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科研指标测定方法

指标：1、品质指标

硬度、色泽、褐变指数、失重率、腐烂率、可溶性固型物、呼吸强度、乙烯释放

率、可滴定酸、Vc

2、抗性指标

抗氧化衰老的有：SOD CAT APX GSH MDA原果胶（可溶性果胶）

抗病相关指标有：PPO POD CHT GUL PAL酚类黄酮木质素

3、测定方法：

褐变指数

色泽

失重率

腐烂率

呼吸强度

乙烯释放率

硬度

可溶性固型物

可滴定酸：

试剂：0.1mol/L NaO（4g纯+1000ml蒸馏水，邻苯二甲酸氢钾标定）1獅酞试剂

（1g酚酞加入到100ml50%勺乙醇溶液中溶解）

方法：1、NaOH的标定：准确称取105C下烘干至恒重的基准邻苯二甲酸氢钾

0.6g，加入50ml新煮沸过的冷水，振摇，使其尽量溶解，再滴加2滴1%&酞

指示剂，用配置的NaOH溶液标定，滴定至溶液呈粉红色。每1mlNaOH相当于20.42mg邻苯二甲酸氢钾，计算出NaOH滴定液的浓度。

2、测定步骤：称10g苹果，研磨，转移到100ml容量瓶中，蒸馏水洗研钵3次再定容，摇匀，静置30min后过滤。吸取20ml滤液，转入三角瓶中，加入两滴1%&酞试剂，用已标定的氢氧化钠溶液进行标定，滴定至溶液初现粉色并30秒内不退色为终点（PH8.1-8.3 ）,重复三次，再用蒸馏水作为滤液进行滴定作为空白对照。可定丁酸含量=【样品提取液总体积*氢氧化钠滴定液浓度* （滴定滤液消耗的氢氧化钠体积一滴定蒸馏水消耗的氢氧化钠体积）】/ （滴定时所取滤液体积*样品质量）

Vc：

试剂：5%?酸铵溶液（称取5g钼酸铵溶于蒸馏水中，并定容至100ml）草酸-EDTA 溶液（称取6.3g草酸和0.75g EDTA-Na2溶于蒸馏水中并定容至1000ml）

5%H2SO4体积分数）偏磷酸-乙酸溶液（取棒状偏磷酸3g加20%冰醋酸48ml,溶解后加蒸馏水稀释至100ml,必要时过滤，在冰箱中可保存3天）Vc标准溶液（称取

Vc100mg置100ml容量瓶中，加适量草酸-EDTA溶液溶解后，在用该溶液定容到100ml，即成1mg/ml标准液，此溶液随配随用）（如果纯度不够应进行标定）

提取及测定：1、制作标准曲线：7支25ml具塞试管，按下表加入各种试剂

1 2 3 4 5 6 7

试管号试剂

/ml0 0.1 0.20.40.60.8 1.0 Vc标准液/ml 5.0 4.9 4.8 4.6 4.4 4.2 4.0 EDTA溶液草酸/ml0.5 0.5 0.50.50.50.50.5 -乙酸溶液偏磷酸1:19H2SO4/ml 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0

1.0

/ml 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 5%钼酸铵/mg 0 10 20 40 60 80 100V c 含量

加完试剂摇匀后，置30C水浴中保温15min,用蒸馏水稀释至25ml，混匀，用1号空白管调零，在760nm波长下比色，记录吸光度，以Vc含量为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。

2、提取及测定：称取5g果蔬组织，加5ml草酸-EDTA溶液研磨成匀浆，并仔细转入25ml容量瓶中，再用提取介质冲洗研钵，冲洗液一并倒入容量瓶中。取一部分匀浆液经3000g离心10min后，取1ml上清液与标准管同法测定，若样品显色液中出现沉淀，可过滤后进行比色，不影响测定结果。

计算公式：Vc含量（mg*100g-仆W =标准曲线上查的的Vc的量*样品提取液总体积/（测定时所用样品液体积*样品鲜重）注意：显色温度和加入显色剂后的时间要一致。

GSH

试剂：50g/L三氯乙酸（5g三氯乙酸和蒸馏水溶解稀释至100ml，再加入

186mgEDTA-Na2.2H2O0.1mol/LPH7.7 磷酸钠缓冲液和0.1mol/LPH6.8 磷酸钠缓冲液4mmol/L二硫代硝基苯甲酸（15.8mgDTNB 用0.1mol/L、PH6.8磷酸缓冲液溶解，定容至10ml，摇匀，4C保存）100umol/L还原性谷胱甘肽标准液（3g 还原型谷胱甘肽加入少量无水乙醇用蒸馏水定容至100ml）

实验步骤：1、标准曲线制作：

取六只试管编号，按下表加入各种试剂，混匀，于25E保温反应10min,以0 号管为参比调零，测定显色液在波长412nm处的吸光度值，以吸光度值为纵坐标，还原型谷胱甘肽为横坐标，绘制标准曲线。

管号项目

/ml 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

液/ml 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0 还原型谷胱甘肽标

蒸馏

1 2 3 4 5 6

7 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5

20 40 60 80 100 2、提取和测定：5g 果实加入经预冷的三氯乙酸，在冰浴下研磨匀浆，于 4C 、 12000xg 离心20min ,收集上清液测定。取一只试管，依次加入 1ml 蒸馏水、

1mlPH7.7磷酸缓冲液和0.5mlDTNB 混匀即为绘制标准曲线的0号管溶液，此液作为参比调零。另取两支试管，分别加入 1ml 上清液、1mlPH7.7磷酸缓冲液，然后向一只管中加入0.5mlDTNB 向另一支管中加入0.5mlPH6.8磷酸缓冲液。将两只管置于25C 下保温反应10min ,迅速测定显色液在波长412nm 下的吸光度值，分别记作ODs 和ODc 重复三次。

根据ODs-ODC 勺差值从标准曲线上查的还原型谷胱甘肽含量，计算每克果实中还原型谷胱甘肽的含量：还原型谷胱甘肽含量=（标准曲线上查得的值*样品提取液总体积）/ （吸取样品液体积*样品质量）注意：先做样品本底对照。.

MDA

试剂：100g/L 三氯乙酸（称取10g 三氯乙酸蒸馏水溶解稀释至 100ml ） 6.7g/L 硫代巴比妥酸（称取0.67g 硫代巴比妥酸，用100ml0.05mol/L 氢氧化钠溶解）测定步骤：称取1g 果蔬样品，加入5ml 三氯乙酸溶液，研磨匀浆于4C 10000g 离心

20min ,收集上清液低温保存备用。取 2ml 上清液，对照空白管中加入 2ml 三氯乙酸代替提取液，分别加入 2ml0.67%硫代巴比妥酸，混合后在沸水浴中煮沸20min ,取出冷却后再离心一次，分别测定上清液在 450nm 532nm 600nm 波长处的吸光度值，重复三次。计算：丙二醛含量（umol/L ）

=6.45*（OD532-OD600）-0.56*OD450

每克果蔬中丙二醛的含量二丙二醛含量*样品提取液总体积/（测定时所取样品液体积*样品质量*1000）注意：岀现负值，表明糖的影响很大，需做预实验确定适宜的条件。

原果胶（可溶性果胶）：

试剂：1.5g/L 咔唑-乙醇溶液（称取0.15g 咔唑加入无水乙醇溶解并稀释至100ml ） 100ug/ml 半乳糖醛酸标准液（称取10mg 半乳糖醛酸,用蒸馏水溶解定容至

M=194100ml ）浓硫酸 95%L 醇0.5mol/L 硫酸溶液

测定步骤：1、制作标准曲线：取6支25ml 具塞刻度试管，编号，按下表加入半乳糖醛酸标准液，然后小心地沿管壁加入 6ml 浓硫酸，在沸水浴中加热 20min , 取出冷却至室温后，各加入0.2ml1.5g/L 咔唑-乙醇溶液，摇匀，在暗处放置30min 后，测定反应液在波长530nm 处的吸光度值，并以吸光度值为纵坐标，半乳糖醛酸质量（ug ）为横坐标，绘制标准曲线求出方程。管号项目

水/ml PH7.7/ml 剂 DTNB/umol 肽物质的量磷酸缓冲液试相当于还原型谷胱甘

0 1 2 3 4 5

/ml 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 半乳糖醛酸标准液

/ml 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0 蒸馏水/ug 0 20 40 60 80 100 相当于半乳糖醛酸的量

2、提取测定：

(1)可溶性果胶提取：称取1g果蔬组织，研磨成匀浆转入50ml刻度离心管中，加入25ml95聽醇，在沸水浴上加热30min,以除去样品中糖分及其他物质，注意在煮沸过程中要及时补加95%乙醇。取出冷却至室温，于8000r/min离心5min，弃去上清液，再加入95%乙醇在沸水浴上加热，如此重复3-5次。然后将沉淀放入试管中，加入20ml蒸馏水，在50E水浴中保温30min,以溶解果胶。取出冷却至室温后，于8000r/min下离心15min，将上清液移入100ml容量瓶中，用少量水洗涤沉淀，离心后一并将上清液移入容量瓶中，加蒸馏水至刻度，此溶液即为可溶性果胶。

(2)原果胶提取：将上述遗留的沉淀物，保留在刻度离心管仲，再向其中加入

25ml0.5mol/L硫酸溶液，在沸水浴中加热1h以水解原果胶，取出冷却至室温后，于8000r/min下离心15min,将上清液移入100ml容量瓶中，加蒸馏水至刻度，此为原果胶测定液。

(3)测定：吸取1ml提取液，加入到25ml刻度试管中，按标准曲线的操作步骤进行测定，重复三次。计算：根据吸光度值查得半乳糖醛酸质量，计算每克果蔬中果胶含量，以半乳糖醛酸质量分数表示。? 半乳糖醛酸含量=查得的半乳糖醛酸量*样品提取液总体积/(测定时所取样品液体积*样品质量)注意：检验糖分是否除尽的方法：取0.5ml提取液置于试管中，加入2-3滴50g/L a -萘酚的乙醇溶液，充分混合，此时溶液稍有白色沉淀，然后使试管稍稍倾斜，用吸管沿管壁加入1ml浓硫酸(注意水层与硫酸层不可混合) 待试管静置后，若在两层的界面上产生紫红色环，则证明提取液中含有糖分

总酚：

试剂：钨酸钠(Na2WO4 2H2O)钼酸钠(Na2MoO4 2H2O)硫酸锂(Li2SO4)、磷酸(H3PO4> 85%)、磷钼酸(24MoO3- P2O5? xH2O)碳酸钠(Na2CO3)盐酸和溴水为分析纯。一水合没食子酸标样为Sigma -Aldrich 公司产品。水为蒸馏水。

1.1.2 FC 显色剂：称取50.0 g钨酸钠和1

2.5 g钼酸钠，用350 mL蒸馏水溶于1 000 mL回流瓶中，加入25 mL磷酸和50 mL盐酸，混匀，微沸回流2 h,加入75.0 g硫酸锂、25 mL蒸馏水和数滴溴水，开口沸腾约15min(至溴水挥尽为止),冷却，定容至500mL,过滤，置棕色瓶中保存备用。使用时加入1倍蒸馏水稀释。

1.1.3 FD显色剂：称取100.0 g钨酸钠和20.0 g磷钼酸，溶于200 mL蒸馏水，加入50 mL磷酸，加热回流2 h,冷却，定容至1 L。

1.1.4 7.5%碳酸钠溶液：称取37.5 g碳酸钠，溶于250 mL温水，混匀，冷却，

定容至500 mL。

1.1.5 一水合没食子酸标准溶液：称取0.110 g 一水合没食子酸，用蒸馏水溶解、

定容至100 mL,此溶液质量浓度为1 000 mg/L。分别吸取此溶液0.0、1.0、2.0、

3.0、

4.0、

5.0 mL 至100 mL 容量瓶中, 用蒸馏水定容至刻度, 所得一水合没食子酸标准溶液的质量浓度分别为0.0、10、20、30、40、50 mg/L。

取试样适量（葡萄酒吸取2mL,葡萄和柿子称取2 g匀浆，其他水果称取5 g匀浆）,用80 mL蒸馏水洗入100 mL容量瓶中,至100 C沸水浴中保温30 min,取出, 冷却, 定容, 过滤, 滤液备用。使用 5 mL 刻度吸管吸取 1.0 mL 滤液（若多酚含量过高, 可适当稀释）或一水合没食子酸标准溶液, 分别用刻度吸管加入FC显色剂或FD显色剂及7.5%碳酸钠溶液，用蒸馏水定容至10 mL,混匀，室温显色（下同） , 测定765 nm 吸光度, 根据稀释倍数和从标准曲线中查出的浓度,

计算样品多酚含量。

对于FD 法, 最佳的测定条件为分别吸取 1 mL 滤液、1 mLFD 显色剂、2 mL7.5% 碳酸钠溶液和6 mL蒸馏水，于10 mL离心管中混匀，室温下显色30?60 min, 测定

765 nm 吸光度。

对于FC 法, 最佳测定条件为分别吸取 1 mL 滤液、 1 mL FC 显色剂、 3 mL 7.5% 碳酸钠溶液和5 mL蒸馏水，于10 mL离心管中混匀，显色30?60 min,测定

765

nm 吸光度。

总酚含量测定:参照王军节： 1 g 果皮组织与预冷的 5 mL 1 %HCl - 甲醇溶液充分研磨提取，然后在4 °C下,8 000 r/ min 离心10 min后,取上清液直接用于

比OD280 / gFW 表示.

次样品重复测 3 , 酚类含量以色, 类黄酮:

试剂：1册酸-甲醇溶液（取1ml浓盐酸加入到99ml甲醇中，摇匀，于4C预冷）甲

醇溶液，冰浴研-盐酸1%果肉组织，加入少许经预冷的2g提取及测定：称取.

磨匀浆，转入20ml 刻度试管中，用1%盐酸-甲醇溶液冲洗研钵，一并转移到试管中，定容至刻度，混匀，于4C避光提取20min,期间摇动数次，然后过滤，收集滤液待用。以 1 %盐酸-甲醇溶液做参比调零，取滤液分别于波长280nm、325nm 处测定溶液吸光度值，OD28C表示总酚含量，OD325表示类黄酮含量。

注意：此测定方法仅能判断样品之间总酚、类黄酮的相对含量，若要准确含量，可以用不同浓度没食子酸做标准曲线，计算总分物质含量，用芦丁制作标准曲线，计算类黄酮含量。

木质素：参照Morrison （1972）法[12 ] 并修改。 1 g 果肉组织与预冷的 4 mL 体积分数95 %乙醇研磨,4 C下12000 X g离心10 min ,沉淀物用体积分数95 % 乙醇冲洗3次,再用乙醇：正己烷体积比=1 : 2冲洗3次,然后加1 mL2 mol/

NaOH中止反应。再加2mL冰醋酸和0.1 mL 7.5 mol/ L 盐酸羟胺，离心，取上清

0.5

mL ,用冰醋酸定容至10 mL ,280 nm 下测定样品吸光值, 样品重复测3 次。木质OD/ g（鲜重）表示。素含量以280

SOD：

试剂：0.1mol/LPH7.8磷酸钠缓冲液提取缓冲液（5gPVP和35ul B -巯基乙醇加入到0.1mol/LPH7.8磷酸缓冲液定容至100ml,摇匀，低温4C贮藏备用。）

50mmol/LPH7.8磷酸钠缓冲液130mmol/L L-蛋氨酸（称取1.94gL-蛋氨酸，用

50mmol/LPH7.8磷酸缓冲液溶解定容至100ml,充分混匀，先用现配，低温避光保

存，可使用1-2天）750umol/L氮蓝四唑溶液（称取61.3mgNBT用蒸馏水溶解，定容至100ml,充分混匀，现用现配，低温避光保存，可用2-3天）

100umol/LEDTA-Na2溶液（称取37.2mgEDTA-Na 用蒸馏水溶解，定容至100ml, 使用时稀释100倍，低温避光保存，可用8-10天）20umol/L核黄素溶液（称取73.2mg 核黄素，蒸馏水溶解，定容至100ml,使用时稀释100倍，低温避光保存，随配随用（黑纸包好）。

提取及测定：5g果蔬样品，加入5ml提取缓冲液，在冰浴下研磨成匀浆，转入离心管中，于4C 12000*g离心30min,收集上清液，低温保存备用。取5支试管，按照下表加入各种溶液，注意最后加入核黄素。其中3支为测定管，其余两

支为对照管，混匀后，将一只对照管置于暗处，其他各管置于4000lx日光灯下反应15min后立即取出，置于暗处终止反应。以不照光管做空白参比调零，于560nm处分别测定其它各管的吸光度值。

终浓度（比色时）试剂用量/ml

1.7

50mmol/LPH7.8磷酸缓冲液0.313mmol/L

130mmol/L蛋氨酸溶液0.375umol/L

750umol/L氮蓝四唑溶液0.310umol/L溶液

100umol/LEDTA-Na20.32umol/L核黄素溶液20umol/L对照两支管以缓冲液代替酶液

0.1

3ml

总体积■显色反应后，分别记录样品管反应混合液的吸光度值（ODS和照光对照

管反应混合液的吸光度值（ODC,以每分钟每克果蔬的反应体系对氮蓝四唑光化还原的抑制为50%为一个SOD舌性单位（U表示。

SOD舌性=（ODc-ODS *样品提取液总体积/（0.5*ODc*测定时所取样品液总体积* 光反应时间*样品质量）C为25注意：需要通过预实验摸索显色反应所需时间，温度以.

宜，低时适当延长时间，高时缩短时间。

CAT :

试剂：0.1mol/LPH7.5磷酸钠缓冲液50mmol/LPH7.5磷酸缓冲液提取缓冲液

（5gPVP和B -巯基乙醇用0.1mol/L磷酸缓冲液溶解定容至100ml,低温4C贮藏备用。）20mmol/LH2O2溶液（227ul的30%H2O溶液用50mmol/L磷酸缓冲液稀释至100ml,先用现配，低温避光保存）

测定步骤：称取5g果蔬样品，加入5ml提取缓冲液，冰浴下研磨至匀浆，于4C、12000*g离心30min,收集上清液，即为酶提取液。酶促反应体系由

2.9ml20mmol/LH2O2溶液和100ul酶提取液组成。以蒸馏水为参比空白，在反应15s 时开始记录反应体系在波长240nm处吸光度值，作为初始值，然后每隔30s

记录一次，连续测定，至少获取6个点的数据，重复三次。

制作反应体系吸光度值随时间变化的曲线，根据曲线的初始线性部分计算每分钟吸光度变化值△ OD240然后以每克果蔬样品每分钟吸光度值减少0.01为一个过氧化氢酶

生理指标测定实验方案设计设计汇总情况情况

预测指标： 1?抗氧化酶系统、MDA 2. 可溶蛋白、超氧阴离子自由基 3. 叶绿素、类胡萝卜素 4. 可溶性糖 5. 游离氨基酸 6. 过氧化氢 7. 谷胱甘肽、ASA 1. 抗氧化酶系统、MDA A酶活测定试剂： PBS 缓冲液0.05M （pH 7.8 ）:取0.663g NaH2PO4 ? 2H2O 16.384g Na2HPO4 ? 12H2O , 加PVPIOg，并加EDTA或者EDTA盐，使其浓度为2mM，加蒸馏水定容至1L。用前冰箱或冰上预冷。样品制备鲜样0.1-0.5g加入1 ml磷酸缓冲液（0.05M , pH 7.8 ）,稍许石英砂，研磨成匀浆；移入 10 ml离心管中，再用4ml磷酸缓冲液分两次洗涤研钵并全部转入离心管中；10000 X g 4 C 下离心20 min ;上清夜贮于4 C冰箱中保存备测。同时称取鲜样一份（0.1g左右）烘干称重。试剂配制：实验步骤： 2.725mL反应液+ 250uL蒸馏水+ 25uL酶液【样品管】 2.75mL反应液+ 250uL蒸馏水（光照作为100%CK ）【照光对照管】 2.75mL反应液+ 250uL蒸馏水（黑暗作为调零）【空白调零管】 4000IX日光灯下反应20分钟，560nm比色。反应温度25~35 C。已知SOD活性单位以抑制NBT光化还原的50 %为一个酶活性单位表示按下式计算SOD 活性：SOD 总活性=（Ack —AE）*V/ （0.5*Ack*w*Vt ）（式中SOD总活性以鲜重酶单位每克表示，Ack为照光对照管的吸光度，AE为样品管的吸光度，V为样品液的总体积ml , Vt为测定时样品用量ml , w为样品鲜重g）

植物生理生化测定

2.1.8转基因植株在盐胁迫下的超氧化物歧化酶(SOD)活性测定将转基因植株与非转基因对照植株继代于含有0.5% NaCl的MS固体培养上进行胁迫培养，培养条件为27±1℃，每天13 h、3000 lux光照。胁迫培养4 w后，取其叶片测定其SOD 活性，每个样品设3次重复，求其平均数，并进行多重比较。 2.1.8.1主要试剂及配方（1）0.1 mol/l pH 7.8磷酸钠（Na2HPO4-NaH2PO4）缓冲液 A液（0.1 mol/l Na2HPO4溶液）：称取Na2HPO4·12H2O 7.163 g，用少量蒸馏水溶解后定容至200 ml，4℃冰箱中保存备用； B液（0.1 mol/l NaH2PO4溶液）：称取NaH2PO4·2H2O 0.780 g，用少量蒸馏水溶解后定容至50 ml，4℃冰箱中保存备用；取上述A液183 ml与B液17ml充分混匀后即为0.1 mol/l pH 7.8的磷酸钠缓冲液，4℃冰箱中保存备用。（2）0.026 mol/l甲硫氨酸（Met）磷酸钠缓冲液称取甲硫氨酸（C5H11NO2S）0.388 g，用少量0.1 mol/l pH 7.8的磷酸钠缓冲液溶解后，再用相同磷酸钠缓冲液定容至100 ml，现用现配，4℃冰箱中保存可用1～2 d。（3）7.5 × 10-4 mol/l NBT溶液称取NBT（C40H30Cl2N10O6）0.153 g，用少量蒸馏水溶解后，定容至250 ml，现用现配，4℃冰箱中保存可用2～3 d。（4）含1.0 μmol/l EDTA的20 μmol/l核黄素溶液 A液：称取EDTA 0.003 g，用少量蒸馏水溶解； B液：称取核黄素0.075 g，用少量蒸馏水溶解； C液：合并A液和B液，定容至100 ml，此溶液即为含0.1 mmol/l EDTA的2 mmol/l 核黄素溶液，避光保存（可用黑纸将装有该液的棕色瓶包好），4℃冰箱中可保存8～10 d，当测定SOD酶活时，将C液稀释100倍，即为含1.0 μmol/l EDTA的20 μmol/l核黄素溶液。（5）含2% PVP的0.05 mol/l pH7.8磷酸钠缓冲液取0.1 mol/l pH7.8的磷酸钠缓冲液50 ml，加入2 g PVP（聚乙烯吡咯烷酮），充分溶解后移入100 ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀，4℃冰箱中保存备用。 2.1.8.2提取及测定方法（1）称取1.0 g样品叶片于预冷的研钵中，加入4 ml预冷的提取介质（含2% PVP的0.05 mol/l pH7.8磷酸钠缓冲液），冰浴研磨匀浆，转入10 ml离心管，并用提取介质定容至

常用运动生理学实验操作流程

常用运动生理学实验操作流程体育系运动人体科学实验中心

人体安静、运动时脉搏、血压的测定 [实验目的] 了解人体动脉血压测定的原理，学会人体在安静时和运动前后脉搏及血压的测定。 [实验原理] 血压的测定，最常用的是间接法。通过使用血压计在动脉外加压，根据血管音的变化测定血压。通常血液在血管内流动时并没有声音，如果对血管施加压力，使血管腔变窄而形成血液涡流时可发生血管音。当外加压力超过动脉血压的收缩压时，受压部位的血流完全被阻挡，此时在受压部位的远侧听不到声音。当外加压力低于收缩压而高于舒张压时，血液则可断续地通过受压部位使血流形成涡流而发出声音。当继续降低压力时，且外加压力等于舒张压时，受压部位的血流由断续流动恢复到持续流动，受压部位远侧的声音则由强变弱或突然消失。因此，动脉血流刚能发出声音时的最大外加压力相当于收缩压，而动脉内血流声音突变后消失时的外加压力则相当于舒张压。正常成人安静时心率约在60—-100次/分。心率常受年龄、性别、生理状况、训练水平、体力劳动及体育运动的影响。在实践中通过测定血压、心率可了解受检查者循环系统的功能，了解运动量、运动强度、运动训练对人的影响、运动后的恢复情况、运动的密度。 [实验对象] 人体 [实验器材]

血压计、听诊器、秒表、电子节拍器 [实验步骤] 一、安静时脉搏血压的测定（一）脉搏的测定 1.扪诊法桡动脉扪诊法：在测试安静脉搏时较为方便。颞浅动脉扪诊法：位于耳前部略偏上，颞浅动脉经过此处，适合于运动后。心前区扪诊法：位于左心前区心尖部，适合于运动后。颈动脉扪诊法：位于胸锁乳头肌前、下颌角下部。 2.器械法听诊法：用听诊器在心前区直接听诊，计算心率。心率遥测仪：可准确记录运动中和运动后心率。（二）安静时动脉血压的测定。 1.将脉压带绑在被试者的上臂，其下缘应距肘关节上约2--3厘米，松紧以能放入一指为宜。 2.在肘窝内侧找到搏动点，将听诊器头紧贴肘窝肱动脉处。 3.把气球的气门旋紧打气，随脉压带内的压力升高，逐渐可以听到有节奏的“咚咚”声，继续打气等声音消失时再使压力升高20--30毫米汞柱或2--4千帕，然后旋开气门徐徐放气。 4.在放气时注意听有节奏的“咚咚”声响的第一声出现时，水银面所指示的压力即为收缩压。 5.继续放气，随压力逐渐下降，听到突然变声或声音消失时，水银面

测定各生理指标的试验方法

测定各生理指标的试验方法 1.4.1 电导率的测量(浸泡法)[5] 取大小相当的植物叶片（尽量保证叶片的完整性，少含茎节），用自来水洗净后再用蒸馏水冲洗3次，用滤纸吸干表面水分，将叶片剪成适宜长度的长条（避开主脉），快速称取鲜样，每份0.1g,分别置于10ml去离子水的刻度试管中，盖上玻璃塞置于室温下浸泡处理12h,用电导仪测定浸提液电导（R1），然后沸水浴加热30min,冷却至室温后摇匀，再次测定浸提液电导（R2）。根据公式：相对电导率=R1/R2×100% 算出电导率。 1.4.2 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定（氮蓝四唑法）[5] 取各株植物相同部位的叶片（去叶脉）0.5g于预冷的研钵中，加1ml预冷的磷酸缓冲液在冰浴上研磨成浆，加缓冲液使最终体积为5ml。取1.5~2ml于4000r/min 下离心10min，上清液即为SOD粗提取液。取32支试管（30支测定管，2支对照管），分别加入1.5ml0.05mol/l磷酸缓冲液、0.3ml130nmolMet溶液、0.3ml750μmol/l NBT溶液、0.3mol100μmol/l EDTA液、0.3ml20μmol/l核黄素、0.05ml酶液（其中2支对照管以缓冲液代替酶液）、0.25ml蒸馏水，混匀，将一支对照管置于暗处，其他各管于4000lx日光下反应20min（要求各管受光情况一致，温度高时缩短，低时延长）。反应结束后，以不照光的对照管做空白，分别测定其他各管的吸光度。计算公式：SOD总活性（U/g)=[(A CK -A E )×V]/(0.5×A CK ×W×Vt) 注：SOD总活性以每克样品鲜质量的酶单位表示（U/g）；A CK 为照光对照管的吸光度；A E 为样品管的吸光度；V为样品液总体积（ml）；Vt为测定时样品用量（ml）；W为样品鲜质量（g）。 1.4.3 过氧化物酶(POD)活性的测定（愈创木酚法) [5] 酶液提取：取5.0g植物叶片，洗净，剪碎，放入研钵中。加适量的磷酸缓冲液研磨成匀浆。将匀浆液全部转入离心管中，于3000rmp离心10min，上清液转入25ml容量瓶中。沉淀用5ml磷酸缓冲液再提取2次，上清液并入容量瓶中，定容至刻度，低温下保存备用。分别在各试管中加入0.05mol/l磷酸缓冲液 2.9ml,2%H2O21.0ml，0.05mol/l愈创木酚1.0ml和0.1ml酶液来制备酶活性测定

水质常规指标测定操作方法精

1 / 23 水质常规指标测定操作方法一、COD：化学需氧量COD（Chemical Oxygen Demand），是在一定的条件下，采用一定的强氧化剂处理水样时，所消耗的氧化剂量。它是表示水中还原性物质多少的一个指标。采用重铬酸盐法测定（参看GB11914-89）方法原理：在强酸性溶液中，用一定量的重铬酸钾氧化水样中还原性物质，过量的重铬酸钾以试亚铁灵作指示剂，用硫酸亚铁铵溶液回滴。根据硫酸亚铁铵的用量算出水样中还原性物质消耗氧的量。方法的适用范围：用0.25mol/L浓度的重铬酸钾溶液可测定大于50mg/L的COD值，未经稀释水样的测定上限是700mg/L，用0.025mol/L浓度的重铬酸钾溶液可测定5~50mg/L的COD值，但低于10mg/L时测量准确度较差。所需仪器和实验用品： 1.硫酸汞： xx 2.硫酸-硫酸银试剂：向2500ml浓硫酸中加入25g硫酸银，放置1~2天，使之溶解，并混匀，使用前小心摇动。

3.重铬酸钾标准溶液（ 2CrO 7=0.25mol/L）： 2 / 23 称取预先在120℃烘于2h的优级纯重铬酸钾12.258g溶于水中，移入1000m容量瓶，稀释至标线，摇匀。 4.硫酸亚铁铵标准溶液[(NH 4) 2Fe(SO4) 2·6H 2O≈0.1mol/L]：称取39.5g硫酸亚铁铵溶于水中，边搅拌边缓慢加入20ml浓硫酸，冷却后移入1000ml容量瓶中，加水稀释至标线，摇匀。临用前，用重铬酸钾标准溶液标定。标定方法：准确吸取10ml重铬酸钾标准溶液于500ml锥形瓶中，加水稀释至110ml左右，缓慢加入30ml浓硫酸，摇匀。冷却后，加入3滴试亚铁灵指示液（约0.15ml），用硫酸亚铁铵溶液滴定，溶液的颜色由黄色经蓝绿色至红褐色即为终点。 c[(NH 4) 2Fe(SO 4) 2]=0.25×10/V 式中： c----硫酸液铁铵标准溶液的浓度（mol/ L）； V---硫酸亚铁铵标准滴定溶液的用量（ml）。 3 / 23 5.试亚铁xx指示液：

植物生理生化指标测定

小黑豆相关生理指标测定 1.表型变化：鲜重、株高、主根长和叶面积鲜重：取处理好的植株，擦干根和叶表面水分，测量整株植物的重量，每个测6个重复。株高：取处理好的植株，测量从根和茎分隔处到植株最高点的高度，记录，每个测6个重复。主根长：取处理好的植株，测量从根和茎分隔处到主根最远点长度，记录，每个测6个重复。叶面积：取处理好的植株，选择第二节段的叶片，测量叶面积，叶面积测量方法是测每个叶片最宽处长度作为叶的长，测叶片最窄处长度作为叶的宽，叶片长和宽的乘积即为叶表面积。每个测6个重复。 2.总蛋白、可溶性糖、丙二醛（MDA）和H2O2含量测定样品处理：取0.5g样品（叶片要去除叶脉、根要先用清水清洗干净），速在液氮中冻存，在遇冷的研钵中加液氮研磨，然后加入1.5ml的Tris-HCl（pH7.4）抽提，将抽提液转移到2ml的EP管中，于4℃，12000rpm离心15min，取上清，保存在-20℃下，上清液可用于总蛋白、丙二醛（MDA）、可溶性糖和H2O2含量测定。总蛋白测定（Bradford法）：样品反应体系（800ul H2O+200ul Bradford+5ul 样品），空白对照为（800ul H2O+200ul Bradford）。测定后带入标准曲线Y=32.549X-0.224(Y代表蛋白含量，X代表OD595)，计算得出蛋白含量。可溶性糖测定：样品反应体系（1ml蒽酮+180ul ddH2O+20ul样品提取液）；空白对照（1ml蒽酮+180ul ddH2O），测定OD625后带入标准曲线：Y=0.0345X+0.0204(Y代表OD625，X代表可溶性糖含量（ug）) 蒽酮配方：称取100mg蒽酮溶于100ml稀硫酸（76ml浓硫酸+30mlH2O）.注意：浓硫酸加入水中时，一点一点递加，小心溅出受伤。丙二醛（MDA）测定：在酸性和高温条件下，丙二醛可与硫代巴比妥（TBA）反应生成红棕色的3,5,5-三甲基恶唑2,4-二酮，在532nm处有最大吸收波长，但该反应受可溶性糖的极大干扰，糖与TBA的反应产物在532nm处也有吸收，但其最大吸收波长在450nm处。采用双组分分光光度法，可计算出MDA含量。MDA的计算公式为：MDA（umol/L）=6.45OD532-0.56OD450. 反应体系为：400ul 0.6%TBA+350ul H2O+50ul样品，80℃水浴10min后，测OD532和OD450。对照用Tris-HCl. 0.6%TBA配方：称取硫代巴比妥0.6g，溶于少量1M NaOH中，待其完全溶解后用10%TCA（称取10gTCA三氯乙酸，溶于100ml蒸馏水中，待其溶解即可）定容至100ml。 H2O2测定（二甲酚橙法）：样品反应体系（82ul溶液A+820ul溶液B （A:B=1:10）+150ul样品提取液），30℃水浴30min，测OD560。标准曲线为:Y=0.01734X-0.0555(Y代表OD560，X代表H2O2含量)

水质指标测定方法手册

水质指标测定方法手册第一部分总则 1.1 目的此手册的目的是规范化验室分析工作，保证实验条件、仪器设备、人员操作符合国家标准的规定，确保化验室检验的准确性。 1.2 宗旨此手册的宗旨是以先进的、科学的分析方法，以准确的分析数据来帮助操作员工了解本废水处理系统实际的运行情况视实调整，以取得最好的工艺处理效果，达到指导的目的。 1.3 依据本手册介绍的所有指标检测方法均使用国家标准方法或是行业规定标准方法；

第二部分注意事项 1.1进入实验室工作和学习的人员需遵守实验室安全管理规章制度，克服麻痹大意思想，掌握基本的安全知识和救助知识，非工作需要未经许可不得擅自进入实验室。 1.2工作人员进入实验室后需着工作服，严格实行检验方法标准，遵守操作规程和一切规章制度不得擅自修改。 1.3 水质分析过程需用到浓硫酸，浓盐酸、硫酸汞等腐蚀、有毒药品，这些危险品及有毒药品要按规定设专用库房，做到专室专柜储存，并指定专人、双人双锁妥善保管，严格以上物品的管理； 1.4 开启使用硫酸、盐酸等腐蚀刺激性药品时，要带上耐酸手套和防护眼镜，先用湿布盖上瓶口再开动瓶塞，以防溅出，烧伤眼睛和皮肤等。因为浓盐酸是具有挥发性的，操作应在通风橱内进行。 1.5 为确保分析结果的准确性，建议购买环境标准样品，化验室分析人员定期拿环境标准样品进行实际测试，将测试结果与参考值进行比较。 1.6 实验人员严格按规定方法取样、制样、留样，经常检查有关设备的取样管等，确保取样有代表性，留样标记要清楚。

1.7 正确使用并维护好相关仪器，定期对其进行校正。 1.8 测定方法用到标准曲线的，严格上要求每次重新配制药品后需重新绘制标准曲线。第三部分操作手册水质篇第一章、PH的测定 (4) 第二章、悬浮物（SS）的测定 (8) 第三章、色度的测定 (10) 第四章、化学需氧量（COD）的测定 (11) 第五章、五日生化需氧量（BOD5）的测定 (14) 第六章、溶解氧的测定 (18) 第七章、挥发性脂肪酸（VFA）的测定 (21) 第八章、总氮（TN）、总磷（TP）的测定 (23) 第九章、氨氮的测定 (34) 污泥篇第一章、颗粒污泥总浓度（TSS）、挥发性污泥浓度（VSS）、灰分

植物生理生化指标测定(精)

小黑豆相关生理指标测定 1. 表型变化:鲜重、株高、主根长和叶面积鲜重 :取处理好的植株,擦干根和叶表面水分,测量整株植物的重量,每个测 6个重复。株高 :取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到植株最高点的高度,记录,每个测6个重复。主根长 :取处理好的植株,测量从根和茎分隔处到主根最远点长度,记录,每个测6个重复。叶面积 :取处理好的植株,选择第二节段的叶片,测量叶面积,叶面积测量方法是测每个叶片最宽处长度作为叶的长, 测叶片最窄处长度作为叶的宽, 叶片长和宽的乘积即为叶表面积。每个测 6个重复。 2. 总蛋白、可溶性糖、丙二醛(MDA 和 H2O2含量测定样品处理:取 0.5g 样品(叶片要去除叶脉、根要先用清水清洗干净 ,速在液氮中冻存,在遇冷的研钵中加液氮研磨,然后加入 1.5ml 的 Tris-HCl (pH7.4 抽提, 将抽提液转移到 2ml 的 EP 管中, 于 4℃, 12000rpm 离心 15min , 取上清, 保存在 -20℃下,上清液可用于总蛋白、丙二醛(MDA 、可溶性糖和 H2O2含量测定。总蛋白测定(Bradford 法 :样品反应体系(800ul H2O+200ul Bradford+5ul样品 , 空白对照为(800ul H2O+200ul Bradford 。测定后带入标准曲线 Y=32.549X-0.224(Y代表蛋白含量, X 代表 OD595 ,计算得出蛋白含量。可溶性糖测定:样品反应体系(1ml 蒽酮 +180ul ddH2O+20ul样品提取液 ; 空白对照 (1ml 蒽酮 +180ul ddH2O , 测定 OD625后带入标准曲线 : Y=0.0345X+0.0204(Y代表 OD625, X 代表可溶性糖含量(ug

实验方法汇总(水质监测指标)

实验方法汇总第一部分水样的采集和储存第一节进水取样用烧杯从进水箱中取样，根据不同指标的测定频率确定取样量的大小，从中取约20mL水样过0.45um滤膜后存于聚乙烯瓶中，标明取样日期后4℃储存于冰箱中用于硝氮、亚硝氮的测定；另取约10mL水样过玻璃纤维膜后用硫酸调pH至小于2，存于玻璃试管中，标明取样日期后4℃储存于冰箱中用于TOC 的测定。其余水样用于COD、氨氮、色度、pH、总铁、蛋白质和多糖指标的测定，测定BOD的当天取样量约300mL。第二节出水取样用烧杯从出水口接取一定量水样，其它同进水。第三节上清液取样将适量混合液用定性滤纸过滤，取滤液进行各项指标的测定，具体同进水取样，将过滤后余下的污泥倒回反应器内（整个实验中，除测定MLVSS外，其它指标测定完毕后都要将污泥倒回反应器内）。

第二部分理化指标的测定方法第一节DO、水温的测定采用溶解氧仪进行DO和水温的测定：将溶氧仪的电极与仪器连接并将电极浸没入反应器内混合液液面以下（每次的测定位置都固定在同一死角处并保证温度感应部分也没入水面以下），打开溶解氧仪，调至显示mg/L单位的状态下，待读数稳定后记录下DO和水温。测试完毕后关掉溶氧仪，拔下电极依次用清水和蒸馏水清洗后，用滤纸小心擦干电极后将溶氧仪放回固定位置处。第二节pH的测定 1.仪器：pH计10mL小烧杯 2.试剂用于校准仪器的标准缓冲液，按《pH标准溶液的配制》中规定的数量称取试剂，溶于25 oC水中，在容量瓶内定容至1000ml、水的电导率应低于 2μS/cm，临用前煮沸数分钟，赶走二氧化碳，冷却。取50ml冷却的蒸馏水，加1滴饱和氯化钾溶液，测量pH值，如pH在6～7之间即可用于配制各种标准缓冲液。 pH标准液的配制标准物质 pH（25 oC）每1000ml水溶液中所含试剂的质量（25 oC）基本标准酒石酸氢钾（25 oC饱 3.557 6.4gKHC4H4O6①

植物生理指标检测方法

植物组织中可溶性糖含量的测定在作为营养物质主要是指可溶性糖和淀粉。它们在营养中的作用主要有：合成纤维素组成细胞壁；转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等；分解产物是其他许多有机物合成的原料，如糖在呼吸过程中形成的有机酸，可作为NH 3 的受体而转化为氨基酸；糖类作为呼吸基质，为作物的各种合成过程和各种生命活动提供了所需的能量。由于碳水化合物具有这些重要的作用，所以是营养中最基本的物质，也是需要量最多的一类。 Ⅰ蒽酮法测定可溶性糖一、原理糖在浓硫酸作用下，可经脱水反应生成糠醛或羟甲基糠醛，生成的糠醛或羟甲基糠醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物，在一定范围内，颜色的深浅与糖的含量成正比，故可用于糖的定量测定。该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物，不但可以测定戊糖与己糖含量，而且可以测所有寡糖类和多糖类，其中包括淀粉、纤维素等（因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应），所以用蒽酮法测出的碳水化合物含量，实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量。在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下，用蒽酮法可以一次测出总量，省去许多麻烦，因此，有特殊的应用价值。但在测定水溶性碳水化合物时，则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中，不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与蒽酮试剂发生反应而增加了测定误差。此外，不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同，果糖显色最深，葡萄糖次之，半乳糖、甘露糖较浅，五碳糖显色更浅，故测定糖的混合物时，常因不同糖类的比例不同造成误差，但测定单一糖类时，则可避免此种误差。糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区的吸收峰为 620 nm ，故在此波长下进行比色。二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料任何植物鲜样或干样。（二）试剂 1. 80 ％乙醇。 2. 葡萄糖标准溶液（100 μg/mL ）：准确称取100 mg 分析纯无水葡萄糖，溶于蒸馏水并定容至100 mL ，使用时再稀释 10 倍（ 100 μg/mL ）。 3 ．蒽酮试剂：称取 1.0 g 蒽酮，溶于 80% 浓硫酸（将 98% 浓硫酸稀释，把浓硫酸缓缓加入到蒸馏水中） 1000 mL 中，冷却至室温，贮于具塞棕色瓶内，冰箱保存，可使用 2 ～ 3 周。（三）仪器设备分光光度计，分析天平，离心管，离心机，恒温水浴，试管，三角瓶，移液管（ 5 、 1 、0.5 mL ），剪刀，瓷盘，玻棒，水浴锅，电炉，漏斗，滤纸。三、实验步骤 1. 样品中可溶性糖的提取称取剪碎混匀的新鲜样品0.5 ～ 1.0 g （或干样粉末 5 ～100 mg ），放入大试管中，加入15 mL 蒸馏水，在沸水浴中煮沸20 min ，取出冷却，过滤入100 mL 容量瓶中，用蒸馏水冲洗残渣数次，定容至刻度。 2. 标准曲线制作取 6 支大试管，从 0 ～ 5 分别编号，按表 24-1 加入各试剂。表 24-1 蒽酮法测可溶性糖制作标准曲线的试剂量将各管快速摇动混匀后，在沸水浴中煮10 min ，取出冷却，在620 nm 波长下，用空白调零测定光密度，以光密度为纵坐标，含葡萄糖量（ μg ）为横坐标绘制标准曲线。 3 ．样品测定取待测样品提取液 1.0 mL 加蒽酮试剂 5 mL ，同以上操作显色测定光密度。重复 3 次。

各生理指标的测定方法

各生理指标的测定方法一、脯氨酸含量的测定 1.茚三酮法 1.1原理在正常环境条件下，植物体内游离脯氨酸含量较低，但在逆境（干旱、低温、高温、盐渍等）及植物衰老时，植物体内游离脯氨酸含量可增加10-100倍，并且游离脯氨酸积累量与逆境程度、植物的抗逆性有关。用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸游离于磺基水杨酸的溶液中，然后用酸性茚三酮加热处理后，溶液即成红色，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。在520nm波长下比色，从标准曲线上查出（或用回归方程计算）脯氨酸的含量。 1.2步骤试剂：（1）25%茚三酮：茚三酮------------0.625g 冰乙酸------------15ml 6mol/L磷酸--------10ml 70°C水浴助溶；（2）6mol/L磷酸：85%磷酸稀释至原体积的2.3倍；（3）3%磺基水杨酸：磺基水杨酸------3g 加蒸馏水至------100ml 实验步骤：（1）称取0.1g样品放入研钵，加5ml 3%磺基水杨酸研磨成匀浆，100°C沸水浴15min；（2）冰上冷却，4000rpm离心10min；（3）提取液2ml+冰醋酸2ml+25%茚三酮2ml混合均匀，100°C沸水浴30min，冰上冷却；（4）加4ml甲苯混合均匀，震荡30s，静置30min；（5）以甲苯为空白对照，再520nm下测定吸光值。 1.3计算方法脯氨酸含量（μg/gFW）＝ X * 提取液总量（ml）/ 样品鲜重（g）*测定时提取液用量（ml）*10^6 公式中：X-----从标准曲线中查得的脯氨酸含量（μg）提取液总量---------------------------5ml 测定时提取液用量---------------------2ml 问题及质疑： 1.酸性体系下，脯氨酸与茚三酮加热反应后的最终产物为红色，再实验过程中，仅有少数时候能发现红色产物。原因有待确定。 2.经查看文献资料，反应步骤已经是优化的，没有问题。甲苯萃取脯氨酸与茚三酮的反应产物，消除了多余未反应的茚三酮，磺基水杨酸，提取液中其他杂质（如色素）以及PH变化

水质指标测定方法简单版

水中总氮的测定（过硫酸钾氧化紫外分光光度法）（一）主要试剂：碱性过硫酸钾溶液：称取4g过硫酸钾(K2S208)和1.5g氢氧化钠，溶于无氨水中，稀释至100mL。 1mol/L的HCL ：取8.33 mL的浓盐酸稀释至100 mL。（二）测定步骤：水样加5mL碱性过硫酸钾溶液，包扎高温消解30min。于消解完全的试样中加入1mL 1mol/L的HCL，加水至刻度，充分混匀后，分别于220nm和275nm波长处测定吸光值，吸光度计算：A=A220nm-2A275nm。水中总磷的测定（过硫酸钾氧化-钼锑抗比色法）（一）主要试剂： 6.5mol/L钼锑储备液：取180.6ml分析纯浓硫酸，缓缓加入到400ml蒸馏水中，不断搅拌，冷却。加入20g钼酸铵和0.5g酒石酸锑钾，搅拌，待溶液冷却后定容至1000ml。钼锑抗混合显色剂：取100ml钼锑贮存液，加入1.5g抗坏血酸，此试剂宜现配现用。 5%的过硫酸钾溶液：5g过硫酸钾溶解于水，定容至100ml。二硝基酚指示剂：称取0.2克2,6-二硝基酚溶于100ml水中。（二）测定步骤：水样加4ml 5%的过硫酸钾溶液，包扎高温消解30min。测定：经消解后的样品加入2,6-二硝基酚指示剂2滴，用氢氧化钠和盐酸调节至微黄色。再加入2.5 ml 6.5mol/L钼锑抗显色剂，定容摇匀，放置30min后，在700nm波长处测量吸光度。水中氨氮的测定（苯酚-次氯酸钠分光光度法）（一）主要试剂： 1%EDTA溶液：溶解1g EDTA于100ml水中，用浓氢氧化钠将pH调至10。溶液B：溶解5g苯酚和25mg亚硝酰氰化钠（亚硝酰铁氰化钠）于水中稀释至500毫升，放棕色瓶中，置于冰箱中贮存。溶液C：溶解2.5g氢氧化钠，18.7 g磷酸氢二钠和15.9g磷酸三钠于水中，加入含有效氯4.3ml次氯酸钠，定溶至500ml，放棕色瓶中，置于冰箱中贮存。（二）测定步骤：于抽滤过后的水样中加1ml 1%EDTA，加入5ml B溶液，5ml C溶液，摇匀，定容，置37℃恒温水浴中发色30分钟。在625nm处测定吸光度。水中硝态氮的测定（紫外分光光度法）测定方法：于抽滤后的试样中加入1mL 1mol/L的HCL，加水至刻度，充分混匀后，分别于220nm和275nm波长处测定吸光值，吸光度计算：A=A220nm-2A275nm。水质高锰酸盐指数的测定（一）试剂配制： 0.1mol/L KMnO4储备液：3.2g高锰酸钾溶解定容至1L。 0.1mol/L的草酸钠储备液: 称取0.6705g经120℃烘干2h并放冷的草酸钠溶解并定

测生理指标的方法

实验路线及安排：项目主要在晋西北地区展开区域化试验，供试品种4个，均为当年生扦插苗,每个品种15株，采用完全随机区组设计进行，其中包括4个处理，3个重复。所测定内容包括12项生理指标在相应部位(根、茎、叶)的年变化规律，并从形态、生理和生物化学方面对其抗寒抗旱性机理进行研究探讨。在每个小区分别选健康植株2株，每株取其中上部位叶片1-2片，组成混合样，编号,带回实验室用一部分样品进行抗旱指标测定,其余样品放入冰箱低温处理，处理温度为0℃、-10℃，-20℃，然后进行抗寒指标测定,每月采样一次。根的取样方法为每个小区分别选健康植株10株，挖出其部分根系组成混合样,处理方法同叶片；茎的取样方法为选健康植株10株，取其上部嫩茎组成混合样，处理方法同上。2009年10月-2010年3月对所选材料进行人工低温干旱处理,完成相关实验指标的测定工作。低温处理通过相对电导率及相关指标评价其抗寒性；干旱处理是通过对所栽品种进行适宜土壤水分、中度干旱、严重干旱条件的人为处理，测定杨树的蒸腾速率和相应指标，评价其抗旱性。实验方法一．光合效率、气孔导度、蒸腾速率三项指标用光合仪直接测定；二．水势（小液流法） 1.取10个干净的试管，分成A组和B组，都贴上0.05mol/L、0.1 mol/L、 0.15 mol/L、0.2 mol/L、0.3 mol/L 6个不同浓度标签，并向这两组试管中分别移取相应浓度的CaCl 2 溶液4mL。 2.取待测叶子数片，用打孔器在其上均匀打孔，混匀，将其分别装入A组试管（每支试管装10片），摇匀，滴入一滴相同浓度的甲烯蓝溶液，再摇匀。 3.用干净的毛细移液管，吸取1～2滴蓝色溶液，小心的插入装着相同浓度的 B组试管中部，轻轻的挤出一滴蓝色溶液，观察蓝色液滴流动方向。按下公式计算植物组织水势：Ψ=-iRTC 式中：Ψ为植物组织水势（MPa）；C为CaCl2溶液的摩尔浓度（mol/L）；R为摩尔气体常数，0.008314MPa·L/mol·K；T为热力学温度（K），即273+t(t为当时摄氏温度)；I解离常数（CaCl 2 =2.6）三．叶绿素含量（直接浸提法） 80％的丙酮液的配制：4L丙酮 + 1L蒸馏水。称0.5g左右的叶片放在50ml的离心管（做三个重复），加入25ml浓度为80％的丙酮液，放在黑暗处浸提大约36小时后取出，稀释4倍后分别在波长663nm、645nm、652nm下测定光密度，以80％的丙酮液为空白。按下列公式计算样品中叶绿素含量。 C A =12.72A 663 -2.59A 645 (1) C B =22.88A 645 -4.67A 663 (2) C T =C A +C B =A 652 ×1000/34.5 (3)在652nm时可一次测出叶绿素总含量 mg/g FW）=(CV T /FW×1000)n (4) 以上公式中，C A 、C B 、C A+B 分别为叶绿素a、叶绿素b、叶绿素a+b的浓度（mg/L）； FW为鲜重(g)；C：叶绿体色素的浓度；V T 为提取液总体积(mL)；n为稀释倍数。

锅炉水质标准及测定方法总结.docx

GB/T 1576-2008 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法（GB/T 5682-2008，ISO 3696：1987，MOD） GB/T 6903 GB/T 6904 GB/T 6907 GB/T 6908 GB/T 6909 GB/T 6913锅炉用水和冷却水分析方法通则工业循环冷却水及锅炉用水中pH 的测定锅炉用水和冷却水分析方法水样的采集方法锅炉用水和冷却水分析方法电导率的测定锅炉用水和冷却水分析方法硬度的测定锅炉用水和冷却水分析方法磷酸盐的测定（ GB/T 6913-2008，ISO 6878：2004，Water quality-Determination of phosphorus-Ammonium molybdate spectrometric method ， NEQ） GB/T 12145 GB/T 12151 GB/T 12152 GB/T 12157火力发电机组及蒸汽动力设备水汽质量锅炉用水和冷却水分析方法浊度的测定（福马肼浊度）锅炉用水和冷却水中油含量的测定工业循环冷却水和锅炉用水中溶解氧的测定（GB/T 12157-2007，ISO 5813：1983，Water quality-Determination of dissolved oxygen-Iodimetric method ，NEQ） GB/T 15453 工业循环冷却水和锅炉用水中氯离子的测定 DL/T 火力发电厂水汽分析方法第 1 部分：总则 DL/T火力发电厂水汽分析方法第25部分：全铁的测定（磺基水杨酸分光光度法） 3术语和定义下列术语和定义适用于本标准。原水 raw water 未经过任何处理的水。软化水softened water 除掉全部或大部分钙、镁离子后的水。

植物生理学实验指导

植物生理学实验指导主编胡君艳陈国娟张汝民浙江农林大学植物学科 2013年8月

实验一植物组织水势的测定水势与渗透势的测定方法可分为3大类：⑴液相平衡法，包括小液流法、重量法测水势，质壁分离法测渗透势；⑵压力平衡法（压力室法测水势）；⑶气相平衡法，包括热电偶湿度计法、露点法等。 Ⅰ小液流法【实验目的】了解采用小液流法测定植物组织水势的方法。【实验原理】水势表示水分的化学势，像电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势差决定。当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，而溶液的渗透势即等于所测植物的水势。可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液的浓度变化，然后根据公式计算渗透势。【实验器材与试剂】 1.实验材料：八角金盘、大叶黄杨等。 2.实验试剂：0.05、0.10、0.15、0.20、0.30mol·L-1蔗糖溶液、甲烯蓝溶液。 3.实验仪器：试管10支、微量注射器、镊子、打孔器、垫板。【实验步骤】 1.取干燥洁净的试管5支为甲组，标记1~5，各支中分别加入0.05~0.30mol·L-1蔗糖溶液5mL。另取5支干燥洁净的试管为乙组，标记1'~5'，各试管中分别加入0.05~0.30mol·L-1蔗糖溶液2ml。 2.取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片（避开叶脉），混合均匀。用镊子分别夹入10个小圆片到乙组试管中。并使叶圆片全部浸没于溶液中。放置约30~60min，为加速水分平衡，应经常摇动试管。 3.到时间后，在乙组试管中加入甲烯蓝溶液1~2滴，并用微量注射器取各试管糖液少许，将注射器插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出一滴蓝色溶液，并观察蓝色小液流的

生理指标测定

生理指标测定_16种 1、冻害指数——3~5株观察形态【４种常绿水生鸢尾抗寒性的初步研究】张京，2012 李刚，姜卫兵，翁忙玲，等．木兰科６种常绿树幼苗抗寒性的初步研究［Ｊ］．园艺学报，２００７，３４（３）：７８３－７８６．描述叶色变化：在最冷月( 2月中旬) , 所有供试树种均有不同程度的冻害表现, 乐东拟单性木兰受冻害最轻,只有部分植株的少量叶片有些许水渍状, 大部分植株完好无损, 冻害指数为041, 基本不受冻害;阔瓣含笑也长势良好, 有少部分叶片出现褐色水渍状, 冻害指数为14, 受轻度冻害; 金叶含笑受到了中度水平的冻害, 部分植株的叶片整个叶面呈现红褐色水渍状, 冻害指数为25; 红花木莲、醉香含笑和观光木受到了重度冻害, 大多数植株的部分叶片呈焦黄、褐色脱落, 有的整个植株呈萎蔫状,长势非常差, 冻害指数分别为3.2、3.9、4.3. 2、相对含水量叶片相对含水量采用饱和称重法［21］测定。选取各处理部位一致、成熟完好的叶片迅速称其鲜重，再用蒸馏水浸泡8~24 h，使组织吸水达到饱和状态，取出后吸去表面水后立即称其饱和重，然后在105 ℃下杀青30min，在80 ℃下烘干至恒重（1h~24h），放在干燥器中冷却，称其烘干重。根据公式计算:LRWC( %) = [ (鲜重－干重) /(饱和重－干重) ] × 100%

3、光合参数（光合仪测定）光合速率、CO2浓度、光合有效辐射、叶绿素或用95%乙醇浸泡法，浸泡4~5d，测定叶绿素。《植物生理生化实验原理和技术》 4、膜质过氧化：相对电导率（略）、MDA MDA（丙二醛）的测定试剂：三氯乙酸10% （TCA 溶液）：称取100g溶于1L 蒸馏水中； 0.6％硫代巴比妥酸溶液（6%TBA）：1.8g溶于300ml TCA 溶液中（加热溶解）称取植物叶片0.3克, 先加入2ml TCA和少量石英砂研磨至匀浆，再加入4ml 10%三氯乙酸(TCA)进一步研磨（总体积为6ml），然后以4000g离心10min, 取上清液待测。吸取离心的上清液2ml(对照加2ml蒸馏水)，加入2ml 0.6% TBA，混匀物于沸水浴上反应15分钟，迅速冷却后再离心(在冰箱中冷却较快)。取上清液测定在532，600和450nm波长下比色。公式C MDA (nmol L-1)＝[(A532－A600)-0.0571×(A450-A600)]/0.155计算MDA量（排除多糖干扰），用每克干（鲜）重中MDA的量表示MDA的含量，单位μmol g-1干（鲜）重或nmol g-1干（鲜）重。 1、含量计算双组分光光度计法：已知蔗糖与TBA反应产物在450nm和532nm波长下的比吸系数分别为 85.40,7.40；MDA与 TBA显色反应产物在450nm波长下无吸收，其吸收系数为0，532nm下比吸收系数为155，根据双组分光光度计法建立方程组，计算公式如下： C 1（mmol/L）=11.71 D 450 C 2 =[6.45(D 532 —D 600 ) — 0.56 D 450 ]X提取液总体积/测定时用的提取液体积*样品鲜重 C 1:可溶性糖的浓度, C 2 为MDA的浓度, D 450 D 532 D 600 分别代表450,532,600nm下的消光度值. 参：Brege J G.Microsomal lipid peroxiodation. Methods in Ezymmology.1978,52:302-306 J.G. Buege and S.D. Aust, Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol.52(1978), pp. 302–306. 注: 沸水浴时,可使用小试管,然后上部用保鲜膜包扎.(如橡皮筋) 附4.1 MDA、可溶糖含量—硫代巴比妥酸加热显色法【原理】植物遭遇逆境胁迫或衰老过程中，由于自由基、活性氧的积累引起膜脂过氧化，产生脂质自由基，进一步诱发膜脂连续过氧化并导致蛋白质交联变性，而引起细胞损伤或死亡。MDA 是膜脂过氧化的最终产物，通过其含量的测定可了解膜脂氧化伤害的程度，比较不同植物抗逆性的差异。在酸性和高温条件下，MDA可与硫代巴比妥酸（TBA）反应，生成红棕色的产物三甲川（3，5，5-三甲基恶唑2，4-二酮）。该产物在532nm处有最大吸收峰，测定反应产物在532nm处的光密度值，可计算出MDA含量。但植物组织中的可溶性糖亦与TBA产生颜色反应，其产物对532nm 光的吸收干扰测定。采用双组分光光度法及其计算式，可排除干扰，计算出MDA的含量。【器材】分光光度计离心机水浴锅研钵剪刀试管

废水水质测定方法

废水水质测定方法（1）TP的测定实验中主要考察的水质指标是水中磷的含量，其分析方法严格按照《水和废水监测分析方法（第四版）进行，采用钼酸盐分光光度法测定（GB-11893-89）。实验的测定的原理是：在酸性的条件下，正磷酸盐与钼酸铵、酒石酸锑氧钾反应，生成磷钼杂多酸，被还原剂抗坏血酸还原，则变成蓝色络合物，通常成为磷钼蓝。在测定中需要的试剂包括： ①（1+1）硫酸； ②10%抗坏血酸溶液：溶解10g抗坏血酸溶于水，并稀释至1000mL； ③钼酸盐溶液：溶解13g钼酸铵于100mL水中，溶解0.35g酒石酸锑氧钾于100mL水中，在不断的搅拌下，将钼酸铵溶液徐徐加到300mL（1+1）硫酸，加酒石酸锑氧钾溶液并且混合均匀。储存在棕色的玻璃瓶里在4℃保存； ④浊度-色度补偿液：混合两份体积的（1+1）硫酸和一份体积的10%抗坏血酸溶液； ⑤磷酸盐储备液：将优级纯磷酸二氢钾于110℃干燥两个小时，在干燥器中放冷。称取 0.2197g溶于水，移入1000mL容量瓶中，加（1+1）硫酸5mL，用水稀释至标线。此溶液每毫升含有50.0ug磷（以P计）； ⑥磷酸盐标准溶液：吸取10.00mL磷酸盐储备液于250mL容量瓶中，用水稀释至标线，此溶液每毫升含2.00ug磷，临用时现配。测试的主要步骤包括： ①标准曲线的绘制：取数支50mL具塞比色管，分别加入0、0.5、1.00、3.00、5.00、 10.0、15.0mL，加水至50mL。向比色管加入1mL10%抗坏血酸溶液，混匀。30s后加2mL钼酸盐溶液充分混匀，放置15min。然后用10mm或者30mm比色皿，在700nm波长处，以零浓度溶液为参比，测量吸光度。本实验中所绘制的标准曲线如图2-1：