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产单核细胞李斯特菌P60蛋白的可溶性表达

产单核细胞李斯特菌P60蛋白的可溶性表达
产单核细胞李斯特菌P60蛋白的可溶性表达

单核细胞增生李斯特菌

单核细胞增生李斯特菌 形态特征: ①革兰氏阳性的类球形杆菌 ②大小约为0.4~0.5μm x 0.5~2.0μm ③两端钝圆 ④在有些培养基中稍弯,单个、成V形或成对平行排列 ⑤在陈旧培养中的菌体可呈丝状及革兰氏阴性 ⑥兼性厌氧,无芽孢,一般不产生荚膜 ⑦在20~25℃时以4根周毛运动,在37℃时只有较少的鞭毛或1根鞭毛 培养特性: ①需氧和兼性厌氧 ②生长范围为2-42℃ ③最适温度为35-37℃ ④pH中性至弱碱性(pH9.6) ⑤在6.5% NaCl 肉汤中生长良好。 ⑥在20-25℃培养有动力,穿刺培养2-5天可见倒立伞状生长,肉汤培养物在显微镜下可见翻跟斗运动。 ⑦在固体培养基上,菌落初始很小,透明,边缘整齐,呈露滴状,但随着菌落的增大,变得不透明。

⑧在5-7%的血平板上,菌落通常也不大,灰白色,刺种血平板培养后可产生窄小的β-溶血环。 ⑨在0.6%酵母浸膏胰酪大豆琼脂(TSAYE)和改良Mc Bride(MMA)琼脂上,用45°角入射光照射菌落,通过解剖镜垂直观察,菌落呈兰色、灰色或兰灰色。 生化特性:(甘露醇、木糖为阴性,其他为阳) 1.该菌触酶阳性,氧化酶阴性。 2.发酵多种糖类,产酸不产气。 发酵葡萄糖、乳糖、水杨素、麦芽糖、鼠李糖、七叶苷、蔗糖(迟发酵)、山梨醇、海藻糖、果糖。 不发酵木糖、甘露醇、肌醇、阿拉伯糖、侧金盏花醇、棉子糖、卫矛醇和纤维二糖。 3.不利用枸橼酸盐,40%胆汁不溶解。 4.吲哚、硫化氢、尿素、明胶液化、硝酸盐还原、赖氨酸、鸟氨酸均阴性。 5.MR-VP试验和精氨酸水解阳性。 生化试验: ①动力试验+ 原理:有动力的细菌扩散生长,培养基浑浊,无动力的细菌培养基澄清。(结果:有动力,呈伞状生长,底为弯月牙形)

我院首例李斯特菌感染病例分析报告

龙源期刊网 https://www.wendangku.net/doc/a07244671.html, 我院首例李斯特菌感染病例分析报告 作者:李凌洁杜余新 来源:《中国社区医师》2019年第18期 关键词李斯特菌;感染;治疗方案 单核细胞增生李斯特菌(简称李斯特菌)属于李斯特菌属,为革兰阳性杆菌、兼性胞内寄生菌,是重要的食源性人兽共患病原菌,能够引起人类严重感染;广泛存在于自然界、水源、食品等;主要通过粪一口传播,常侵犯婴幼儿、妊娠妇女、老年人以及一些严重基础病的免疫受损宿主,导致皮肤黏膜感染、中樞系统感染、败血症、心内膜炎等1-1。本例口腔癌患者,其血液培养及鉴定分离出此菌,可能与患者有基础疾病,免疫力下降有关。李斯特菌感染应该选择适宜的抗生素,足量、足疗程治疗。本研究分析I例李斯特菌感染病例,旨在为临床不常见细菌感染经验治疗提供参考。病历资料 患者,男,56岁,2018年5月23日人院。人院诊断为口底癌化疗后复发;化疗后骨髓抑制;发热原因待诊。人院时查体:T39.6C,P102次/min,R21次/min,BP115/80mmHg,体重 60kg。确诊口底癌3年多,发热1d,夜间急入我院肿瘤科治疗,给予柴胡注射液4mL肌内注射,地塞米松磷酸钠注射液10mg静脉滴注,葡萄糖注射液500mL+维生素C注射液2g静脉滴注,葡萄糖注射液500mL+氯化钾注射液1g静脉滴注,葡萄糖注射液250mL+浓氯化钠60mL 静脉滴注,葡萄糖注射液250mL+艾迪注射液100mL静脉滴注。治疗3d,相关检查逐步完善,患者体温36.2~39.5C,反复发热。5月26日经验性抗感染治疗,给予注射用哌拉西林钠他唑巴坦2.25g,1次/8h,静脉滴注,1个疗程为3d,患者仍反复发热(体温36.3~39C)。5月28日报血培养及鉴定(5月24日血样)提示:产单核李斯特菌。5月29日报血培养及鉴定(5月26日血样)结果提示:产单核李斯特菌。诊断为口底癌化疗后复发;化疗后骨髓抑制;菌血症;右侧股骨下段坏死;2型糖尿病。因患者反复发热,且我院无法进行单核细胞增生性李斯 特菌的药敏试验,5月29日请临床药学科会诊,协助抗生素药物的选择,临床药师会诊后建 议使用青霉素2.4g,1次/6h+阿米卡星注射液0.6g,1次/d,静脉滴注,1个疗程>3周,患者血培养及鉴定结果连续3次阴性即停用抗生素。使用该方案抗感染治疗第1天,监测患者体温,最高温度37.59C,直至2018年6月18日患者出院,未再出现高热症状且血,培养及鉴定结果连续3次均为阴性报告。此次抗感染治疗有效。 讨论 病因分析:患者系口腔癌化疗患者,属于免疫力低下的易感人群。病原菌侵袭该患者,出现反复发热。经过抗感染治疗后患者体温逐渐恢复正常水平。 治疗方案分析:青霉素属于时间依赖性抗生素,半衰期约30min,500万~2400万U/d,给药频次1次/6h。阿米卡星注射液属于浓度依赖性抗生素,半衰期长,给药频次l次/d,1个

单核细胞增生李斯特氏菌(Listeriamonocytogenes)

单核细胞增生李斯特氏菌(Listeriamonocytogenes) 荧光定量PCR检测试剂盒说明书 规格:48份/盒 用途:单核细胞增生李斯特氏菌PCR体外检测。 检测原理: 试剂盒中含有单增李斯特氏菌特异的引物,当样品中含有单增李斯特氏菌时,前增菌后提取的单增李斯特氏菌DNA通过PCR成指数扩增,在反应过程中单增李斯特氏菌特异的荧光探针跟靶核酸杂交,同时被Taq酶水解,把探针上的荧光基团和淬灭基团分开,从而通过荧光增量来实时判断单增李斯特氏菌的存在。 产品盒组成: 试剂盒的保存条件及有效期: 1.本试剂盒于-20℃保存。 2.有效期为6个月。 适用仪器: ABI7500,9600系列,MJopticon2,Bio-Rad等荧光定量PCR仪均可。 实验方法: 1.取增菌液1ml加到1.5ml无菌离心管中,10,000rpm离心5min,弃去上清;采纳经典酚氯仿提取法,将提取到的模板进行检测或保存于-20℃以待检测。 2.将PCR反应液置室温平衡,融化后取Taq酶,按2U/管加入Taq酶,即每个测试反应体系配制为:PCR反应液22.5ul+0.4ulTaq 酶。 3.加入模板:将保存在-20℃的核酸提取物置室温解冻,以13,000rpm离心5min。阴、阳性对比使用前置室温解冻。在每个PCR反应管中分别加入步骤1中处理过的模板或阴、阳性对比各2ul,盖好管盖,置于PCR仪上,记录相应样品号。 4.上机扩增、检测区:反应条件为95℃:3min,1个循环;95℃:5sec,60℃:40sec〔信号采集〕,40个循环。反应体系设为25ul。 关于多通道荧光PCR仪,信号采集时设定为Fam荧光素。 结果分析: 关于MJOpticon2系列荧光定量PCR检测仪进行结果分析时,扣除本底后再输入1-15之间的荧光值,进行Ct值的设置或拖动基线到合适的位置以确定ct值。 关于ABI7500,9600系列荧光PCR检测仪进行结果分析时基线的确定:取3-10或3-15个循环的荧光值,阈值设定原那么为阈值线刚好超过正常阴性对比品扩增曲线的最高点,而不显示Ct值为宜。 质控标准: 本试剂盒灵敏度为100拷贝/ml。定量检测线性范围为:10-1010拷贝/ml。 阴性对比无Ct值显示或Ct值为40,阳性对比的Ct值≤30.0,否那么为实验失败。 结果判断: 1.检测样本Ct值≤35.0时,报告阳性。 2.检测样本Ct值>35.0且Ct值<40时,需重复检测一次,假如Ct值仍<40,但曲线有明显的对数增长特性,报告本阳性,否那么报告阴性。 3.样本不显示Ct值时,报告阴性。 试剂盒使用本卷须知 1.本试剂盒仅用于体外检测和研究用途,开始使用前请认真阅读本说明书全文。 2.实验必须严格分区操作:PCR前预备区——预备实验试剂;样本处理区——待测样本、模板处理;检测区——PCR扩增、检测。

十单核细胞增生李斯特氏菌检验标准操作程序

DBS22 DBS22/019-2012 吉林省食品安全地方标准 食品中单核细胞增生李斯特菌的定量检测 2013年发布 2013年实施 吉林省卫生厅发布

前言 本标准根据GB/T1.1-2000《标准化工作导则第1部分:标准的结构和编写规则》的要求编写。 本标准分为两种检测方法: 第一法:单核细胞增生李斯特氏菌平板计数法; 第二法:MPN计数法。 其中第一法适用于污染较严重的食品,第二法适用于单核细胞增生李斯特氏菌含量较低而杂菌含量较高的食品。 本标准负责起草单位:吉林省疾病预防控制中心、长春市疾病预防控制中心。 本标准负责起草人:刘桂华、龚云伟、李月婷、赵薇

吉林省食品安全地方标准 食品中单核细胞增生李斯特菌的定量检测 1 范围 本操作程序规定了食品中单核细胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)的定量检验方法。本操作程序适用于食品中单核细胞增生李斯特氏菌的定量检验。 2 设备和材料 除微生物实验室常规无菌及培养设备外,其他设备和材料如下: 2.1 冰箱:2℃~5℃和-18℃。 2.2 恒温培养箱:30℃±1℃、36℃±1℃。 2.3 均质器。 2.4 显微镜:10×~100×。 2.5 电子天平:感量0.1 g。 2.6 锥形瓶:100 mL、500 mL。 2.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)。 2.8 无菌平皿:直径90 mm。 2.9 无菌试管:16 mm×160 mm.。 2.10 离心管:30 mm×100 mm。 2.11 无菌注射器:1 mL。 2.12 金黄色葡萄球菌(ATCC 25923)。 2.13 马红球菌(Rhodococcus equi)。 2.14 全自动微生物生化鉴定系统。 3 培养基和试剂 3.1 含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆肉汤(TSB-YE):见附录A中A.1。 3.2 含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆琼脂(TSA-YE):见附录A中A.2。 3.3 李氏增菌肉汤LB(LB1,LB2):见附录A中A.3。 3.4 1%盐酸吖啶黄(acriflavine HCl)溶液:见附录A中A.3.2.1。 3.5 1%萘啶酮酸钠盐(naladixic acid)溶液:见附录A中A.3.2.1。 3.6 PALCAM琼脂:见附录A中A.4。 3.7 革兰氏染液:见附录A中A.5。 3.8 SIM动力培养基:见附录A中A.6。 3.9 缓冲葡萄糖蛋白胨水[甲基红(MR)和V-P试验用]:见附录A中A.7。3.10 5%-8%羊血琼脂:见附录A中A.8。 3.11 糖发酵管:见附录A中A.9。 3.12 过氧化氢酶试验:见附录A中A.10。 3.13 李斯特氏菌显色培养基。 3.14 API listeria 10300生化鉴定试剂盒。

单核细胞增生性李斯特菌研究进展_郭宏华

基金项目:吉林省科技项目资助(20100742)吉林省卫生厅项目资 (3D511BC43430 )*通讯作者 文章编号:1007-4287(2013)01-0197-03 单核细胞增生性李斯特菌研究进展 郭宏华1,贾芙蓉2,韩晓英3,何成彦1* (1.吉林大学中日联谊医院,吉林长春130033;2.解放军第208医院;3. 长春八一医院) 单核细胞增生性李斯特菌是一种短小的革兰氏 阳性无芽胞杆菌, 是一种人畜共患病的致病菌,可使人和动物患李斯特菌病。李斯特菌属(1isteria)现在有2个群7个种,分别是单核细胞增生性李斯特菌(L monocytogenes,LM)(亦称产单核细胞李斯特菌)、伊氏李斯特(L.ivanovii)(亦称绵羊李斯特菌)、英诺克李斯特菌(L innocua)(亦称无害李斯特菌)、韦氏李斯特菌(L welshimei)、塞氏李斯特菌(Lseeligeri)、格氏李斯特菌(L.gray i)和莫氏李斯特菌(L.murrayi)。1 生物学特性 LM的幼龄菌(取16h-24h的培养物进行革兰染色),呈革兰阳性小杆菌,长0.5μm-2μm,宽0.4 μ m-0.6μm,直或稍弯,常呈V字形,成对排列。在营养肉汤中2O℃-25℃培养24h可形成4根小鞭毛,有动力;36℃培养时无鞭毛,动力消失。此菌营养要求不高,在普通营养琼脂平板上36℃培养24h呈细小、半透明、微带珠光的露水样菌落,直径约0.2mm- 0.4mm,在斜射光下,菌落呈典型的蓝绿色光泽。在血平板上36℃培养24h- 96h,菌落呈β溶血[ 1] 。2 流行病学 LM是一种人畜共患的致病菌,也是重要的食源性致病菌之一。LM感染家畜后可引起脑膜炎、脑炎以及自发性流产等,可暴发流行。LM引起人类的疾病统称为李斯特菌病(1ist—eriosis ),人感染后主要表现为脑膜炎、 败血症和单核细胞增多。婴幼儿、怀孕妇女和免疫耐受病人的感染死亡率可高 达20%-30%[2] 。 3 毒力基因 3.1 李斯特菌溶解素(LLO)是由hly基因编码的蛋白,是一种孔形成毒素,是主要的毒力因子,可破 坏吞噬体,使细菌进入胞液并在其中繁殖,失去后导致细菌毒力的丧失。不产生LLO的LM可在非吞噬细胞的胞液中生存一段时间, 但却不能繁殖,可被吞噬细胞杀灭[3] 。近年的研究表明LLO是一个多 功能的毒力因子,能引起宿主细胞很多反应,如细胞增殖、 黏膜细胞外渗作用、巨噬细胞中细胞因子的表达树突状细胞的凋亡、磷脂代谢及引起机体产生免 疫反应等[ 4] 。3.2 P60蛋白是一种胞壁质水解酶,由iap基因编 码,它是单核细胞增生性李斯特菌重要毒力因子[5] 。通常P60蛋白于细胞表面产生,并大量分泌到生长介质中,对于细胞的分裂是必不可少的。分析P60蛋白编码基因的突变体显示,对于LM的吞噬细胞溶解作用以及对机体的感染过程,P60蛋白是一个 重要的因素[ 6,7] 。3.3 单增李斯特菌能产生两种磷脂酶c:PI- PLC和PC-PLC。plcA基因编码一个特异的作用于磷脂酰肌(phosphatidylinosito1)的磷脂酶c(PI-PLC)。p lcB基因编码磷脂酶C(PC-PLC)。PI-PLC毒性相对较小,对细菌在细胞间扩散作用不大,主要是协同PC—PLC发挥作用。PC-PLC使细菌从吞噬泡中逃逸出来,能破坏宿主细胞的信号通路,能调节细胞因子和化学因子的合成,还能通过二酰基甘油、神经酰胺、肌醇磷酸盐等调节细胞的生长、分化、凋亡 等[4,8- 12]。PI-PLC系以活化的形式合成,而PC- PLC则先以非活化的前肽被分泌出来,然后在胞外由mpl的基因产物Mp l蛋白酶加工。PI-PLC可辅助细菌逸出初级吞噬体,而细菌在细胞与细胞之间的 扩散过程中,PC- PLC则表现出一定的活性作用[13] 。Angelika Grund1ing等通过利用诱导P C-PLC表达系统证明,缺乏LLO的LM,PC-PLC的活性不仅对在人类上皮细胞中初级吞噬体的溶解是必需的, 而且对细胞与细胞之间的扩散也是必需的[ 14] 。3.4 Prf  A编码PrfA蛋白,是单增李斯特茵毒力基因簇上各种毒力基因的调节蛋白,直接检测PrfA可以减少其他毒力基因突变或缺失所造成假阴性 — 791—中国实验诊断学 2013年1月 第17卷 第1期

ISO标准(参考译文)单核增生李斯特氏菌的检测和计数方法

国际标准ISO11290-1 第一版1996-12-15 食品和动物饲料微生物学---单核增生李斯特氏菌的检测和计数方法第一部分 检测方法 目录 内容页次 1 范围 1 2 参考标准 1 3 定义 1 4 原理 2 5 培养基和试剂 2 6 设备和玻璃仪器 3 7 取样 3 8 取样前处理 3 9 步骤 3 10 结果表述7 11 检验报告7 附录 A 检验步骤图8 B 培养基和试剂的组成和配制9 C 亨氏证明试验16

食品和动物饲料微生物—单核增生李斯特氏菌检测和计数的水平方法 第一部分 检测方法 警告:为了保障实验室人员的安全,强烈推荐执行单核增生李斯特氏菌检验应在具备相应设备条件的实验室进行,在有经验的微生物专家控制下,保温后的一切丢弃物应小心处理。特别是,强烈推荐孕妇不能操作单核增生李斯特氏菌的培养。 1 范围 本ISO11290详细说明了单核增生李斯特氏菌检测和计数的水平方法。 限于简介中讨论的条件,本ISO11290适用于给人消费和作为动物饲料的产品。 2 参考标准 以下标准包含的条件;通过参照这些内容,组成了这部分ISO11290的条件。出版时,引用的这些版本是有效的。所有标准都需要修订,而各机构对本部分基于ISO11290的批准应鼓励调查和应用以下引用标准的最近版本。IEC和ISO成员保留目前有效的国际标准的注册。 ISO6887:1983,微生物学---微生物检验中稀释液制备的一般导则 ISO7281:1996,食品及动物饲料微生物学---微生物检验通则 3 有关定义 本部分ISO11290适用以下定义: 3.1 单核增生李斯特氏菌依据本部分ISO11290实施检验,在固体选择性培养基上形成典型菌落并呈现固有形态、生理生化特征的微生物。 3.2单核增生李斯特氏菌的检验依据本部分ISO11290实施检验,在给定产品的质量和体积的条件下,检验这些微生物的存在或不存在。 4.原理 在本部分ISO11290范围内,单核增生李斯特氏菌检验需要四个连续的阶段(见附录A检验流程图) 注意1:李斯特氏菌可能存在量少并与大量的其它种类细菌混杂,因此需要选择性富集。同时也必须检测受破坏的李斯特氏菌,初级选择性富集培养基,含有降

李斯特菌检验应用

李斯特氏菌 李斯特菌 李斯特菌(也称李氏杆菌)引起的急性传染病,以败血病为主要症状,伴有内脏器官和中枢神经系统病变。李斯特菌是1926年英国南非裔科学家穆里在病死的兔子体内首次发现的,为纪念近代消毒手术之父、英国生理学家约瑟夫·李斯特(1827~1912),1940年被第三届国际微生物学大会命名为李斯特菌。 单核细胞增生李斯特氏菌是一种人畜共患病的病原菌。它能引起人畜的李氏菌的病,感染后主要表现为败血症、脑膜炎和单核细胞增多。它广泛存在于自然界中,食品中存在的单增李氏菌对人类的安全具有危险,该菌在4℃的环境中仍可生长繁殖,是冷藏食品威胁人类健康的主要病原菌之一,因此,在食品卫生微生物检验中,必须加以重视。 李斯特菌在环境中无处不在,在绝大多数食品中都能找到李斯特菌。肉类、蛋类、禽类、海产品、乳制品、蔬菜等都已被证实是李斯特菌的感染源。李斯特菌中毒严重的可引起血液和脑组织感染,很多国家都已经采取措施来控制食品中的李斯特菌,并制定了相应的标准。其中单增李斯特菌是唯一能引起人类疾病的。单核细胞增生李斯特氏菌是一种人畜共患病的 李斯特菌快速检测试剂盒 1、分布广:存在于土壤、水域(地表水、污水、废水)、昆虫、植物、蔬菜、鱼、鸟、野生动物、家禽。 2、生存环境可塑性大:能在2-42℃下生存(也有报道0℃能缓慢生长)能在冰箱冷藏室内较

长时间生长繁殖。 3、适应范围大:酸性、碱性条件下都适应。 4、带菌较高的食品有:牛奶和乳制品;肉类(特别是牛肉);蔬菜;沙拉;海产品;冰淇凌 单核细胞李斯特菌在半固体培养基上生长情况 李斯特菌具有较强的反抗力,秋冬时期在土壤中能存活5个月以上,在冰块内也可存活3~5个月,许多冷冻肉类都是它的“温床”。这种细菌对高温的反抗力也比较强,能在100℃下挺15~30分钟,在70℃下可存活30分钟以上。 单增李斯特氏菌广泛存在于自然界中,不易被冻融,能耐受较高的渗透压,在土壤、地表水、污水、废水、植物、青储饲料、烂菜中均有该菌存在,所以动物很容易食入该菌,并通过口腔-粪便的途径进行传播。据报道,健康人粪便中单增李氏菌的携带率为0.6-16%,有70%的人可短期带菌,4-8%的水产品、5-10%的奶及其产品、30%以上的肉制品及15%以上的家禽均被该菌污染。人主要通过食入软奶酪、未充分加热的鸡肉、未再次加热的热狗、鲜牛奶、巴氏消毒奶、冰激凌、生牛排、羊排、卷心菜色拉、芹菜、西红柿、法式馅饼、冻猪舌等而感染,约占85-90%的病例是由被污染的食品引起的。 该菌可通过眼及破损皮肤、粘膜进入体内而造成感染,孕妇感染后通过胎盘或产道感染胎儿或新生儿,栖居于阴道、子宫颈的该菌也引起感染,性接触也是本病传播的可能途径,且有 1、形态与染色

食品中单核细胞增生李斯特氏菌检验

食品中单核细胞增生李斯特氏菌检验 1原理与范围 本标准规定了食品中单核细胞增生李斯特氏菌的检验方法。 本标准适用于食品中单核细胞增生李斯特氏菌的检验。 2、培养基、试剂和血清 2.1含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆肉汤; 2.2含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆琼脂; 2.3李氏增菌肉汤LB(LB1,LB2); 2.4 1%盐酸吖啶黄溶液; 2.5 1%萘啶酮酸钠盐溶液; 2.6 PALCAM 琼脂; 2.7 革兰氏染液; 2.8 SIM动力培养基; 2.9 缓冲葡萄糖蛋白胨水【甲基红(MR)和V-P试验用】;2.10 5%~8%羊血琼脂; 2.11 糖发酵管; 2.12 过氧化氢酶试验; 2.13 李斯特氏菌显色培养基; 2.14 李斯特氏菌生化鉴定试剂盒; 3 、仪器设备 除微生物室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下: 3.1 高压蒸汽消毒灭菌器; 3.2 冰箱; 3.3 恒温培养箱:36℃±1℃,30℃±1℃; 3.4 生物显微镜; 3.5 电子天平:感量0.1g; 3.6 均质器;

3.7 吸管:1mL,10mL; 3.8 培养皿(直径90mm); 3.9 培养瓶或三角瓶:容量500mL,250mL; 3.10 试管(,16 mm×160mm); 3.11 离心管:30 mm×100 mm; 3.12 全自动微生物生化鉴定系统。 4 、检验程序 单核细胞增生李斯特氏菌检验程序见图1.

图1 单核细胞增生李斯特氏菌检验程序 5 操作步骤 5.1 增菌 以无菌操作取样品25g(mL)加入到含有225mL LB1 增菌液的均质袋中,在拍击式均质器上连续均质1min —2min ;或放入盛有225mL LB1 增菌液的均质杯中,8000 r/min---10000 r/min 均质1min —2min 。于30℃±1℃培养24h ,移取0.1mL ,转种于10mL LB2 增菌液内,于30℃±1℃培养18h--24h 。 5.2 分离: 取LB2 二次增菌液划线接种于PALCAM 琼脂平板和李斯特氏菌显色培养基上,于36℃± 1℃培养24h--48h ,观察各个平板上生长的菌落。典型菌落在PALCAM 琼脂平板上为小的圆形灰绿色菌落,周围有棕黑色水解圈,有些菌落有黑色凹陷;典型菌落在李斯特氏菌显色培养基上的特征按照产品说明进行判定。 5.3 初筛 自选择性琼脂平板上分别挑取 5 个以上典型或可疑菌落,分别接种在木糖、鼠李糖发酵管,于 36 ℃±1 ℃培养 24 h ;同时在 TSA-YE 平板上划线纯化,于 30 ℃±1 ℃培养 24 h ~48 h 。选择木糖阴性、鼠李糖阳性的纯培养物继续进行鉴定。 5.4 鉴定 5.4.1 染色镜检:李斯特氏菌为革兰氏阳性短杆菌,大小为(0.4 μm ~0.5 μm )×(0.5 μm ~2.0 μm ); 用生理盐水制成菌悬液,在油镜或相差显微镜下观察,该菌出现轻微旋转或翻滚样的运动。 5.4.2 动力试验:李斯特氏菌有动力,呈伞状生长或月牙状生长。 5.4.3 生化鉴定:挑取纯培养的单个可疑菌落,进行过氧化氢酶试验,过氧化氢酶阳性反应的菌落继续进行糖发酵试验和 MR-VP 试验。单核细胞增生李斯特氏菌的主要生化特征见表 1。

妊娠期李斯特菌感染

妊娠期李斯特菌感染 发表时间:2016-12-13T16:38:47.093Z 来源:《系统医学》2016年15期作者:余欣梅 [导读] 李斯特菌是一种革兰阳性、兼性厌氧杆菌,是一种环境致病菌,感染后可以引起李斯特菌病。 第三军医大学第三附属医院妇产科重庆 400042 【摘要】李斯特菌是一种环境致病菌,是重要的食源性人兽共患病原体,摄入被李斯特菌污染的食物后,可引起李斯特菌病。与普通人相比,孕期妇女是高危人群,一旦感染了李斯特菌可能会导致自然流产或早产;胎儿及新生儿感染,病情凶险,死亡率高。早期诊断、尽早治疗可以改善李斯特菌感染的母婴预后。 【关键词】妊娠期;感染性疾病;李斯特菌 【中图分类号】R714.2 【文献标识码】A 【文章编号】2096-0867(2016)15-238-02 李斯特菌是一种革兰阳性、兼性厌氧杆菌,是一种环境致病菌,感染后可以引起李斯特菌病。目前国际上公认的李斯特菌属有6个种,分别是产单核细胞李斯特菌(Listeria monocytogenes,LM),英诺克李斯特菌,伊氏、格氏、莫氏、塞氏李斯特菌。产单核细胞李斯特菌(LM)为细胞内寄生的革兰阳性无芽孢杆菌,是重要的人兽共患病病原体,其为李斯特菌属中唯一人类致病菌,可通过食用被污染的食物在人畜间传播,引起人和动物的局灶性感染、败血症、脑膜炎、流产、早产、死胎、新生儿感染及死亡等。普通人群的发病率报道不一,在0.1/10万~1.1/10万,而妊娠期为12/10万,明显高于普通人群。LM可侵袭母胎界面导致胎儿严重感染,胎儿死亡率高达30%[1-5]。李斯特菌感染危险对象还包括免疫力低下人群、老年人群。本文主要目的是了解妊娠期感染李斯特菌的临床相关性。 一、李斯特菌生物学特性及流行病学特点 李斯特菌感染后患者病死率高达30%[6],该菌在自然界分布广泛,如土壤、水、腐败蔬菜等,亦可以从正常人粪便中分离培养。其对各种应激(低温、高盐、低 pH、氧化应激等)条件有很强的耐受性,进一步增大了该菌的危害性[7]。此菌不产生内毒素,可产生一种溶血性外毒素,对人类致病性强[8]。该致病菌还被列为20世纪90年代威胁食品安全的4大致病菌(产单核细胞李斯特菌、致病性大肠埃希菌、肉毒梭菌、亲水气单胞菌) 之一[9]。高温烹饪食物可杀灭李斯特菌,化学杀虫剂及紫外线照射对其较敏感,75%酒精5min、1‰紫外线照射15min均能将之杀死[10]。 1926年首次报道家兔感染李斯特菌;1936年首次报道人类感染李斯特菌。WHO和 FDA于1986年设立了李斯特菌研究中心,专门协调该菌的病原学、流行病学及临床等研究工作[11]。美国早在2000年就将李斯特菌病定为国家法定传染病进行管理。近10余年来世界各地,特别是美国、英国、法国、日本和西班牙等发达国家因产单核细胞李斯特菌污染食品而引起食源性疾病暴发日益增多[12]。到目前为止,我国虽未出现有关产单核细胞李斯特菌引起食物中毒暴发流行的报道,但从国内目前的多篇报道了解,此菌多年来在我国猪、羊、鸡、牛、兔等家禽家畜中有流行,并已经报告的临床散发病例有数十例。目前由产单核细胞李斯特菌污染引起的食品中毒已受到世界各国的重视[13]。随着饮食习惯逐渐变化,食用生冷及半熟食的人群增多,致使李斯特菌感染率增高。感染后主要临床表现为发热、上呼吸道感染、肺炎、腹泻、血流感染、脑膜炎,甚至死亡。 二、母婴感染途径及临床表现 1、母婴感染途径:李斯特菌是一种细胞内寄生菌,侵犯宿主后被巨噬细胞吞噬并在其中寄生繁殖,其能穿越感染宿主的3道屏障(肠道屏障、血脑屏障、胎盘屏障)。该菌不产生内毒素,但可产生溶血性外毒素,且致病力强。该菌的清除依赖于细胞免疫,其特异性保护能力依赖于巨噬细胞,体液免疫对该菌感染无保护作用,因此细胞免疫功能低下和使用免疫抑制剂的患者都较易感。孕妇由于体内孕酮升高,而导致细胞免疫力下降[14],使得孕妇极容易感染此细菌[15]。李斯特菌有嗜胎盘特性,妊娠期感染很容易引起宫内感染,其机制尚不清楚[16]。动物实验发现,李斯特菌通过其两个表面蛋白内化蛋白InlA和InlB可以和宿主细胞的钙黏着蛋白、c—Met酪氨酸激酶结合侵入宿主细胞[17-18],可以通过胎盘屏障侵犯胎盘形成小脓肿,绒毛膜羊膜炎、绒毛炎等。感染常从子宫蜕膜开始,虽然胎盘屏障可以防止感染发生,但因妊娠期的特殊性,胎盘免疫功能受到抑制,从而感染LM的危险性更大[19]。胎儿在宫内受细菌感染的途径有3种:上行性羊水感染、上行性胎盘胎儿感染和血行性胎盘胎儿感染[20],其中最主要的感染途径可能是血行性胎盘胎儿感染。研究显示,新生儿感染李斯特菌病例均能在母亲的相关检测中找到李斯特菌感染证据,包括血、羊水及胎盘培养。母亲与新生儿的李斯特菌菌株的血清型及基因检测亦显示感染为同源性,再次证实母婴垂直传播是新生儿李斯特菌病发病的最主要方式。 2、临床表现:妊娠期LM感染可发生于任何孕期,但更多见于妊娠晚期;感染后常表现为高热、腹痛、白细胞增高、胎动减少或消失,伴或不伴胃肠道症状。妊娠早、中期感染可导致流产、死胎,妊娠晚期则导致胎儿及新生儿发生感染,可出现胎儿心率减慢、胎动减少、胎粪污染以及新生儿窒息、死亡等。新生儿感染LM有两种表现形式,根据发病时间分为早发型和晚发型。(1)早发型:即出生时或出生后2 d内临床表现异常,多为早产儿,表现为窒息、呼吸困难、发热、循环障碍等早期感染症状,主要临床表现为血流感染,可伴有急性呼吸窘迫及肺炎等,本型多由母婴传播、宫内感染所致,产单核细胞李斯特菌首先感染胎盘,引起胎盘炎性改变再感染胎儿。(2)晚发型:多发生于出生7 d后至数周,多为足月儿,主要表现为脑膜炎,有报道显示94%晚发型表现为脑膜炎[21]。产单核细胞李斯特菌可直接通过血脑屏障进入脑实质及脑干引起脑膜及脑干脑炎,存活婴儿约30%~50%留有严重神经系统后遗症。新生儿李斯特菌病易引起新生儿死亡,欧美国家报道新生儿病死率为20%~30%[22]。 三、诊断与治疗 1、诊断:围产期发生LM感染,如诊断和治疗不及时可导致产妇死亡;新生儿感染LM,病情凶险,病死率高,因此早期诊断是治疗的关键和前提。围产期高危因素有: (1)母亲孕期有食用生冷食物史;(2)母亲既往有不良孕产史,包括不明原因流产、死胎、早产或有新生儿早期感染者;(3)母亲围产期不明原因发热;(4)早产儿;(5)胎膜早破时间>18h;(6)有围产期窒息史,羊水浑浊、有异味[23]。目前最常用的诊断方法是血培养或胎盘细菌培养[24],确诊须获得阳性的细菌培养结果。对于高度怀疑有宫内感染的孕产妇,在分娩时应采集阴道及宫腔分泌物、胎盘胎膜组织进行病原菌培养及病理检查。同时对其新生儿做血液、脑脊液、胃液及咽拭子等细菌培养,严密监测新生儿C反应蛋白及白细胞的变化,密切观察临床表现,必要时给予抗生素抗感染治疗,减少围产期感染引起的新生儿死亡[25,26]。 2、治疗:如果孕妇发生李斯特菌感染,进行积极有效的治疗可以避免不良妊娠结局。由于LM细胞膜上存在至少5种青霉素结合蛋白,可与阿莫西林结合而不能与头孢类抗生素结合,因此对头孢类抗生素天然耐药[27]。目前在治疗LM感染的抗菌药物选择上,氨苄西林或氨苄青霉素是最佳首选药物,对于青霉素过敏的患者首选复方新诺明[28]。氨苄西林或氨苄青霉素联合氨基糖苷类抗生素有协同作用。本病虽少见,但应高度警惕,及时进行细菌培养可提高确诊率。在细菌培养结果回示前,目前的经验治疗是对有羊膜炎的孕妇静脉用药,选用氨苄青霉素4~6g/d,每天分4次静脉点滴。无羊膜炎或恢复期患者可口服阿莫西林2~3 g/d,疗程均需多于2周[29]。临床上还需根据具体情况及早结束妊娠。对于有上述高危因素且有严重感染表现的新生儿,应及时给予正确的抗感染治疗。对青霉素过敏者,可选用氨基糖苷类、红霉素、万古霉素等。 四、预防 产单核细胞李斯特菌(LM)是一种重要的食源性人兽共患病原菌,中国自2000年起开展食品LM监测,中国食品中LM污染率较高的食品主要为生肉及肉制品,污染率可达30%,其中生鸡肉、生猪肉分列前两位[30]。降低妊娠期李斯特菌病应采取以下措施:(1)提高妇产科医师对本病传播和预防知识的学习,在围产保健过程中,加强围产期保健宣传,让孕产妇在孕早期就得到预防李斯特菌病的相关知识;同时需对内科和急诊科医师加强宣传。(2)因为李斯特菌病主要通过食物经消化道传播,应告知孕妇避免食用生冷食物,不吃久存冰箱的食物,如动物制品、乳制品、生食蔬菜等;如孕期有相关饮食史,且出现发热等表现需要警惕产单核细胞李斯特菌感染,并及时就医,严密观察病情变化、检测感染原,并给予早期、积极、合理、足量的药物治疗,严密监测感染指标,并根据具体情况及早中止妊娠,同时对出生后的新生儿需要预防性或治疗性应用抗菌药物,在细菌培养和药敏结果未明确之前,建议首选青霉素类或联合其他类抗菌药

单核细胞增生李斯特菌脑膜炎1例

中国感染与化疗杂志2018年3月20日第18卷第2期?Chin?J?Infect?Chemother,?March?2018,?Vol.?18,?No.?2 206 ·病例报告· 作者单位:1. 天津南开医院,中西医结合医院脑病科,天 津 300100; 2. 天津市人民医院。 作者简介: 李佳(1978—),女,博士研究生,主治医师,从事 中西医结合脑病临床诊治。 通信作者:田卓民,E-mail :tianzhuomin19@https://www.wendangku.net/doc/a07244671.html, 。 单核细胞增生李斯特菌脑膜炎1例 李?佳1,?田卓民2 关键词: 单核细胞增生李斯特菌; 脑膜炎; 感染 中图分类号:R512.3 文献标识码:D 文章编号:1009-7708 ( 2018 ) 02-0206-03DOI: 10.16718/j.1009-7708.2018.02.015 Listeria monocytogenes meningitis: one case report LI Jia, TIAN Zhuomin. (Department of Traditional Chinese Medicine and Neurology, Tianjin Nankai Hospital, Tianjin 300100, China ) 1 临床资料 患者男,80岁,退休干部。既往体健,于2015年6月7日因剧烈头痛,神志恍惚入院。入院前1 d ,开始发热伴头痛,自以为“感冒”,服“布洛芬”,体温暂时降至正常后复升达40.5?℃。入院当天查体:T 39.0?℃,P 100次/m in ,R 20次/min ,BP 150/90 mmHg ,神志恍惚,言语欠流利,颈项强直,四肢肌力Ⅳ级,肌张力正常,腱反射(++),Kernig 征(+),双侧巴氏征(-),双侧指鼻试验、轮替试验及跟膝胫试验欠合作。外周血白细胞14.0×109/L ,中性粒细胞比例0.925;血沉 24.0 mm/h ,肝肾功能正常。6月8日腰穿初压266 mmH 2O ,末压159 mmH 2O ,脑脊液(CSF )外观无色透明,白细胞355×106/ L ,葡萄糖 1.41 mmol/L ,氯化物106.0 mmol/ L ,蛋白 3.63 g/ L 。在细菌学结果尚未回报的情况下,治疗方案:甘油果糖250 mL ,每8小时1次静脉滴注,哌拉西林-他唑巴坦钠静脉输注,联合异烟肼、利福平、乙胺丁醇口服;地 塞米松静脉注射。3 d 后(6月11日),意识障碍加重,嗜睡,仍发热,体温达39.8?℃,外周血白细胞12.4×109/ L ,中性细胞比例0.874 ,当日CSF 与血细菌培养回报均为“单核细胞增生李斯特菌 (Listeria monocytogenes )” ,CSF 细菌涂片阴性,抗酸染色(-)、墨汁染色(-), 结核抗体(-)。将治疗方案更改为氨苄西林2 g ,每6小时1次静脉滴注,继续甘油果糖治疗。同时进行第2次腰穿,初压179 mmH 2O , 末压99 mmH 2O ,CSF 外观无色透明,白细胞计数295×106/L ,葡萄糖 2.98 mmol/ L ,氯化物108.9 mmol/L ,蛋白1.84 g/ L 。第2次腰穿CSF 和血培养回报仍为单核细胞增生李斯特菌。而CSF 细菌涂片阴性、抗酸染色、墨汁染色均(-),CSF 结核抗体(-)。氨苄西林治疗4 d 后,患者神志完全转清,但语言欠流利,体温37.4?℃,外周血白细胞8.30×109/L ,中性细胞比例0.672。入院第10天,体温及生命体征正常。住院期间共做7次腰穿,自第3次腰穿开始,CSF 压力正常,常规和生化结果逐步趋于正常,连续3次(第 3、4、5次)CSF 和血细菌培养结果均为阴性。氨苄西林静脉滴注3周,氨苄西林胶囊口服4周后痊愈出院。2 讨论 1924年Murray 发现第1例单核细胞增生李斯特菌病(Listeria monocytogenes disease )[1],已报道

我院首例李斯特菌感染病例分析报告

论著·临床论坛 CHINESE COMMUNITY DOCTORS 我院首例李斯特菌感染病例分析报告 李凌洁杜余新 637000仪陇县人民医院,四川南充 doi:10.3969/j.issn.1007-614x.2019.18.017 关键词李斯特菌;感染;治疗方案 单核细胞增生李斯特菌(简称李斯特菌)属于李斯特菌属,为革兰阳性杆菌、兼性胞内寄生菌,是重要的食源性人兽共患病原菌,能够引起人类严重感染;广泛存在于自然界、水源、食品等;主要通过粪-口传播,常侵犯婴幼儿、妊娠妇女、老年人以及一些严重基础病的免疫受损宿主,导致皮肤黏膜感染、中枢系统感染、败血症、心内膜炎等[1-2]。本例口腔癌患者,其血液培养及鉴定分离出此菌,可能与患者有基础疾病,免疫力下降有关。李斯特菌感染应该选择适宜的抗生素,足量、足疗程治疗。本研究分析1例李斯特菌感染病例,旨在为临床不常见细菌感染经验治疗提供参考。病历资料患者,男,56岁,2018年5月23日入院。入院诊断为口底癌化疗后复发;化疗后骨髓抑制;发热原因待诊。入院时查体:T 39.6℃,P 102次/min,R 21次/min,BP 115/80mmHg,体重60kg。确诊口底癌3年多,发热1d,夜间急入我院肿瘤科治疗,给予柴胡注射液4mL 肌内注射,地塞米松磷酸钠注射液10mg 静脉滴注,葡萄糖注射液500mL+维生素C 注射液2g 静脉滴注,葡萄糖注射液500mL+氯化钾注射液1g 静脉滴注,葡萄糖注射液250mL+浓氯化钠60mL 静脉滴注,葡萄糖注射液250mL+艾迪注射液100mL 静脉滴注。治疗3d,相关检查逐步完善,患者体温36.2~39.5℃,反复发热。5月26日经验性抗感染治疗,给予注射用哌拉西林钠他唑巴坦2.25g,1次/8h,静脉滴注,1个疗程为3d,患者仍反复发热(体温36.3~39℃)。5月28日报血培养及鉴定(5月24日血样)提示:产单核李斯特菌。5月29日报血培养及鉴定(5月26日血样)结果提示:产单核李斯特菌。诊断为口底癌化疗后复发;化疗后骨髓抑制;菌血症;右侧股骨下段坏死;2型糖尿病。因患者反复发热,且我院无法进行单核细胞增生性李斯特菌的药敏试验,5月29日请临床药学科会诊,协助抗生素药物的选择,临床药师会诊后建议使用青霉素2.4g,1次/6h+阿米卡星注射液0.6g,1次/d,静脉滴注,1个疗程>3周,患者血培养及鉴定结果连续3次阴性即停用抗生素。使用该方案抗感染治疗第1天,监测患者体温,最高温度37.5℃,直至2018年6月18日患者出院,未再出现高热症状且血培养及鉴定结果连续3次均为阴性报告。此次抗感染治疗有效。讨论病因分析:患者系口腔癌化疗患者,属于免疫力低下的易感人群。病原菌侵袭该患者,出现反复发热。经过抗感染治疗后患者体温逐渐恢复正常水平。治疗方案分析:青霉素属于时间依赖性抗生素,半衰期约30min,500万~ 2400万U/d,给药频次1次/6h。阿米卡星注射液属于浓度依赖性抗生素,半衰期长,给药频次1次/d,1个疗程为3周,或3次血培养阴性即停止使用抗生素。革兰阳性杆菌感染所致菌血症,静脉给药。李斯特菌感染源头:患者感染的细菌可能来自冰箱内,家属自诉患者曾使用冰箱内的碗盛食物。李斯特菌生长在低温环境,或许是患者食用灌装奶粉,病原菌来自奶粉。世界卫生组织在李斯特菌食品中毒报告中指出,4%~8%的水产品、5%~10%的乳及乳制品、30%以上的家禽均被该菌污染[3]。我国食品中病原微生物监测数据显示,在各地区不同种类 的食品中,也有不同程度的李斯特菌感 染,其中生肉中检出率较高。国内也曾多 次有在奶粉中检查出李斯特菌的报道[4]。 李斯特菌易感因素:患者系有基础 疾病、免疫力低下人群,患者有易感因素存在,且有接触病原菌的机会。 关于李斯特菌的治疗:李斯特菌对头孢菌素天然耐药,治疗首选氨苄西林及青霉素G,并可联合氨基糖苷类抗生素,其具有协同作用。目前关于李斯特菌的治疗缺乏大规模临床研究,本次治疗在缺乏药敏的情况下只能进行经验治疗,治疗方案为青霉素联合阿米卡星。对于病情危重患者,可尝试应用万古霉素及美罗培南联合抗感染,但也有失败的例子,且容易诱发癫痫,所以不推荐使用。氯霉素、四环素、大环内酯类抗生素现在耐药率较高[5],偶有治疗成功的案例,但也不敢轻易尝试。氟喹诺酮体 外活性较好,临床经验有限。采用环丙 沙星治疗血液感染后,患者还是出现了 脑部感染,疗效不佳;但是莫西沙星可用于对青霉素类过敏的患者,因为体外研究表明其杀菌效力与阿莫西林相仿。其治疗方案,最终还是靠临床效果证实。参考文献 [1]李爱华,叶长芸.单核细胞增生性李斯特菌致病相关机制的研究进展[J].疾病监测,2011,26(11):914-919. [2]Dussurget O.New insights into determinants of Listeria monocytogenes virulence[J].Int Rev Cell Mol Biol,2008(270):1-38.[3]叶长芸,冰箱杀手李斯特菌.北京日报,2009.[4]闫鹤,王彬,师宝忠,等.单核细胞增生李斯特菌血清型、耐药性研究[J].中国抗生素杂志,2010,35(10):774-778. [5]张顺合.单核细胞增生李斯特氏菌在食品中的污染[J].中国公共卫生,2000,16(6):564-565. 27

产单核李斯特菌的危害评估报告

产单核李斯特菌 的危害评估报告 一、细菌的传播与致病 产单核李斯特菌是李斯特菌属中唯一可对人类致病的菌种,能够引起李斯特菌病,主要表现为脑膜炎和败血症。健康的带菌者是主要的传染源,可以经粪-口途径传播,也可以通过胎盘和产道由带菌的母亲感染给新生儿。如果人的眼睛或皮肤与带菌的病畜直接接触,也可造成局部感染。产单核李斯特还能引起鱼类、鸟类和哺乳动物牛、羊等多种动物疾病。 二、细菌的生物学特性 产单核李斯特菌是一种革兰阳性短小杆菌,大小约为1~2μm×0.4~0.5μm,通常成双排列,偶尔可见双球状。有鞭毛,但仅在18~20℃有动力,在37℃动力缓慢。无芽胞,一般不形成荚膜,但在含有血清的葡萄糖蛋白胨水中能形成粘多糖荚膜。兼性厌氧,对营养要求不高,普通培养基上可生长,在血平板上会形成β-溶血。最适的生长温度是30~37℃,并可在4℃条件下进行冷增菌。 产单核李斯特菌与葡萄球菌、链球菌、肺炎链球菌等及大肠埃希菌具有共同抗原。根据菌体及鞭毛抗原的不同,可将其分为4个血清型,1、3、4型还可分为若干亚型。抗原的结构与毒力无关,致病的物质主要是溶血素和菌体表面成分。其中1型主要感染啮齿动物,4型主要感染反刍动物。但各型均可对人类致病,尤以1a和1b最为多见。 本菌耐碱不耐酸,对热较为敏感,加热50℃10min即可死亡。同时该菌对多种抗生素敏感,以氨苄青霉素为首选,尚有青霉素、链霉素、四环素、氯霉素和红霉素等敏感。但该菌对磺胺、杆菌肽和多粘菌素耐药。 三、细菌的实验室检查 1、标本采集采集来自临床的各种标本,如脑脊液和血液。此外还可根据症状采集子宫、子宫颈、阴道、鼻咽部等部位的分泌物或组织,还有新生儿脐带残端、羊水及胎粪、尿等送检。 2、涂片镜检除了血液标本外,其余标本都可以涂片做革兰染色镜检,或用产单核李斯特菌1型和4型及多价荧光抗体进行染色。 3、动力检查在18~20℃有动力,在37℃动力缓慢。若发现有动力,应立即报告并及早进行抗生素治疗,以预防本菌败血症或脑膜炎的发生。 4、分离培养取脑脊液离心后的沉淀物划线接种于羊血琼脂平板上,于10%CO2环境中进行

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