基因芯片技术筛选人不同发育阶段表皮干细胞差异表达基因的研究
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基因芯片技术筛选人不同发育阶段表皮
于细胞差异表达基因的研究
蓝蔚刘德伍李国辉毛远桂陈桦易先锋王联群彭燕钟清玲
【摘要】目的分析人不同发育阶段表皮干细胞基因表达变化特征，探讨其可能的生物学意
义。方法收集胎龄２８～３２周胎儿、４一１２岁少儿、３５—５５岁成人３组正常皮肤组织标本，每组１０
例。采用胰蛋白酶和乙二胺四乙酸联合消化法分离表皮，Ⅳ型胶原快速黏附法分离、纯化表皮干细
胞，免疫细胞化学染色法行整合素Ｂ．、角蛋白１９单克隆抗体检测鉴定。ＴｒｉｚｏＩ一步法分别提取各组
细胞总ＲＮＡ，琼脂糖甲醛变性凝胶电泳质检。制备探针并与表达谱芯片进行杂交，扫描芯片荧光信
号图像。对芯片图像进行分析，以２倍差异表达值筛选差异表达基因。选择明显上调或下调的基因，
用实时ＲＴ—ＰｃＲ技术进一步验证相关基因。结果与少儿组比较，成人组差异表达基因１８０８个，
其中上调的基因１０８９个、下调的基因７１９个，已知基因１４６２个、未知基因３４６个。少儿组样本与胎
儿组比较，差异表达基因４５３４个，其中上调的基因１７８３个、下调的基因２７５１个，已知基因３５７７个、
未知基因９５７个。根据基因功能分类，成人组与少儿组差异表达基因可分为１２８类，少儿组与胎儿组
差异表达基因可分为２１６类。１１０４个基因在胎儿组、少儿组与成人组样本中呈持续差异表达，根据
基冈功能分为３２类。实验检测到持续差异表达基因中，有９４个差异表达基因呈持续上调状，７５个
差异表达基因呈持续下调趋势。实时ＲＴ—ＰＣＲ验证结果与芯片筛选结果一致。结论体外培养的
胎儿、少儿与成人表皮干细胞基因表达谱有明显不同，其差异可能与不同发育阶段人表皮干细胞的增
殖分化能力及皮肤创伤修复能力不同密切相关。
【关键词】表皮；干细胞；基因；芯片分析技术；发育
Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇｏｆｄｉ仃ｅｒｅｎｔｉａＩｅｘｐｒｅｓｓ沁ｎｇｅｎｅｓｏｆｈｕｍａｎｓｋｉｎｅｐｉｄｅｒｍａｌｓｔｅｍｃｅＵｓａｔｄ州ｋｒｅｎｔｄｅｖｅＩｏｐ－
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ＤＯＩ：ｌＯ．３７６０／ｃｍａ．ｊ．ｉｓｓｎ．１００９－２５８７．２０１１．０１．００８
基金项目：国家自然科学基金（３０５６００５８）；江西省科技厅重大科技招标项目（２００６０４）
作者单位：５１０９７０广州．广东省Ｔ伤康复医院烧伤康复科（蓝蔚、易先锋）；南昌大学第一附属医院烧伤科（刘德伍、李国辉、毛远桂、陈桦、王联群、彭燕、钟清玲）
通信作者：刘德伍，３３０００６。Ｅｍａｉｌ：ｄｅｗｕｌｉｕ＠１２６．ｃｏｍ，电话：０７９Ｉ．８６９２５３９
?再生医学?
万方数据
万方数据
ｏＳｐｉｎ＠ＥｘｔｒａｅｔⅡ试剂盒纯化。以随机Ｐｒｉｍｅｒ为引物对反转录互补ＤＮＡ进行ＫＬＥＮＯｗ酶标记，分别用Ｃｙ３一ｄｃＴＰ、ｃｙ５一ｄＣＴＰ标记人类基因参照与胎儿组、少儿组和成人组样品，标记产物用ＰｃＲＮｕｃｌｅ—ｏＳｐｉｎ＠ＥｘｔｍｃｔⅡ试剂盒纯化，纯化后抽干。
１．７芯片杂交与扫描
标记的ＤＮＡ溶于８０斗Ｌ杂交液［含３倍浓缩的枸橼酸钠盐缓冲液（ＳＳＣ）、２ｇ／Ｌ十二烷基硫酸钠（ＳＤＳ）、５倍浓缩的Ｄｅｎｈａｒｔ溶液、体积分数２５％甲酰胺］中，于４２℃杂交过夜。用４２℃含２ｇ／ＬＳＤＳ、２倍浓缩的ｓＳＣ的液体洗涤５ｍｉｎ，在２倍浓缩的ＳｓＣ中室温洗涤５ｍｉｎ。玻片干后用Ｌｕｘｓｃａｎ１０Ｋ—Ａ型双通道激光扫描仪扫描。采用ＬｕｘＳｃａｎ３．０图像分析软件对芯片图像进行分析，将图像信号转化为数字信号。
１．８数据检测与分析
对芯片上的数据采用ＳＴＡＴＡ１１．Ｏ软件，用Ｌｏｗｅｓｓ方法进行归一化。根据Ｃｙ５和Ｃｙ３总体信号的平均值对各芯片进行片间线性校正，使各张芯片的平均值相同。根据信号强度和图像质量对基因进行标记，删除荧光信号弱的基因以及芯片上的阳性对照、阴性对照、外参照等冗余数据。胎儿组、少儿组与成人组探针标记为ｃｙ５荧光素（呈红色），人对照探针标记为ｃｙ３荧光素（呈绿色），将少儿组与胎儿组、成人组与少儿组芯片结果两两叠加，筛选胎儿组、少儿组与成人组之间表皮干细胞的差异表达基因。判定基因有差异表达的标准为：表达差异值即Ｃｙ５／Ｃｙ３值大于２或小于０．５。在分子注释系统（ＭｏｌｅｃｕｌｅＡｎｎｏｔａｔｉｏｎＳｙｓｔｅｍ）中，对筛选出的差异表达基因进行Ｇｏ数据库系统分类统计分析，按基因功能进行分类。
１．９对芯片筛选的差异表达基因ＴｕＢＧｃＰ３和ＦＯＳＬ２进行实时荧光ＲＴ－ＰＣＲ验证分析
根据基因芯片检测结果，选取上调表达差异基因ＴｕＢＧＣＰ３和下调表达差异基因ＦＯｓＬ２，以ＧＡＰＤ为内参照，在胎儿组、少儿组与成人组样品中分别进行实时荧光ＲＴ—ＰＣＲ定量检测。引物设计基本要求：ＰｃＲ产物１５０～２５０ｂｐ，退火温度６０℃，根据美国国立生物技术信息中心（ＮＣＢＩ）数据库（下同）ＧｅｎｅＢａｎｋ中ＴｕＢＧｃＰ３和ＦＯＳＬ２序列，选定目标片段，并由此设计合成引物，引物序列见表ｌ。以反转录产物连续行１０倍梯度稀释，用于制备标准曲线样品。采用荧光定量ＰＣＲ仪分别扩增目的基因和内参照基因，测定标准嗌线。根据扩增结果计算待测基因循环阈值（ｃｔ），用ｃｔ值表示样本中测定模板的起始拷贝数。Ｃｔ值越小，起始拷贝数越大；Ｃｔ值越大，起始拷贝数越小。根据标本的Ｃｔ值和标准曲线计算目的基因与ＧＡＰＤ含量，以胎儿组为对照，目的基因表达水平以少儿组／胎儿组、成人组／胎儿组进行表示。
表１实时荧光ＲＴ．ＰｃＲ引物序列
基因名称引物序列扩增大小（ｂｐ）
注：Ｐ。为上游引物，Ｐ２为下游引物
２结果
２．１表皮干细胞生物学特性
体外培养的胎儿组、少儿组与成人组表皮干细胞形态相似，胎儿组（图１—３）和少儿组细胞克隆形成速度较快，克隆集落较大。整合素Ｂ．、角蛋白１９免疫细胞化学染色显示，细胞均呈棕黄色阳性表达，符合表皮干细胞特征＂１（图４，５）。
图ｌ经贴壁法筛选的人胎儿表皮干细胞呈圆形，细胞
体积较小．折光性较强倒置相差显微镜×２００
圈２人胎儿表皮干细胞培养３ｄ时呈明显克隆性生长
倒置相差显微镜×２００
万方数据
万方数据
生堡缝垡壅查垫！！生！旦箜！！鲞笙！塑垦！也』！！婴！：！！！坐！翌垫！！！！！！：！！坐：！
表２３组表皮干细胞中持续差异表达基因的功能分类
基因功能分类差异基因数基因功能分类差异基因数未折叠蛋白结合５３热休克蛋白结合６
ＲＮＡ结合７３氧化还原酶滔性２ｌ
核苷酸结合１６３肌动蛋白结合ｌＯ
ＡＴＰ结合８６钙离子结合３７
锌离子结合９８转移酶括性３ｌ
蛋白结合２５４结构分子活性１０
ＤＮＡ结合１７５水解酶活性４９
鸟苷三磷酸结合４ｌ受体活性１５
鸟苷三磷酸酶活性１５信号转导活性２５
序列特异性ＤＮＡ结合２３核酸结合１２
ＭＡＰＫ磷酸酶活性３ＲＮＡ聚合酶Ⅱ转录因子活性１５
ＭＡＰＫ活性２金属离子结合ｌｌ
转录因子活性４７氧化还原酶活性１２
转录激活活性３９镁离子结合６
转录辅阻遏活性１３翻译起始因子活性１９
锰离子结合８ＥＣＭ结构组成２
２．５实时ＲＴ．ＰｃＲ验证分析结果
从差异基因中选择ＴｕＢＧｃＰ３、Ｆ０ｓＬ２基因进行验证，实时ＲＴ—ＰＣＲ产物电泳检测反应特异性良好。胎儿组、少儿组与成人组样本中ＴｕＢＧｃＰ３表达量持续增高，ＦＯＳＬ２表达量持续降低，与芯片筛选结果一致。见图８，表３。
图８表皮干细胞差异基因实时ＲＴ－ＰｃＲ产物电泳检测结
果。ｌ一３分别以胎儿组、少儿组和成人组样品的第一链互
补ＤＮＡ（１８ｔ．ｃＤＮＡ）为模板，扩增ＧＡＰＤ基因；４—６分别以胎
儿组、少儿组和成人组样品的ｌｓｔ—ｃＤＮＡ为模板，扩增ＴＵＢ?
ＧｃＰ３基因；７—９分别以胎儿、少儿和成人样品的ｌｓｔ—ｃＤＮＡ
为模板，扩增ＦＯｓＬ２基因；Ｍ为ＭａｒｋｅｒＤ１２０００
表３表皮干细胞差异基因实时ＲＴ?ＰＣＲ验证
注：“一”表示无需统计；各组相对表达值以胎儿组为对照
３讨论
本研究利用基因芯片技术筛选胎儿、少儿与成人表皮干细胞差异表达基因。结果显示，随着人的生长发育，表皮干细胞的基因表达发生了较大改变，表皮干细胞在人体不同时期所处的状态受到多种基因的表达调控。其中“０４个基因在胎儿组、少儿组与成人组样本中呈持续差异表达，根据其表达蛋白的功能分为３２类，涉及蛋白质翻译、能量合成和ＤＮＡ复制等。
本研究结果显示，在胎儿组、少儿组与成人组中表达持续七调的基因共计９４个，主要分为以下几类：（１）核苷酸结合蛋白基因，如ＤＹＮｃｌＨ１、蛋白激酶Ｃ１（ＰＲＫｃｌ）。ＤＹＮｃｌＨｌ属于动力蛋白，参与微管为基础的运动及染色体的定位与细胞分裂。参与蛋白定向膜、细胞骨架组织的生物发生，确立和（或）维持表皮细胞极性及组装和维持细胞间连接’６１。（２）蛋白质折叠结合相关基因，如ＴｕＢＧＣＰ３、热休克蛋白Ｅｌ（ＨｓＰＥｌ）。ＴｕＢＧＣＰ３与１微管蛋白结合，参与微管成核和细胞骨架结构的形成。ＨＳＰＥｌ参与蛋白质的折叠与伸展、多聚复合体的组装。（３）锌离子结合蛋白基因。（４）ＡＴＰ结合蛋白基因。上调基因主要为细胞骨架结构蛋白基因。细胞骨架是指真核细胞中的蛋白纤维网架体系＂１。它不仅在维持细胞形态和保持细胞内部结构的有序性中起着重要作用，而且与细胞的胞质运动、物质运输、能量转换、信息传递、基因表达、分裂和分化等生命活动密切相关。
在胎儿组、少儿组与成人组中表达持续下调的基因共计７５个，主要包含以下几类：（１）鸟苷三磷酸（ＧＴＰ）结合蛋白基因如ＥＦＴｕＤ２，它含有延伸因子ＴｕＧＴＰ结合域２，参与核ｍＲＮＡ剪接、蛋白生物合成以及ＲＮＡ剪接。（２）序列特异性ＤＮＡ结合蛋白基因，如ＦＯＳＬ２、Ｅ７４样因子４（ＥＬＦ４）。ＦＯＳＬ２属于转录因子激活蛋白１家族成员，它对细胞因子、生长因子、感染或致癌刺激等生理或病理信号产生应答，调节基因的转录，参与细胞的增殖、分化等过程。ＥＬＦ４参与细胞增殖，正调控转录自ＲＮＡ聚合酶Ⅱ启动子，调控转录¨’。（３）ＭＡＰＫ、ＭＡＰＫ３、ＭＡＰＫｌ３、双重特异性磷酸酶１（ＤＵＳＰｌ）Ｈ１和ＤＵＳＰ２。ＤＵＳＰｌ和ＤＵｓＰ２参与蛋白、氨基酸的去磷酸化，抑制ＭＡＰＫ，促使细胞分化。ＭＡＰＫ３和ＭＡＰＫｌ３参与调控细胞周期及蛋白、氨基酸磷酸化。（４）核仁蛋白家族基因的ＮＯＬＡ２和ＮＯＬＣｌ，参与核糖体ＲＮＡ加工，调控细胞周期和有丝分裂。（５）ＥＣＭ结构蛋白基因，如ＷＮＴ３和ＷＮＴ４。ＷＮＴ蛋白是控制细胞和组织生长的分泌信号分子，可以激活Ｂ连环蛋白（Ｂ—ｃａｔｅｎｉｎ）。
目前对于ＷＮＴ信号传导通路的研究已经取得万方数据
万方数据
基因芯片技术筛选人不同发育阶段表皮干细胞差异表达基因
的研究
作者：蓝蔚， 刘德伍， 李国辉， 毛远桂， 陈桦， 易先锋， 王联群， 彭燕， 钟清玲， LAN Wei， LIU De-wu， LI Guo-hui， MAO Yuan-gui， CHEN Hua， YI Xian-feng， WANG
Lian-qun， PENG Yan， ZHONG Qing-ling
作者单位：蓝蔚,易先锋,LAN Wei,YI Xian-feng(广东省工伤康复医院烧伤康复科,广州,510970)， 刘德伍,李国辉,毛远桂,陈桦,王联群,彭燕,钟清玲,LIU De-wu,LI Guo-hui,MAO Yuan-
gui,CHEN Hua,WANG Lian-qun,PENG Yan,ZHONG Qing-ling(南昌大学第一附属医院烧伤科)刊名：
中华烧伤杂志
英文刊名：CHINESE JOURNAL OF BURNS
年，卷(期)：2011,27(1)
被引用次数：2次
参考文献(10条)
1.Zanet J;Pibre S;Jacquet C Endogenous Myc controls mammalian epidermal cell
size,hyperproliferation,endoreplication and stem cell amplification[外文期刊] 2005
2.Mangrum WI;Farassati F;Kadirvel R mRNA expression in rabbit experimental aneurysms:a study using gene chip microarrays 2007(05)
3.王联群;刘德伍;蓝蔚人端粒酶反转录酶基因转染对人胎儿表皮干细胞增殖的影响[期刊论文]-中华创伤杂志2010(03)
4.Haimov-Kochman R;Fisher SJ;Winn VD Modification of the standard Trizol-based technique improves the integrity of RNA isolated from RNase-rich placental tissue 2006(01)
5.刘德伍;黄培信;毛远桂不同发育阶段人表皮干细胞端粒酶反转录酶表达的比较[期刊论文]-中国组织工程研究与临床康复 2007(50)
6.Rohr S;Bit-Avragim N;Abdelilah-Seyfried S Heart and soul/PRKCi and nagie oko/Mpp5 regulate myocardial coherence and remodeling during cardiac morphogenesis[外文期刊] 2006(01)
7.Fukui Y;De Lozanne A;Spudich JA Structure and function of the cytoskeleton of a Dictyostelium myosin-defective mutant 1990(02)
https://www.wendangku.net/doc/c611923236.html,corazza HD;Yamada T;Liu Y The transcription factor MEF/ELF4 regulates the quiescence of
primitive hematopoietic cells[外文期刊] 2006(03)
9.Liu YX;Wang J;Guo J DUSP1 is controlled by p53 during the cellular response to oxidative stress 2008(04)
10.Merrill BJ;Gat U;DasGupta R Tcf3 and Lef1 regulate lineage differentiation of multipotent stem cells in skin 2001(13)
引证文献(2条)
1.黄跃生组织再生是烧伤组织修复的重要手段[期刊论文]-中华烧伤杂志 2011(1)
2.李勇铁.刘德伍.刘德明.毛远桂.彭燕.宁璞.胡翔.邹萍.邹永红.余群洪人诱导性多潜能干细胞向表皮样干细胞分化的实验研究[期刊论文]-中华烧伤杂志 2012(4)
本文链接：https://www.wendangku.net/doc/c611923236.html,/Periodical_zhsszz201101008.aspx