童 0.5mg/ml 用法：0.1mg/kg 罗库溴铵: 配置：配置：成人 5mg/ml；儿童 2.5mg/ml 用法：0.6-1mg/kg 潘库溴铵：配置：成人 1mg/ml；儿童 0.5mg/ml 用法：0.1mg/kg

大鼠水合氯醛麻醉心得修订版

大鼠水合氯醛麻醉心得集团标准化小组：[VVOPPT-JOPP28-JPPTL98-LOPPNN]

大鼠水合氯醛麻醉心得本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间） 现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。 动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。 结果：如下表格所示： 水合氯醛浓度4%7%7%10%10% 水合氯醛剂量0.5mL/100g0.3mL/100g0.2mL/100g0.2mL/100g0.3mL/100g 诱导时间约7min约4min约7min约4min约4min 麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉 麻醉开始清醒时间约90min约100min未观察约68min114min 结论： 1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。 2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。 3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关 在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗》

的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样： （1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。 （2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。 （3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛 0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。 由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。 我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h 左右。 lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。 楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。 关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%,10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g（这个剂量应该跟cma1954站友用的3%，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，1ml/100g，”一样啊。水合氯醛的质量问题比较差有可能吧。

A_常用的大小鼠麻醉剂与剂量 (1)

IACUC參考資料A 常用的大小鼠麻醉劑與劑量 表一、小鼠（MOUSE）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表 藥劑劑量投藥方式備註 動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用 1 Atropine 0.02-0.05 mg/kg SC 2 Diazepam(Valium?) 5 mg/kg IP 3 Acepromazine 0.75 mg/kg IP 4 Ketamine 20-44 mg/kg IM 5 Terazol?,Zoletil?40-80 mg/kg IM,IP 小鼠不建議用此藥劑 6 CO2+ 10-50%O2 混合氣體To effect IH 1.作用時間短 2.CO2+ 10-50%O2 混合氣體其作用 時間較短，且因兩種氣體密度不 同，易造成O2在鋼瓶上層、CO2 在底部，導致氣體混合不均，需注 意 動物麻醉：進行侵略性實驗、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用。如需進行外科手術, 動物必須進入手術期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度（眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射）, 再 進行手術。 1 Pentobarbital 50-90 mg/kg IP 1.品系差異性大, 需注意 2.建議稀釋後使用 2 Thiopental 30-50 mg/kg IP 3 Ketamine 50-200 mg/kg 40-60 mg/kg IP IM 1.建議使用於minor surgery 2.屬於第三級管制藥品，人員須先向 衛生署申請使用許可 4 Ketamine/Acepromazine 100 mg/kg K+ 5 mg/kg A IP 5 Ketamine/Xylazine 40-85 mg/kg K + 5-21 mg/kg X 90-120 mg/kg K+5-10 mg/kg X IM IP 1.Yohimbine(1-2 mg/kg IP), Tolazoline(20 mg/kg IP), Atipamezol (1 mg/kgSC)為Xylazine 結抗劑 2.如需追加劑量, 使用1/3 ketamine 劑量 3.IM 由40 mg/kg K + 10 mg/kg X 劑量開始麻醉 4.IP 由80 mg/kg K + 10 mg/kg X 劑 量開始麻醉 6 Ketamine/Xylazine 1.0 ml K (100 mg/ kg)＋0.5 ml X (20 mg/ml)＋8.5 ml注 射用水混合, 0.1 ml/10g IP 同上 7 Ketamine/Medetomidine 0.38 ml K (100 mg/ kg)+0.5 ml M(1 mg/ml) + 4.12 ml注 射用水混合, 0.1 ml/10g IP Atipamezol (1 mg/kgSC)為 Medetomidine結抗劑 8 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/ Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1 注射用水:2 Midazolam:1混合, 0.1 ml/10g IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為 結抗劑 9 Tribromoethanol (Avertin) - 等量混合Tribromyl ethyl alcohol 和Tertiary amyl alcohol (1.2% dilution) 250 mg/kg (0.2 ml/10g) ICR mice建議使用2.5% 400 mg/kg IP 1.建議經動物實驗管理委員會審查 同意,確定有其科學研究之需求與 依據,才得以使用本藥劑 2.此藥劑對腹腔刺激性強,重複使用

SD大鼠麻醉

一、SD大鼠的麻醉 1、SD大鼠腹腔麻醉 把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。 乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。 乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。 2、SD大鼠吸入麻醉 可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC 就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。 3、SD大鼠经口气管插管 腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。 二、异氟醚大鼠麻醉 安全且具有麻醉科特色。 我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发器就行了。我们一般先开最大，大鼠一会儿不动了就麻好了（杯子要求至少半透明）。