YSJL012医院监测微生物检测原始记录

共 页 第 页 YSJL012 样品编号

样品名称

检测项目 □细菌菌落总数、□沙门氏菌、□金黄色葡萄球菌、 □绿 脓 杆 菌

□无菌检测 、□高压灭菌效果、□霉菌 □溶血性链球菌 □ 无菌检查

检测依据

□GB15981-1995 ，□GB15982-1995，□GB15980-1995

使用仪器 □电热恒温培养箱（编号： ）

、□生物指示剂培养器（ ）、□霉菌培养箱（ ）□生化恒温培养箱（ ） 收样日期 检测环境 检测日期

完成日期

实验步骤：

1. 空气检测：用9CM 直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5分钟后送检培养，35±1℃48小时后，平板

菌落计数。

空气细菌菌落数（cfu/m 3

）=50000N/AT (A-平板面积,T-平板暴露时间,N-平均菌落数)

2. 高压灭菌效果:将嗜热脂肪芽孢杆菌指示菌管放置于压力蒸汽灭菌器中，经过一个灭菌周期后，56℃

菌检查法》规定执行。对不能用破坏性方法取样的特殊医疗用品，用浸有无菌生理盐水盐水采样液的棉拭子在被检物体表面涂抹采样。

检测人： 校核人：

共页第页YSJL012

4.物体表面采样及检测:用5×5cm2的标准灭菌规格板，放在被检物体表面，用浸有无菌生理盐水采样液

的棉拭子1支，在规格板内横竖往返各涂抹5次，连续采样4个规格板面积，剪去手接触部分，将棉拭子放入装有10ML采样液的试管中送检。

物体表面细菌菌落总数（cfu/cm2）=平皿上菌落的平均数×采样液稀释倍数/采样面积

5.医护人员手采样及检测：被检人五指并拢，将浸有无菌生理盐水采样液的棉拭子一支在双手指曲面从

指根到指端来回涂抹各两次（一只手涂擦面积约30 cm2），剪去剪去手接触部分，将棉拭子放入装有10ML采样液的试管中送检。

手细菌菌落总数（cfu/cm2）=平皿上菌落的平均数×采样液稀释倍数/（30×2）

6.使用中消毒剂与无菌器械保存液检测：在无菌条件下，用无菌吸管吸取1ML被检样液，加入9ML相对

检测人：校核人：

微生物原始记录(消毒效果监测)

微生物检验原始记录 受理编号：检（20 ）号第页/共页 检验依据卫生部《消毒技术规范》2002版 一、实验器材 1．试验菌株：大肠杆菌，菌株号：1022，培养代数代，营养琼脂斜面培养基培养，培养条件： 2．试剂及培养基配制、灭菌见《试剂及培养基配制记录C》：第1次； 第2次；第3次。 3.恒温培养箱（36±1°C）：编号 SCCDC 。 4. 载体：玻片（10mm×10mm）. 5．样品名称：，批号：。二、试验方法 1．试验步骤：按《消毒技术规范》2002版2.1.5.2红外线消毒碗柜和2.1.5.7臭氧消毒柜消毒效果监测方法进行。 2．培养条件 受理编号：检（）号第页/共页 三、结果

阳性对照：接种稀释倍数： 平皿生长菌数： cfu/皿 菌液浓度： cfu/片。 对数值： 阴性对照：菌生长。 阳性对照：接种稀释倍数： 平皿生长菌数： cfu/皿 菌液浓度： cfu/片。 对数值： 阴性对照：菌生长。 阳性对照：接种稀释倍数： 平皿生长菌数： cfu/皿 菌液浓度： cfu/片。 对数值： 阴性对照：菌生长。 受理编号：检（）号第页/共页四. 结果处理：三次试验平均结果

阳性对照：菌液浓度： cfu/片。 对数值： 阴性对照：菌生长。 五.计算公式： （1）接种稀释倍数=V×A×B=5.0×A×1.0=5A 式中V为PBS体积(5ml)；A为接种前中和管液体稀释倍数；B接种样液体积。 （2）试验组菌片菌数或阳性对照菌片菌数=平皿生长平均菌数×接种稀释倍数（3）杀灭对数值=lg（阳性对照菌片菌数）－lg（试验组菌片菌数） （以下空白） 检验者：复核者：

食品微生物检验原始记录

食品微生物检验原始记录 HSCDC/ZJ-19-8A 共页第页 样品名称样品编号 受检单位样品批号 检测环境温度（T）：℃；相对湿度（RH）：% 接样日期年月日检测地点□净化室1 □净化室2 □BSL-2 检测起止日期年月日～月日 检测依据□GB/T4789.2-2008 □GB/T4789.3-2008第一法□GB/T4789.4-2008 □GB/T4789.5-2003 □GB/T4789.10-2008 □GB/T4789.11-2003 □GB/T4789.15-2003 检测仪器□电子天平（型号：SC6010）编号00-2 □霉菌培养箱（型号：WJP-150）25～28℃编号04-16 □电热恒温培养箱（型号：DNP-9272）36±1℃编号□04-15 □04-24 □05-11 □均质器（型号：BJ-IV）编号08-J3转速8000r/min 时间□1分钟□2分钟□3分钟 培养基□平板计数琼脂ML □LST肉汤ML □BGLB肉汤ML □虎红琼脂ML □BPW ML □TTB ML □SC ML □BS平板ML □XLD平板ML □GN ML □SS平板ML □EMB平板ML □API20E生化鉴定试剂盒 □7.5%氯化钠肉汤ML □Baird-Parker平板ML □血平板ML □兔血浆ML □葡萄糖肉浸液肉汤ML □其他 样品制备 固体和半固体样品：无菌称取25g，置于盛有225ml生理盐水的无菌灭菌杯内，进行均质处理。 液体样品：吸取25ml于样品于225ml生理盐水中，混匀。 液体样品：直接吸原液检验。 BPW ℃，h TTB ℃，h SC ℃，h GN ℃，h 7.5%氯化钠肉汤℃，h；葡萄糖肉浸液肉汤℃，h。 其它（生化试验、血清凝集试验等）： 检测者：审核者：

微生物检验原始记录(大肠菌群)

微生物检验原始记录(大肠菌群)

检验原始记录 编号：报告类别：微生物共页项目：大肠菌群coliforms 检验地点： 样品名称：样品编号： 样品状态：符合检验要求；其他境条件： 实验依据及步骤GB4789.3-2016 样品稀释 固体和半固体样品：称取25g样品置盛有225ml生理盐水或磷酸盐缓冲液的无菌均质容器内均质，或放入盛有225ml稀释液的无菌均质袋中拍击式均质器拍打，制成为1:10样品匀液。依次进行10倍递增稀释。 液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中混匀，为1:10样品匀液。 样品匀液的ph应在6.5-7.5之间，必要时分别用1mol/lNaOH或1mol/lHcL调节。 取1mL1∶10稀释匀液沿管壁缓缓注入9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用一支无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100样品匀液。 按上述操作顺序做10倍递增稀释液，每稀释一次，换用一支1mL灭菌吸量管。从样品匀液制备到样品接种完毕，全过程不得超过15min。 初发酵试验（9管法）每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤） 36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内是否有气泡产生。 产气者进行复发酵试验，未产气则继续培养至48±2h，产期进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。 复发酵试验（证实试验）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气情况。 数据分析与结果一、菌落计数

公共场所监测微生物检验原始记录[1]

公共场所监测微生物检验原始记录 QRD2035-2007第页共页 样品名称：公共场所监测样品样品编号：检验开始时间： 执行标准：GB/T18204-2000公共场所卫生标准检验方法检验完成时间： 仪器名称：电热恒温培养箱仪器型号：PYX-DHS 仪器编号：1212 仪器名称：生化培养箱仪器型号：205B 仪器编号：PQJK-48 检测方法： 1．菌落总数：空气：将采送检平皿翻转；餐具、毛巾、卧具：吸取采样稀释液（1：10）2ml分注入两块平皿内，每皿1ml如污染严重再做十倍递增稀释，然后把冷却至45℃左右的营养琼脂培基15ml倾入平皿中，置℃温箱培养小时，计算平皿上的菌落数。 计算方法：空气（CFU/皿）=平皿上菌落平均数。 餐具（CFUcm2）=平皿上菌落平均数×稀释倍数/50 毛巾、卧具（cfu/25cm2）=平皿上菌落平均数/2×稀释倍数 2．茶具、毛巾、卧具大肠菌群检验（纸片法）：将已采样的纸片置℃温箱培养小时， 观察结果。纸片保持紫色不变为大肠菌群阴性；若变黄或出现红色斑点或片状红晕均报告检 出大肠菌群。 理发用具大肠菌群检验（发酵法）：吸取采样稀释液5ml加入乳糖胆盐发酵管中，置℃ 温箱培养小时后观察，如不产气，则报告大肠菌群未检出；如产酸产气者，且进行分离培 养及证实试验确定，则报告大肠菌群阳性。 3．霉菌：吸取采样稀释液（1：10）2ml分别注入两块平皿内，每皿1ml，根据污染程度做2～ 3个稀释度，然后把冷却至45℃左右的孟加拉红培养基15ml倾入平皿中，置℃温箱培养天，计算平皿上的菌落数。 计算方法：毛巾、卧具（CFU/25cm2）=平皿上菌落平均数/2×稀释倍数。 计算方法：霉菌（CFU/50cm2）=平皿上菌落平均数×稀释倍数。 4．金黄色葡萄球菌：取采样液5ml,接种于50mlSCDLP培养液中，充分混匀，℃温箱培 备注：阴性－阳性+ 环境温度：温度℃湿度 % 检测者：复核者：审核者：