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木瓜蛋白酶提取实验方案课件资料

木瓜蛋白酶提取实验方案课件资料
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实验设计

题目:木瓜蛋白酶的提取,纯化分离及其生物学研究

一、实验原理:

木瓜蛋白酶(papain)又称木瓜酶,广泛存在于番木瓜的根、茎、叶和果实,未成熟果实的乳汁中含量最丰富。是一种含疏基(-SH)肽链的内切酶,具有蛋白酶和酯酶的活性,有较广泛的特异性,对动植物蛋白、多肽、酯、酰胺等有较强的水解能力;同时还具有合成的功能,能把蛋白水解物合成为类蛋白质。工业用的木瓜蛋白酶一般都是未经纯化的多酶体系。现已知经木瓜乳汁干燥而得的木瓜蛋白酶至少含有四种主要酶类:木瓜蛋白酶(papain)、木瓜凝乳蛋白酶(chymopapain)、木瓜蛋白酶Ω(papaya proteinaseΩ)、木瓜凝乳蛋白酶M(chymopapain M),其中木瓜凝乳蛋白酶的含量最多,占可溶性蛋白的45%。

木瓜蛋白酶易溶于水和甘油,水溶液为无色或淡黄色,有时呈乳白色;几乎不溶于有机溶剂。它的最适pH值为5.7(一般3~9.5皆可),在中性或偏酸性时亦有作用;最适温度为55~60℃(一般10~85℃皆可),耐热性强,在90℃时也不会完全失活;受氧化剂抑制,还原性物质激活。本实验主要采取有机溶剂沉淀法结合硫酸铵分级沉淀法来提取番木瓜中的木瓜蛋白酶。

有机溶剂沉淀法:有机溶剂能降低溶液的电解常数,从而增加蛋白质分子上不同电荷的引力,导溶解度的降低,另外,有机溶剂与水的作用,能破坏蛋白质的水化膜,故蛋白质在一定浓度的有机溶剂中的溶解度差异而分离的方法。有机溶剂分段沉淀法它常用于蛋白质或酶的提纯。使用的有机溶剂多为乙醇和丙酮。高浓度有机溶剂易引起蛋白质变性失活,操作必须在低温下进行,并在加入有机溶剂时注意搅拌均匀以避免局部浓度过大。

硫酸铵分级沉淀法:硫酸铵沉淀法可用于从大量粗制剂中浓缩和部分纯化蛋白质。高浓度的盐离子在蛋白质溶液中可与蛋白质竞争水分子,从而破坏蛋白质表面的水化膜,降低其溶解度,使之从溶液中沉淀出来。各种蛋白质的溶解度不同,因而可利用不同浓度的盐溶液来沉淀不同的蛋白质。这种方法称之为盐析。盐析时溶液PH在木瓜蛋白酶等电点时(PI=8.75)则效果最好,盐浓度通常用饱和度来表示。硫酸铵因其溶解度大,温度系数小和不易使蛋白质变性而应用最广。

木瓜蛋白酶活力测定:

蛋白酶在一定条件下不仅能够水解蛋白质中的肽键,也能够水解酰胺键和酯键,因此可用蛋白质或人工合成的酰胺及酯类化合物作为底物来测定蛋白酶的活力。本实验选用酪蛋白为底物,测定微生物蛋白酶水解肽键的活力。酪蛋白经蛋白酶作用后,降解成相对分子质量较小的肽和氨基酸,在反应混合物中加入三氯乙酸溶液,相对分子质量较大的蛋白质和肽就沉淀下来,相对分子质量较小的肽和氨基酸仍

留在溶液中,溶解于三氯乙酸溶液中的肽的数量正比于酶的数量和反应时间。在280nm波长下测定溶液吸光度的增加,就可计算酶的活力。

酶活力单位定义:在规定条件下,1min内酶水解酪蛋白释放出相当于1ug/ml酪氨酸在275nm波长处的吸收度为1个活力单位。以0.1mol/l盐酸溶液做空白,在275nm波长处测定空白溶液,待测定液,对照品溶液的吸光度。

饱和硫酸铵溶解曲线:

二、实验材料与仪器:

材料:未成熟的番木瓜,无水乙醇,0.05mol/L磷酸氢二钠; 0.1mol/L HC1,

乙二胺四乙酸二钠固体;氢氧化钠固体,酪蛋白固体,半胱氨酸固体,氯化钠固体,三氯乙酸固体,硫酸铵粉末,乙酸钠固体,和冰乙酸溶液,EDTA。

仪器:高速组织捣碎机,水浴箱,精确pH计,紫外分光光度计,高速冷冻离心机,精密电子天平,低温冰箱。

三、技术路线

四、实验步骤

4.1实验前准备:所需试剂的配制以及考马斯亮蓝G-250法测蛋白含量的预实验,确保试验方法的可行性。

考马斯亮蓝G-250染液(0.01%):称取0.1g考马斯亮蓝G-250固体粉末,溶于

50mL 95%乙醇中(95%乙醇取实验室无水乙醇47.5mL加2.5mL蒸馏水)再加入

86% 磷酸100mL,倒入1000mL容量瓶加蒸馏水定容至1000mL。静置1h后,取棕色试剂瓶用乙醇清洗干净用滤纸过滤溶液后封存。

标准蛋白质溶液(0.1mg/mL):准确称取牛血清蛋白0.01g用蒸馏水溶解并稀释到100mL。现配现用。

酶保护剂:准确称量1.21g的半胱氨酸于100ml蒸馏水中,调节PH至9.0,溶解半胱氨酸,再加入0.1871g的EDTA,定容至250ml,转入棕色瓶中。

500ml的2%(m/v)碳酸氢钠和 1mmol/L EDTA(pH 8.0)溶液:称取10g的碳酸氢钠和0.1871g的EDTA溶于500ml蒸馏水中,调节PH至8.0。

500ml的1mmol/L EDTA(pH 8.0)溶液:称取0.1871g的EDTA溶于500ml蒸馏水中,调节PH至8.0。

酪蛋白溶液:称取酪蛋白0.6g加入0.05mol/L磷酸氢二钠溶液80mL(取1.433g 磷酸氢二钠固体加80mL蒸馏水即得溶液),置沸水浴中煮30min,时时搅拌,冷却至室温。加1M盐酸调节PH至7.0 0.1 。加蒸馏水稀释到100mL。用前配置。

酶稀释液:

A液称取半胱氨酸0.264g,氯化钠1.17g,加蒸馏水25mL溶解;

B液称取乙二胺四乙酸二钠0.112g,加蒸馏水10mL溶解;

合并A、B液,搅拌均匀,用4.0mol/L氢氧化钠溶液调节PH值到5.5,加蒸馏水稀释至50mL 。用前配置。

三氯乙酸溶液:取三氯乙酸0.9g,加乙酸钠1.495g和冰乙酸0.95mL,加水溶解并稀释至50mL。

4.2木瓜蛋白酶提取

4.2.1粗酶液提取:

①用薄的不锈钢刀片沿未成熟的番木瓜的纵线将果皮割破,深度为2~3mm,根据果实大小的不同,每个果实可以5~10条刀口。

②将木瓜放于一个大烧杯中,使木瓜乳汁流入大烧杯中。

③收集10ml乳汁加入190ml蒸馏水水,匀速轻柔搅拌1h,得浆液。

④浆液用8层纱布进行过滤,将所得液分装到离心管中,用离心机在3500r/min的条件下,离心15min。

⑤收集上清液至一洁净的试管中,既得木瓜蛋白酶原液,-20℃存取10ml酶原液(编号为酶液1)。

4.2.2粗酶液纯化:

将粗液放入冰桶中,加入适量酶保护剂(0.04mol/L的半胱氨酸和

0.004mol/L的EDTA),混匀后如下表加入试剂。

对过夜的酶液继续处理

4.2.3透析:

8000-14000标号的透析袋处理:

①取透析袋剪成适当长度的小段。放入大体积的2%(m/v)碳酸氢钠和 1mmol/L EDTA(pH 8.0)中将透析袋煮沸10分钟。

②用蒸馏水彻底漂洗透析袋。放在 1mmol/L EDTA(pH 8.0)中将之煮沸10分钟。

③冷却后,存放于4度,必须确保透析袋始终浸没在溶液内。从此时起取用透析袋是必须戴手套,在透析袋内装满水然后排出,将之清洗干净。

④系好透析袋的一端,从另一端注入酶液4、5,将透析袋放入蒸馏水中,在摇床上震荡,时时换蒸馏水。

⑤直至向蒸馏水中加入氯化钡溶液,无沉淀产生及透析除盐完成。取出蛋白质溶液。

4.3木瓜蛋白酶活性及总蛋白含量测定:

4.3.1酶活性的测量

酪氨酸标准液和酶液处理

酪氨酸标准液的制备:精密称取酪氨酸0.005g用0.1mol/L盐酸溶解并定容至100mL。(此为50ug/ml的标准液)

酶液的处理:取0.3ml酶液,加酶稀释液2.7ml,稀释至3mL。

操作

①待测液:准确量取酶液溶液各1.0mL,分别置于2支10mL带塞试管中,于50度水浴预热5分钟,准确加入50度预热的酪蛋白溶液5mL,立即振摇,置50度水浴中,精确反应10min后,加三氯乙酸溶液5.0mL,振摇,于50度水浴中放置40min,用干燥滤纸过滤,滤液在2h内采用分光光度法以水为空白,在275nm 的波长处测定吸光度A。

②空白对照液:再精确量取酶液1.0mL,置于10mL具塞试管中,于50度水浴预热5min,准确加入50度预热的蒸馏水5ml, 置50度水浴中,加入三氯乙酸溶液5mL,振摇,于50度水浴中放置40min,用干燥滤纸过滤,滤液在2h内采用分光光度法以水为空白,在275nm的波长处测定吸光度A0。

③酪氨酸标准液:另取酪氨酸对照溶液,以蒸馏水为空白,在275nm的波长处

公式:

酶活力(U/g)=

1000

11

10

2

1

0?

?

?

?

?

-

n

W

W

A

A

A

n

式中:

W1—酪氨酸标准液每1mL中含酪氨酸的量,单位为微克(μg);

10—反应时间;

11—测定总体积;

n—待测液的稀释倍数;

1000—毫克与克的转换倍数。

在上述条件下,每分钟水解酪蛋白生成1μg酪氨酸所需的酶量为1个酶活力单位。

4.3.2酶含量的测量:

取8支15 mL试管,按下表加入试剂

将试管摇匀,放置2-3分钟。用分光光度计比色测定吸光值A

595nm

。(注

意应在1小时内完成比色),以A

595nm

为纵坐标,标准蛋白色质浓度为横坐标,绘制标准曲线。

对酶液进行稀释,统一酶液体积至100ml:分别取1ml 酶液1、酶液2、酶液3、酶液4、酶液5、酶液6于6支干净离心管中稀释至10ml(相当于木瓜蛋白酶溶于100ml蒸馏水中),再进行下步处理。

用倍比稀释的方法找出酶液测吸光度的最适倍数,使再重新取样测量,取1ml酶液于试管中,再加4ml考马斯亮蓝溶液,混匀,静置5min后在A595下测吸光度,再根据标准曲线算酶含量。

木瓜蛋白酶活力测定方法

木瓜蛋白酶活力测定方法 分别精密量取酪蛋白溶液5ml,置3支具塞试管中,置40℃水浴中保温10分钟,各精密加入供试品溶液2ml,摇匀,置40℃水浴中,开始记时,准确反应1小时,立即精密加入三氯醋酸溶液5ml,强力振摇混匀,置40℃水浴中放置30~40分钟,使沉淀的蛋白质完全凝固,滤过,滤液作为供试品溶液。精密量取酪蛋白溶液5ml置另一具试管,于40℃水浴中保温1小时,精密加入三氯醋酸溶液5ml,强力振摇混匀,精密加入供试品溶液2ml,置40℃水浴中放置30~40分钟,滤过,滤液作为空白溶液。照分光光度法(中国药典2000年版二部附录IV A),以0.1mol/L 盐酸溶液为空白,在275nm的波长处测定空白溶液、供试品溶液和对照品溶液的吸收度,按下式计算: 效价(单位/mg)=A/As*Cs*12/2*稀释倍数/W 式中A为供试品溶液的吸收度减去空白溶液的吸收度: As为酪氨酸对照品溶液的吸收度: Cs为酪氨酸对照品溶液的浓度, ug/ml W为供试品重量,mg; 在上述条件下,释放1ug的酪氨酸的酶量为一个活力单位。 试剂酪蛋白溶液:取酪蛋白1g,加0.05mol/L磷酸氢二钠溶液50ml,置沸水浴中煮30分钟,时时搅拌,冷至室温,加0.05mol/L枸椽酸溶液调节PH至6.0±0.1,并迅速搅拌,防止酪蛋白沉淀,用水稀释至100ml(临用新配)。酶稀释液:取无水磷酸氢二钠3.55g,加水400ml溶解,加乙二胺四醋酸二钠1.1g和盐酸半胱氨酸2.74g,振摇溶解,用1mol/L盐酸或1mol/L氢氧化钠溶液调节PH6.5±0.1,用水稀释至500ml,混匀(临用新配)三氯醋酸溶液:取三氯醋酸17.99g,加醋酸钠29.94g和冰醋酸18.9ml,加适量水溶解后,加水使成1000ml,摇匀。 酶活力测定对照品溶液的制备:精密称取已105℃干燥至恒重的酪氨酸对照品适量,用0.1mol/L盐酸溶液制成每1ml中约含40ug的溶液。供试品溶液的制备:取本品适量(约相当于木瓜酶活力120万单位),精密称定,加酶稀释液振摇,制成每1ml中含200~300单位的溶液,摇匀。 淀粉酶活力测定 实验技术 2008-05-27 18:01:29 阅读213 评论0字号:大中小 一、目的 淀粉是葡萄糖以α-1,4糖苷键及α-1,6 糖苷键连结的高分子多糖,是人类和动物的重要食物,也是食品、发酵、酿造、医药、 纺织工业的基本原料。 淀粉酶是加水分解淀粉的酶的总称,淀粉酶对淀粉的分解作用是工业上利用淀粉的依 据,也是生物体利用淀粉进行代谢的初级反应。小麦成熟期如遇阴雨天气,有的品种会发生

木瓜蛋白酶提取实验记录

木瓜蛋白酶实验记录 2016.11.3 实验前准备: 所需试剂的配制: 饱和硫酸铵:取150ml蒸馏水,放入冰桶中,不断加入硫酸铵固体,直至沉淀不能溶解,过滤取滤液,保存在4℃冰箱中。 酶保护剂:准确称量1.21g的半胱氨酸于100ml蒸馏水中,调节PH 至9.0,溶解半胱氨酸,再加入0.1871g的EDTA,定容至250ml,转入棕色瓶中。 预实验:确定实验的可行性 酶液提取: ①用薄的不锈钢刀片沿未成熟的番木瓜的纵线将果皮割破,深度为2~3mm,根据果实大小的不同,每个果实可以5~10条刀口。 ②将木瓜放于一个大烧杯中,使木瓜乳汁流入大烧杯中。 ③收集5ml乳汁加入95ml蒸馏水水,匀速轻柔搅拌1h,得浆液。 ④浆液用8层纱布进行过滤,将所得液分装到离心管中,用离心机在3500r/min的条件下,离心15min。 ⑤收集上清液至一洁净的试管中,既得木瓜蛋白酶原液,-20℃存取10ml酶原液。 ⑥分装木瓜蛋白酶原液,加入2ml酶保护剂(0.04mol/L的半胱氨酸和0.002mol/L的EDTA),混匀后如下表加入试剂。

对静置的酶液继续处理

2016.11.4 试剂配制 考马斯亮蓝G-250染液(0.01%):称取0.1g考马斯亮蓝G-250固体粉末,溶于50mL 95%乙醇中(95%乙醇取实验室无水乙醇47.5mL加2.5mL蒸馏水)再加入86% 磷酸100mL,倒入1000mL容量瓶加蒸馏水定容至1000mL。静置1h后,取棕色试剂瓶用乙醇清洗干净用滤纸过滤溶液后封存。 重提木瓜蛋白酶 实验设置对照 一组开始即加入酶保护剂编号酶B*、一组加硫酸铵之前才加酶保编号酶*。 ①用薄的不锈钢刀片沿未成熟的番木瓜的纵线将果皮割破,深度为2~3mm,根据果实大小的不同,每个果实可以5~10条刀口。 ②将木瓜放于一个大烧杯中,使木瓜乳汁流入大烧杯中。 ③收集10ml乳汁加入190ml蒸馏水水,匀速轻柔搅拌1h,得浆液。 ④浆液用8层纱布进行过滤,将所得液分装到离心管中,用离心机在3500r/min的条件下,离心15min。 ⑤收集上清液至一洁净的试管中,既得木瓜蛋白酶原液,-20℃存取

果胶的提取与果胶含量的测定

果胶的提取与果胶含量 的测定 Document number:NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT

果胶的提取与果胶含量的测定 一、引言 果胶广泛存在于水果和蔬菜中,如苹果中含量为—%(以湿品计),在蔬菜中以南瓜含量最多(达7%-17%)。果胶的基本结构是以α-1,4苷键连接的聚半乳糖醛酸,其中部分羧基被甲酯化,其余的羧基与钾、钠、铵离子结合成盐。在果蔬中,尤其是未成熟的水果和皮中,果胶多数以原果胶存在,原果胶通过金属离子桥(比如Ca2+)与多聚半乳糖醛酸中的游离羧基相结合。原果胶不溶于水,故用酸水解,生成可溶性的果胶,再进行提取、脱色、沉淀、干燥,即为商品果胶。从柑橘皮中提取的果胶是高酯化度的果胶(酯化度在70%以上)。在食品工业中常利用果胶制作果酱、果冻和糖果,在汁液类食品中作增稠剂、乳化剂。 二、实验材料、试剂与仪器 材料:桔皮,苹果等; 试剂:%HCL,95%乙醇(AR),精制乙醇,乙醚,LHCl,%咔唑乙醇溶液,半乳糖醛酸标准液,浓硫酸(优级纯) 仪器:分光光度计,50mL比色管,分析天平,水浴锅,回流冷凝器,烘箱等三、实验步骤 (一)果胶的提取 1、原料预处理:称取新鲜柑橘皮20g(或干样8g),用清水洗净后,放入250mL容量瓶中,加水120mL,加热至90℃保持5-10min,使酶失活。用水冲洗后切成3~5mm的颗粒,用50℃左右的热水漂洗,直至水为无色、果皮无异味为止(每次漂洗必须把果皮用尼龙布挤干,在进行下一次的漂洗)。 2、酸水解提取:将预处理过的果皮粒放入烧杯中,加约%HCL溶液,以浸没果皮为宜,调pH至~,加热至90℃煮45min,趁热用100目尼龙布或四层纱布过滤。 3、脱色:在滤液中加入~%的活性炭,于80℃加热20min,进行脱色和除异味,趁热抽滤(如抽滤困难可加入2%~4%的硅藻土作为助滤剂)。如果柑橘皮漂洗干净萃取液为清澈透明则不用脱色。

酶工程实验大纲

湖北大学 酶工程实验 (0818800193)实验教学大纲 (第2版) 生命科学学院 生化教研室 2014年7月

前言 课程名称:酶工程实验实验学时:16学时 适用专业:生物工程课程性质:必修 一、实验课程简介 酶工程是生物工程的主要内容之一,是现代酶学和生物工程学相互结合而发展起来的一门新的技术学科。它将酶学、微生物学的基本原理与化工、发酵等工程技术有机结合起来,并随着酶学研究的迅速发展,特别是酶的广泛应用而在国民生产生活中日益发挥着越来越重要的作用。酶工程实验课是生物工程等本科实验教学的一个重要组成部分,通过实验教学可以加强学生对酶工程基本知识和基本理论的理解,掌握现代酶学与相关技术的有关的基本的实验原理与技能。在实验过程中要求学生自己动手,分析思考并完成实验报告。酶工程实验性质有基础性、综合性、设计(创新)性三层次。 二、课程目的 本实验课程主要根据酶工程的三大块内容即酶的生产、酶的改性与酶的应用来设计安排实验,通过这些实验内容,使学生深入理解酶工程课程的基本知识;巩固和加深所学的基本理论;掌握酶工程中基本的操作技能。同时,通过实验培养学生独立观察、思考和分析问题、解决问题和提出问题的能力,养成实事求是、严肃认真的科学态度,以及敢于创新的开拓精神;并在实验中进一步提高学生的科学素养。 三、考核方式及成绩评定标准 考核内容包括实验过程中的操作情况,实验记录及结果的准确性,实验报告的书写及结果分析,思考题的回答情况,仪器设备的使用情况及遵守实验室规章制度的情况等,根据这些方面进行成绩评判和记录,综合给出实验总成绩。 四、实验指导书及主要参考书 1.魏群:生物工程技术实验指导,高等教育出版社,2002年8月。 2.禹邦超:酶工程(附实验),华中师范大学出版社,2007年8月 五、实验项目

木瓜蛋白酶在美白护肤中的应用

南宁东恒华道生物科技有限责任公司——专业酶制剂生产厂家 销售热线4000-0771-80 木瓜蛋白酶在美白护肤中的应用美白产品在行业中的现状 人体到了25岁以后,身体的新陈代谢功能减慢,黑色素无法正常排解,而在角质层沉积形成斑点,形成黄褐斑、黑斑和色斑等。统计资料显示,13亿人口的中国,祛斑美容产品每年的市场份额已超过100亿元,年利润在千万元以上。国内美白、祛斑类产品已成为护肤品中的主流产品之一,而美白护肤产品绝大多数属于化学试剂或植物提取物,效果有限而且副作用明显,严重影响了用户的持续使用和行业的发展。 美白产品在行业中存在的问题 美白是全世界的难题,有一些不良商家为了使护肤品达到良好的美白效果,在护肤品中添加一些金属元素如汞、铅等。添加汞后,汞化合物会破坏表皮层的酵素活动,使黑色素无法形成。铅的氧化物具有一定遮盖作用,也可用于美白。如果化妆品中添加了砷、汞、铅,长期使用对人体造成的损害最大。在SK—II 之后,又有4大著名化妆品品牌(迪奥、雅诗兰黛、兰蔻、倩碧)的6款粉饼产品被香港媒体披露含有重金属铬和钕。消费者不仅感到恐惧,也对化妆品的安全性产生怀疑。 木瓜蛋白酶在行业中的应用 木瓜酶是从番木瓜水果中提取而得含有多种生物酶的美白去斑生物产品,主要作用为嫩肤及美白去斑。其生物机理学: 第一,木瓜酶作用于人体皮肤老化角质层,促使其分解退化、去除,达到嫩肤效果及促进细胞生长的效果,且木瓜酶水解物在皮肤表层形成一层氨基酸衍生物薄膜,使肌肤保持润湿与光滑; 第二,木瓜酶易于与形成色斑的黑色素中的铜离子形成络合物,减少黑色素的形成和去除色斑的黑色素,且木瓜酶水解的三钛物质可直接抑制形成黑色素的络氨酸活性,消除自由基作用,从而达到美白去斑的效果。 归结起来,木瓜酶通过去除老化皮肤角质层及与色斑中铜离子快速反应,抑制形成黑色素的络氨酸活性和去除氧化自由基,达到嫩肤美白去斑的功效。 1

木瓜蛋白酶的提取

木瓜蛋白酶的提取、分离纯化及其生物学研究综述及实验方法 13生物技术第二大组第二小组 组员:王玓玥(组长)、王子贺、王思瑶、王宇涛、王守鑫、谭国栋一、研究背景: 在经济飞速发展的今天,人们的生活水平已远远不只在于吃饱穿暖,食品的安全和营养问题受到人们越来越多的关注,绿色健康的生活也成为大家共同的追求,木瓜蛋白酶以它自身耐热及特殊结构等特点被广泛的用于食品行业,如何分离纯化得到高纯度低成本的木瓜蛋白酶则是人们现在研究的重点,本小组便也以此为研究主题展开实验。 二、木瓜蛋白酶基本介绍:木瓜蛋白酶,又称木瓜酶,是一 种蛋白水解酶。木瓜蛋白酶是番木瓜中含有的一种低特异性蛋白水解酶,广泛地存在于番木瓜的根、茎、叶和果实内,其中在未成熟的乳汁中含量最丰富。木瓜蛋白酶的活性中心含半胱氨酸,属于巯基蛋白酶,它具有酶活高、热稳定性好、天然卫生安全等特点,这种蛋白水解酶,分子量为23406,由一种单肽链组成,含有212个氨基酸残基。至少有三个氨基酸残基存在于酶的活性中心部位,他们分别是Cys25、His159和Asp158,当Cys25被氧化剂氧化或与金属离子结合时,酶的活力被抑制,而还原剂半胱氨酸(或亚硫酸盐)或EDTA能恢复酶的活力木瓜蛋白酶是一种在酸性、中性、碱性环境下均能分解蛋白质的蛋白酶。它的外观

为白色至浅黄色的粉末,微有吸湿性;木瓜蛋白酶溶于水和甘油,水溶液为无色或淡黄色,有时呈乳白色;几乎不溶于乙醇、氯仿和乙醚等有机溶剂。木瓜蛋白酶是一种含巯基(-SH)肽链内切酶,具有蛋白酶和酯酶 的活性,有较广泛的特异性,对动植物蛋白、多肽、酯、酰胺等有较强的水解能力,但几乎不能分解蛋白胨。木瓜蛋白酶的最适合PH值6~7(一般3~9.5皆可),在中性或偏酸性时亦有作用,等电点(pI)为8.75;木瓜蛋白酶的最适合温度55~65℃(一般10~85℃皆可),耐热性强,在90℃时也不会完全失活;受氧化剂抑制,还原性物质激活。。另外六个半胱氨酸残基形成了三对二硫键,且都不在活性部位。纯木瓜蛋白酶制品可含有:(1)木瓜蛋白酶,分子量21000,约占可溶性蛋白质的10%;(2)木瓜凝乳蛋白酶,分子量26000,约占可溶性蛋白质的45%;(3)

果胶的提取

实验果胶的提取 一、目的要求 1.掌握从柚子皮中提取果胶的方法。 2. 了解果胶的性质和提取原理。 3. 了解果胶在食品工业中的用途。 二、实验原理 果胶物质广泛存在于植物中,主要分布于细胞壁之间的中胶层,尤其以果蔬中含量为多。不同的果蔬含果胶物质的量不同,山楂约为6.6%,柑橘约为0.7~1.5%,南瓜含量较多,约为7%~17%。在果蔬中,尤其是在未成熟的水果和果皮中,果胶多数以原果胶存在,原果胶不溶于水,用酸水解,生成可溶性果胶,再进行脱色、沉淀、干燥即得商品果胶。从柚子皮中提取的果胶是高酯化度的果胶,在食品工业中常用来制作果酱、果冻等食品。 果胶是一种分子中含有几百到几千个结构单元的线性多糖,平均分子量大约在50000~180000之间,其基本结构是以α-1,4苷键结合而成的聚半乳糖醛酸,在聚半乳糖醛酸中,部分羧基被甲醇酯化,剩余部分与钾、钠或铵等离子结合。 在果蔬中果胶多以原果胶存在。在原果胶中,聚半乳糖醛酸可被甲醇部分酯化,并以金属桥(特别是钙离子)与多聚半乳糖醛酸分子残基上的游离羧基相连接。原果胶不溶于水,用酸水解时这种金属离子桥(离子键)被破坏,即可得可溶性果胶。再进行纯化和干燥即为商品果胶。 三、实验器材 恒温水浴、布氏漏斗、抽滤瓶、玻棒、尼龙布、表面皿、精密pH试纸、烧杯、电子天平、小刀、真空泵、柚子皮(新鲜)。 四、实验试剂 1.95%乙醇。 2.浓盐酸 3.2mol/L氨水 4.活性炭 五、操作步骤 1.称取新鲜柚子皮5g,用水冲洗后切成3~5 mm大小的颗粒,放入100 mL烧杯中,加20 mL水,加热至90 ℃保温5~10 min,使酶失活。把果皮粒用尼龙布挤干,用50 ℃左右的热水漂洗,直至水为无色,果皮无异味为止。每次漂洗都要把果皮用尼龙布挤干,再进行下一次漂洗[注1]。 2.将处理过的果皮粒放入烧杯中,加入45 mL水,滴加浓盐酸调溶液的pH 2.0~2.5之间。加热至90 ℃,在恒温水浴中保温30 min,保温期间要不断地搅动,趁热用垫有100目尼龙布(或四层纱布)的布氏漏斗抽滤,收集滤液。 3.在滤液中加入0.5—1%的活性炭于80℃加热10 分钟进行脱色和除异味,趁热抽滤[注2]。 4.滤液冷却后,滴加2mol/L氨水调至pH 3~4,在不断搅拌下缓缓地加入95%酒精溶液,加入乙醇的量为原滤液体积的1.5倍(使其中酒精的质量分数达50%~60%)。酒精加入过程中即可看到絮状果胶物质析出,静置10 min后,用尼龙布过滤、挤压。将脱水的果胶放入表面皿中摊开,在60~70 ℃烘干。将烘干的果胶磨碎过筛,制得干果胶。 5.滤液可用蒸馏法收回乙醇。 六、问题与思考 1.从柚子皮中提取果胶时,为什么要加热使酶失活? 2.沉淀果胶除用乙醇外,还可用什么试剂? 3.在工业上,可用什么果蔬原料提取果胶? [注1]:处理的主要目的是灭酶,以防果胶酶解。同时也是对果皮进行清洗,以除去泥土、杂质、色素等。 这种处理的好坏直接影响果胶的色泽和质量。 [注2]:如果柚子皮漂洗干净,滤液清沏,则可不脱色。因为胶状物容易堵塞滤纸,这时可加入占滤液2~4%的硅藻土用助滤剂。

木瓜蛋白酶酶活力检测方法

木瓜蛋白酶酶活力检测方法 南宁庞博生物工程有限公司企业标准 Q/NPB 01-2019 食品添加剂木瓜蛋白酶制剂 1、范围 本标准规定了食品添加剂木瓜蛋白酶制剂的原辅料要求、技术要求、试验方法、检验规则、标志、包装、运输、贮存。 本标准适用于以木瓜果乳汁为原料,添加葡萄糖,经浸泡提取、过滤、浓缩、干燥、调配粉碎、包装等工艺制成的食品添加剂木瓜蛋白酶制剂。 2、规范性引用文件 下列文件中的条款通过本标准引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件,其随后所有的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准,然而,鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准。 GB/T 191-2019 包装储运图示标志 GB/T 601-2002 化学试剂标准滴定溶液的制备 GB/T 602-2002 化学试剂杂质测定用标准溶液的制备 GB/T 603-2002 化学试剂试验方法中所用制剂及制品的制备 GB 2760 食品添加剂使用卫生标准 GB/T 4789.2-2019 食品卫生微生物检验菌落总数的测定 GB/T 4789.3-2019 食品卫生微生物检验大肠菌群计数 GB/T 4789.4-2019 食品卫生微生物检验沙门氏菌检测 GB/T 4789.6-2019 食品卫生微生物检验致泻大肠埃希氏菌检测 GB/T 4789.10-2019 食品卫生微生物检验金黄色葡萄球菌检验 GB/T 5009.3-2019 食品中水分的测定 GB/T 5009.74-2019 食品添加剂中重金属限量试验 GB/T 5009.75-2019 食品添加剂中铅的测定 GB/T 5009.76-2019 食品添加剂中砷的测定 GB 5749-2019 生活饮用水卫生标准 GB/T 6682-2019 分析实验室用水规格和试验方法 GB 7718 预包装食品标签通则 GB/T 8170-2019 数值修约规则与极限数值的表示和判定 GB/T 20880-2019 食用葡萄糖 JJF 1070 定量包装商品净含量检验规则 NY/T 691-2019 番木瓜

果胶的提取

果胶的提取 一、目的要求 1.学习从柑橘皮中提取果胶的方法。 2.进一步了解果胶质的有关知识。 二、实验原理 果胶物质广泛存在于植物中,主要分布于细胞壁之间的中胶层,尤其以果蔬中含量为多。不同的果蔬含果胶物质的量不同,山楂约为6.6%,柑橘约为0.7~1.5%,南瓜含量较多,约为7%~17%。在果蔬中,尤其是在未成熟的水果和果皮中,果胶多数以原果胶存在,原果胶不溶于水,用酸水解,生成可溶性果胶,再进行脱色、沉淀、干燥即得商品果胶。从柑橘皮中提取的果胶是高酯化度的果胶,在食品工业中常用来制作果酱、果冻等食品。 三、实验器材 恒温水浴、布氏漏斗、抽滤瓶、玻棒、尼龙布、表面皿、精密pH试纸、烧杯、电子天平、小刀、真空泵。 柑橘皮(新鲜)。 四、实验试剂 1.95%乙醇、无水乙醇。 2.0.2 mol/L盐酸溶液 3.6 mol/L氨水 4.活性炭 五、操作步骤 1.称取新鲜柑橘皮20 g(干品为8 g),用清水洗净后,放入250 mL 烧杯中,加120 mL水,加热至90 ℃保温5~10 min,使酶失活。用水冲洗后切成3~5 mm大小的颗粒,用50 ℃左右的热水漂洗,直至水为无色,果皮无异味为止。每次漂洗都要把果皮用尼龙布挤干,再进行下一次漂洗。 2.将处理过的果皮粒放入烧杯中,加入0.2 mol/L的盐酸以浸没果皮为度,调溶液的pH 2.0~2.5之间。加热至90 ℃,在恒温水浴中保温40 min,保温期间要不断地搅动,趁热用垫有尼龙布(100目)的布氏漏斗抽滤,收集滤液。 3.在滤液中加入0.5%~1%的活性炭,加热至80 ℃,脱色20 min,趁热抽滤(如橘皮漂洗干净,滤液清沏,则可不脱色)。 4.滤液冷却后,用6 mol/L氨水调至pH 3~4,在不断搅拌下缓缓地加入95%酒精溶液,加入乙醇的量为原滤液体积的1.5倍(使其中酒精的质量分数达50%~60%)。酒精加入过程中即可看到絮状果胶物质析出,静置20 min 后,用尼龙布(100目)过滤制得湿果胶。 5.将湿果胶转移于100 mL烧杯中,加入30 mL无水乙醇洗涤湿果胶,

木瓜蛋白酶

发酵工程与设备课程论文 题目木瓜蛋白酶 班别学号 姓名 成绩

木瓜蛋白酶 摘要:木瓜蛋白酶是一种能分解蛋白质的蛋白酶。先了解木瓜蛋白酶的制备及保存,接着分析它的化学修饰和酶活力的影响。最后,木瓜蛋白酶的固定化及方法以及它在各个行业的应用。Abstract: Papain is a protease that breaks down proteins.To understand the preparation and preservation of papain and then analyzed its chemical modification and enzyme activities.Finally, the immobilized papain and the method and its application in various industries 关键字:木瓜蛋白酶化学修饰酶活力固定化行业的应用Keywords:papain Chemical modification enzyme immobilization industry applications 木瓜蛋白酶是一种在酸性、中性、碱性环境下均能分解蛋白质的蛋白酶。它的外观为白色至浅黄色的粉末,微有吸湿性。它是利用未成熟的番木瓜果实中的乳汁,采用现代生物工程技术提炼而成的纯天然生物酶制品。它是一种含疏基肽链内切酶,具有蛋白酶和酯酶的活性,有较广泛的特异性,对动植物蛋白、多肽、酯、酰胺等有较强的水解能力,同时,还具有合成功能,能把蛋白水解物合成为类蛋白质。溶于水和甘油,水溶液无色或淡黄色,有时呈乳白色;几乎不溶于乙醇、氯仿和乙醚等有机溶剂。 作为植物来源的蛋白酶来说,此酶研究进展的最快。此酶主要是以内肽酶的形态起作用。活性的产生,而半胱氨酸残基是不可缺少的,所以是硫基蛋白酶的一种,底物的特异性不太严格,分子量为23400,氨基酸残基数212。 一、木瓜蛋白酶的制备及保存 木瓜蛋白酶的制备是将未成熟番木瓜果实割取乳液去杂,在室温下,入半胱氨酸溶液在研钵中充分磨匀,静置后取上清液即

木瓜蛋白酶的提取纯化实验报告

木瓜蛋白酶的分离纯化 一、目的 (1)它是利用未成熟的番木瓜(Carica papaya)果实中的乳汁中提取粗酶液,并进一步纯化,获得高纯度的木瓜蛋白酶。 (2)通过此次试验,熟悉掌握木瓜蛋白酶分离纯化的基本步骤和原理,了解离心分离,萃取等实验技术。 二、原理 木瓜蛋白酶( Papain )是一种巯基蛋白酶,它分解比胰脏蛋白水解酶更多、更广泛的蛋白底物。它也具有脂酶活力。其分子量约为 23000 左右。在 25 ℃ , pH6.2 时, 1 分钟生成1umol酪氨酸的酶量为 1 单位。木瓜蛋白酶是单条肽链,有 211 氨基酸残基折叠成两部分形成裂缝,酶分子只有 1 个巯基,对酶活力是必需的,激活剂有半胱氨酸,硫化物,亚硫酸盐和 EDTA ;抑制剂有巯基试剂,包括重金属和羧基试剂和过氧化氢。 酪蛋白是一种蛋白质,它被木瓜蛋白酶降解生成的酪氨酸在紫外光区275nm 处有吸收峰,根据测定 275nm 处的吸收值,可以判定木瓜蛋白酶的酶活力。吸收值的大小与酪氨酸含量的多少有关,吸收值大说明酪氨酸含量高,也就是说木瓜蛋白酶分解的酪蛋白多,酶活力高。 三、实验材料

番木瓜汁;PEG (聚乙二醇,分子量为6000); (NH4)2SO4;三氯乙酸(TCA);酪氨酸;考马斯亮蓝 四、仪器设备 ( 1 )离心机 4000-1000rpm (冷冻式或非冷冻式) ( 2 ) 752 紫外分光光度计 ( 3 )水浴箱 ( 4 )冰箱 ( 5 )榨汁机 五、玻璃器皿(以组为单位) 试管( 6 ), 100 mL 烧杯( 2 ),吸管( 1 )、玻棒( 1 ),试剂瓶( 1000 mL 、 500 mL 、 250 mL 等),移液管或移液器 5mL(1) 、 1mL(2) 、 0.5mL ( 1 ),漏斗( 3 ),滤纸( 3-6 )等 六、实验试剂配制及实验步骤 (一)酪氨酸的标准曲线

从果皮中提取果胶

从果皮中提取果胶 一、实验目的 1、学习从从果皮中提取果胶的基本原理和方法, 了解果胶的一般性质。 2、掌握提取有机物的原理和方法。 3、进一步熟悉萃取、蒸馏、升华等基本操作。 二、实验原理 果胶是一种高分子聚合物,存在于植物组织内,一般以原果胶、果胶酯酸和果胶酸3种形式存在于各种植物的果实、果皮以及根、茎、叶的组织之中。果胶为白色、浅黄色到黄色的粉末,有非常好的特殊水果香味,无异味,无固定熔点和溶解度,不溶于乙醇、甲醇等有机溶剂中。粉末果胶溶于20倍水中形成粘稠状透明胶体,胶体的等电点pH值为3.5。果胶的主要成分为多聚D—半乳糖醛酸,各醛酸单位间经a—1,4糖甙键联结,具体结构式如图1。 图1 果胶的结构式 在植物体中,果胶一般以不溶于水的原果胶形式存在。在果实成熟过程中,原果胶在果胶酶的作用下逐渐分解为可溶性果胶,最后分解成不溶于水的果胶酸。在生产果胶时,原料经酸、碱或果胶酶处理,在一定条件下分解,形成可溶性果胶,然后在果胶液中加入乙醇或多价金属盐类,使果胶沉淀析出,经漂洗、干燥、精制而形成产品。 三、主要仪器和药品 仪器:恒温水浴锅、真空干燥箱、布氏漏斗、抽滤瓶、玻棒、纱布、表面皿、精密pH试纸、烧杯、电子天平、小刀、小剪刀、真空泵、。 药品:干柑桔皮、稀盐酸、95%乙醇(分析纯)等。 四、实验内容 1、柑桔皮的预处理 称取干柑桔皮20g,将其浸泡在温水中(60~70℃)约30min,使其充分吸水软化,并除掉可溶性糖、有机酸、苦味和色素等;把柑桔皮沥干浸入沸水5min进行灭酶,防止果胶分解;然后用小剪刀将柑皮剪成2~3mm的颗粒;再将剪碎后的柑桔皮置于流水中漂洗,进一步除去色素、苦味和糖分等,漂洗至沥液近无色为止,最后甩干。 2、酸提取

木瓜蛋白酶中英文对照

Papain Papain [9001-73-4] Papain is a purified proteolytic substance derived from Carica papaya Linné(Fam.caricaceae).papain,when assayed directed herein, contains not less than 6000 units per mg. Papain of a higher digestive power may be reduced to the official standard by admixture with papain of lower activity ,lactose,or other suitable diluents. One USP Unit of papain is the activity that releases the of 1μg of tyrosine from a specified casein substance under the conditions of the Assay, using the enzyme concentration that liberates 40μg of tyrosine per mL of test solution. Packaging and storage-Preserve in tight,light-resistant containers in a cool place. USP reference standards (11)—USP papain RS. pH<791>:between 4.8 and 6.2 in a solution (1 in 50). Loss on drying <731>—Dry it in a vacuum oven at 60℃ for 4 hours : it losses not more than 7.0% of its weight. Assay (casein digestive power)— Dibasic sodium phosphate.,0.05M—dissolve 7.1g of anhydrous dibasic sodium phosphate in water to make 1000mL.add 1 drop of toluene as a preservative. Citric acid,0.05M—dissolve 10.5g of citric acid monohydrate in water to make 1000mL. Add 1 drop on toluene as a preservative. Casein substrate—Disperse 1 g of Hammersten-type casein in 50 mL on 0.05M Dibasic sodium phosphate. Place in a boiling water bath for 30 minutes with occasional stirring.Cool to room temperature ,and add 0.05 M Citric acid to adjust to a pH of 6.0±0.1.stir the solution rapidly and continuously during the addition of the 0.05M Citric acid to prevent precipitation of the casein. Dilute with water to 100 mL .prepare fresh daily. Buffer solution (Phosphate-Cysteine Disodium ethylenediaminetetraacetate Buffer)

木瓜汁中提取木瓜蛋白酶--实验设计

木瓜汁中提取木瓜蛋白酶 一、粗酶制备(冻存、调整浓度) 1.蛋白质浓度(考xx蓝法) 二、纯化和固定化 1.双水相(PEG/磷酸盐)萃取,再过阳离子纯化; 2.粗酶直接亲和磁珠纯化和固定化(咪唑梯度洗,电泳看效果); 3.先双水相,取PEG相(上清)用亲和磁珠纯化和固定化; 三、纯度 1.快速蛋白质液相色谱; 2.非变性碱性蛋白质电泳; 四、酶活性 1.水解酪蛋白活性(固定化率和活力回收率、固定化酶的温度、pH等、重复使用); 2.水解IgG检测特异性; 五、载体/相表征 亲和磁珠:TEM、粒径、电势、磁滞回线、红外; 双水相: 一、xx木瓜制备粗酶[1,2] 1.新鲜的木瓜用去离子水洗干净,再用不锈钢刀在果实上做了4到6个纵向2-3mm深的切口,让分泌出的乳胶顺着果实向下滴入冰浴的烧杯中。-20 ℃存放。(或者10mL汁液加90mL pH 6.0的PBS,搅拌15min,4℃9000×g离心取上清(除去不溶物),最后测定并调整上清中的蛋白质的浓度。)

2.将解冻后的乳胶与40mM半胱氨酸按3:1(w/v)的比例混合,用6MHCl将悬浮液调整为pH 5.6,在4 ℃搅拌15 min,过滤并用6 M NaOH将滤液pH调整为9.0,4 ℃ 9000×g离心取上清(除去不溶物),最后测定上清中的蛋白质含量,然后用水/PBS调节。可省略。 3. [1]NitsawangS,Hatti- KaulR,KanasawudP.PurificationofpapainfromCaricapapayalatex:Aqueoustwo-phaseextractionversustwo-stepsaltprecipitation[J].Enzyme & Microbial Technology, 2006, 39(5):1103-1107. [2] Rocha M V, Giacomo M D, Beltramino S, et al. A sustainable affinity partitioningprocess to recover papain from Carica papaya, latex using alginate as macro-ligand[J].Separation & Purification Technology, 2016, 168:168-176.

实验四 果胶的提取

实验四果胶的提取 一、引言 果胶广泛存在于水果和蔬菜中,如苹果中含量为0.7—1.5%(以湿品计),在蔬菜中以南瓜含量最多(达7%-17%)。果胶的基本结构是以α-1,4苷键连接的聚半乳糖醛酸,其中部分羧基被甲酯化,其余的羧基与钾、钠、铵离子结合成盐。 在果蔬中,尤其是未成熟的水果和皮中,果胶多数以原果胶存在,原果胶通过金属离子桥(比如Ca2+)与多聚半乳糖醛酸中的游离羧基相结合。原果胶不溶于水,故用酸水解,生成可溶性的果胶,再进行提取、脱色、沉淀、干燥,即为商品果胶。从柑橘皮中提取的果胶是高酯化度的果胶(酯化度在70%以上)。在食品工业中常利用果胶制作果酱、果冻和糖果,在汁液类食品中作增稠剂、乳化剂。 二、实验材料、试剂与仪器 材料:桔皮,苹果等; 试剂:0.25% HCL,95%乙醇(AR),精制乙醇,乙醚,0.05mol/L HCl,0.15%咔唑乙醇溶液,半乳糖醛酸标准液,浓硫酸(优级纯) 仪器:分光光度计,50mL比色管,分析天平,水浴锅,回流冷凝器,烘箱等 三、实验步骤 (一)果胶的提取 1、原料预处理:称取新鲜柑橘皮20g(或干样8g),用清水洗净后,放入250mL容量瓶中,加水120mL,加热至90℃保持5-10min,使酶失活。用水冲洗后切成3~5mm的颗粒,用50℃左右的热水漂洗,直至水为无色、果皮无异味为止(每次漂洗必须把果皮用尼龙布挤干,在进行下一次的漂洗)。 2、酸水解提取:将预处理过的果皮粒放入烧杯中,加约60mL 0.25% HCL 溶液,以浸没果皮为宜,调pH至2.0~2.5,加热至90℃煮45min,趁热用100目尼龙布或四层纱布过滤。 3、脱色:在滤液中加入0.5~1.0%的活性炭,于80℃加热20min,进行脱色和除异味,趁热抽滤(如抽滤困难可加入2%~4%的硅藻土作为助滤剂)。如果柑橘皮漂洗干净萃取液为清澈透明则不用脱色。 4、沉淀:待提取液冷却后,用稀氨水调pH至3~4。在不断搅拌下加入95%乙醇溶液,加入乙醇的量约为原体积的1.3倍,使酒精浓度达到50%~65%。 5、过滤、洗涤、烘干:用尼龙布过滤(滤液可用蒸馏法回收酒精),收集果胶,并用95%乙醇洗涤果胶2~3次,再于60~70℃干燥果胶,即为果胶产品。

1木瓜蛋白酶性质测定

木瓜蛋白酶性质测定 一、实验目的 1、学习并掌握木瓜蛋白酶活性测定的基本原理。 2、掌握影响木瓜蛋白酶性质的不同因素,如激活剂(如EDTA、半胱氨酸),抑制剂、pH 等。 二、实验原理 木瓜蛋白酶(Papain)是一种巯基蛋白酶,它分解比胰脏蛋白水解酶更多、更广泛的蛋白底物。它也具有脂酶活力。其分子量约为23 000 左右。木瓜蛋白酶是单条肽链,由211个氨基酸残基折叠成两部分形成裂缝,酶分子只有1 个巯基,对酶活力是必需的,激活剂有半胱氨酸、硫化物、亚硫酸盐和 EDTA等;抑制剂有巯基试剂,包括重金属、羧基试剂和过氧化氢等。 酪蛋白是一种蛋白质,它被木瓜蛋白酶降解生成的酪氨酸在紫外光区275 nm 处有吸收峰,根据测定275 nm 处的吸收值,可以判定木瓜蛋白酶的酶活力。吸收值的大小与酪氨酸含量的多少有关,吸收值大说明酪氨酸含量高,也就是说木瓜蛋白酶分解的酪蛋白多,酶活力高。 三、仪器和试剂 1、市售木瓜蛋白酶; 2、仪器设备:磁力搅拌器(机);离心机7000rpm(冷冻式);紫外分光光度计;水浴槽;冰箱及常规玻璃仪器。 四、实验步骤 (一)激活剂(EDTA)对木瓜蛋白酶活力的影响 1、试剂 (1)3 mg·mL-1 木瓜蛋白酶液(用 0.1 mol/L 的磷酸缓冲液,pH 7.2 配制);(2)0.1 mol·L-1的磷酸缓冲液,pH 7.2 ; (3)激活剂:用 0.1 mol·L-1磷酸缓冲液(pH 7.2)配制含10 m mol·L-1半胱氨酸,分别含有0,0.2,0.6,1.0,2.0,4.0 m mol·L-1EDTA 的6 种混合液;(4)1%酪蛋白溶液:用0.1 mol·L-1磷酸缓冲液(pH 7.2)配制; (5)15%三氯乙酸(TCA)溶液。 2、方法 EDTA 浓度 (mmol·L-1) 0 0.2 0.6 1.0 2.0 4.0 管号0 1 0 1 0 1 0 1 0 1 0 1 酶液(mL)0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 EDTA(mL) 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 1.8 37 ℃水浴预热10 min 1%酪蛋白(mL)0 1.0 0 1.0 0 1.0 0 1.0 0 1.0 0 1.0 37 ℃水浴10 min TCA(mL) 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0

木瓜蛋白酶

木瓜蛋白酶 一、名称和属性 广义的木瓜酶指的是木瓜蛋白酶(Papain)、木瓜凝乳蛋白酶(Chymopapain)、淀粉酶(Amylase)等等组成的复合酶,这里主要讨论木瓜蛋白酶。木瓜蛋白酶(Papain),或简称木瓜酶、木瓜酵素,又称嫩精或木瓜粉,是存在于木瓜果实中的一种半胱氨酸酶,属于蛋白水解酶。 二、作用机制 木瓜蛋白酶是一种在酸性、中性、碱性环境下均能分解蛋白质的蛋白酶。它的外观为白色至浅黄色的粉末,微有吸湿性;木瓜蛋白酶溶于水和甘油,水溶液为无色或淡黄色,有时呈乳白色;几乎不溶于乙醇、氯仿和乙醚等有机溶剂。木瓜蛋白酶是一种含巯基(-SH)肽链内切酶,具有蛋白酶和酯酶的活性,有较广泛的特异性,对动植物蛋白、多肽、酯、酰胺等有较强的水解能力,但几乎不能分解蛋白胨。 木瓜蛋白酶的剪切肽键的机制包括:在His-159作用下Cys-25去质子化,而Asn-158能够帮助His-159的咪唑环的摆放,使得去质子化可以发生;然后Cys-25亲核攻击肽主链上的羰基碳,并与之共价连接形成酰基-酶中间体;接着酶与一个水分子作用,发生去酰基化,并释放肽链的羰基末端。 三、应用情况 木瓜酶具有纯天然、无毒无害、使用安全等功能特性,而被广泛用于食品、美容化妆品、医药保健品、日化品、饲料、皮革、纺织品等行业,并远销日本、韩国、美国、俄罗斯、马来西亚等国外市场。 国际上FAO/WHO把木瓜蛋白酶列为A级食品添加剂,其使用量可不受限制;中国食品添加剂标准化技术委员会也已批准将木瓜蛋白酶列入使用品种。 3.1食品行业 木瓜蛋白酶主要被用于将硬的肉纤维(蛋白质组成)切断,并且该用途已经被南美洲的土著居民使用了数千年。该酶是嫩肉粉(在大多数的超级市场都可以买到)的成分之一。 3.2生化行业 木瓜蛋白酶在准备细胞培养液(cell culture)的第一步中被用于分离细胞。用酶处理小组织块10分钟后,就可以将连接细胞的细胞外基质打断;然后再用蛋白酶抑制剂来停止反应,防止木瓜蛋白酶进一步裂解细胞本身;最后用Pasteur pipette将组织块打散为单细胞悬浮液。 3.3医药行业

果胶的提取方法

果胶的提取方法 果胶分果胶液、果胶粉及低甲氧基果胶粉三种。果胶液为白色均匀浓稠液,不带果皮和果肉碎屑,含固体7~9%,果胶粉为淡黄色或浅灰色白色,溶于水,味微酸无异味,含水7~10%,胶凝力达100~150级(150级果胶意指1克果胶粉溶于水中,在pH3~3.4之间能使加入的150克砂糖完全凝固成果冻)。低甲氧基果胶粉为白色,溶于水,甲氧基含量为2.5~4.5%。 果胶用途很广,特别是在食品工业方面,除用作果酱、果冻等的增稠剂外,还是冰淇淋等的优良稳定剂,此外在制药、纺织等工业中也广泛应用。低甲氧基果胶除有果胶的种种用途外,还可以制成低糖、低热值的疗效果酱类食品,它的生产在食品工业上已日益受到重视。 一、果胶液的生产工艺 1.原料的选择:提取果胶的原料很多,如柑桔、柚子、柠檬、番石榴、苹果、梨、山渣等的果皮,果芯及榨汁后的果渣都是很好的原料。几种新鲜的果皮,果芯的果胶含量如下: 甜橙柠檬苹果梨桃 1.5~3% 2.5~5.5% l~1.8% 0.5~1.4% 0.56~1.25% 2.漂洗:原料中所含的成分,如糖甙、芳香物质、色素、酸类和盐类等在提取果胶前须漂洗干净,以免影响果胶的品质及胶凝力。柑桔类果皮首先提取精油,后经绞碎,再用蒸汽加热到95~98℃保持10分钟,以破坏果胶,避免果胶水解降低胶凝力。这种处理可与回收残余精油同时进行。 柑桔类果皮中含有柑皮苷、桔皮苷或柚皮苷,味较苦,必须用清水浸泡半小时,后加热至90℃保持5分钟,压去汁液,再用清水漂洗数次,这样才可除去大部分糖苷、色素及其他杂质,去除大部分苦味。 3.抽提:果胶的抽提包括原果胶的水解与果胶的溶出两个过程。在整个过程中要掌握温度、时间和酸度。酸度高,则需时较短;温度较低,则需时较长。温度较高或多次抽取才能提净果胶。抽提时,将绞碎的原料倒入抽提锅内,加水4倍,加亚硫酸调节pH值至1.8~2.7,后通入蒸汽,边搅拌边加热到95℃,保持45~60分钟,即可抽出大部分果胶。 4.抽提液的处理:将袖提物料通过压滤机过滤,并用高速(7000转/分)离心机分离杂质。然后迅速冷却到50℃左右;加入1~2%淀粉酶使抽提液中淀粉水解为糖。当酶作用终了时,即需加热到77℃,破坏酶的活力。接着加入0.3~0.5%活性炭在55~60℃下搅拌20~30分钟,使果胶脱色,再加入1~1.5%硅藻土,搅匀,后用压滤机滤清抽提液。 5.果胶液的浓缩与贮藏:将滤清的果胶液送入真空浓缩锅中,保持真空度667毫米汞柱以上,沸点50℃左右,浓缩至总固体达7~9%为止。浓缩毕,即将果胶液加热至70℃,装入玻璃瓶中,加盖密封,后置于70℃热水中加热杀菌30分钟,冷却后,送入仓库,或将果胶液装入木桶中,加0.2%亚硫酸氢钠搅拌匀,并密封贮藏。 二、果胶粉的生产工艺 果胶粉的生产除上述各工序外,还需除去果胶中的水分,制成粉未,加工的方法如

实验64_尼龙固定化木瓜蛋白酶(何平)

实验七尼龙固定化木瓜蛋白酶 一.目的和要求 1、学习和理解尼龙固定化木瓜蛋白酶基本原理。 2、熟练掌握尼龙固定化木瓜蛋白酶基本技术。进一步理解其和水溶性酶比较所独有的优点。 二.实验原理 通过物理或化学的方法,将水溶性的酶与水不溶性的载体结合,固定在载体上,在一定的空间范围内进行催化反应的酶称为固定化酶。酶的固定化方法有:吸附法(物理吸附、离子吸附)、包埋法、共价键结合法、交联法。固定化酶的优越性主要表现在:(1)在大多数情况下,可提高酶的稳定性;(2)提高酶的使用效率,降低生产成本;(3)酶不与产品混合,制品易于纯化;(4)利用固定化酶,工业上可以大批量、连续化生产。本实验尼龙固定化木瓜蛋白酶属共价键结合法。尼龙长链中的酰胺键,经 HCl 水解后,产生游离的-NH基,在一定条件下与双功能试剂戊二醛中的一个-CHO缩合,戊二醛的另一个-CHO则与酶中的游离氨基缩合,形成尼龙(载体)—戊二醛(交联剂)—酶,即尼龙固定化木瓜蛋白酶。 三.实验材料、试剂及仪器 3.1 材料 尼龙布(86)或(66),100目,剪成3×3cm2。 3.2试剂 1(1) 甲醇溶液(含18.6%CaCL2和18.6%水)(每组50mL):称18.6克CaCL2溶于18.6 mL蒸馏水,冷却后,用甲醇定容至100 mL。 1(2) 3.5mol/L HCl溶液(每组30mL):取29.2 mL浓HCl,定容至100 mL。 1(3) 0.2 mol/L硼酸缓冲液(pH 8.4) (每组30mL):称取0.858克Na2B4O7·10H2O 和0.68克H3BO3用蒸馏水溶解,定容至100 mL。 1(4) 5%戊二醛(以0.2mo1/L pH 8.4硼酸缓冲液配制,每组30mL):取25%戊二醛20mL,用0.2mo1/L pH 8.4硼酸缓冲液定容至100 mL。 2(5) 0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液(每组250mL): 称取1.28克Na2HPO4·2H2O 和1克NaH2PO4·12H2O用蒸馏水溶解,定容至100 mL。 2(6) 0.5mo1/L NaCl溶液〔用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制〕(每组150mL): 称取2.93NaCl,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。 3(7) 木瓜蛋白酶溶液(1mg/mL,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制〕(每组15mL):称取100 mg木瓜蛋白酶粉末,加1 mL激活剂,研磨10min,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。 3(8) 激活剂〔用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制,含半胱氨酸10mmo1/L,EDTA 1mmo1/L〕(每组50mL):称取0.12克半胱氨酸和0.04克EDTA,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。

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