外周血造血干细胞最佳采集时机的快速判断方法

外周血干细胞采集技术及护理

外周血干细胞采集技术及护理 (一) 采集术前准备及护理 (1) 向供者做必要的解释使之有心理准备；要求供者注意营养摄入，应用高蛋白、 高热量、高维生素饮食，于采集前晚和当日晨改用低脂餐；沐浴清洁皮肤并 更衣，上衣袖应宽松。 (2)应用重组人粒细胞集落刺激因子(G-CSF)可以有效地达到骨髓或外周血造血干细 胞的扩增。注意观察应用G-CSF的副作用，常见有低热(一般38C 以下)骨骼 肌肉疼痛、乏力、食欲不振、头痛等，轻者不必做处理，严重的给予对症治 疗。 (二)技术配合及护理 ( 1 ) 外周血干细胞采集技术可根据供者的情况在床边进行。 ( 2 ) 主要设备为血液成分分离机、专用导管，另备抗凝剂、生理盐水、血压计、听诊器、急救器材和药品。治疗盘内盛皮肤消毒物品、无菌棉球和纱布、止血带、胶布。 ( 3 ) 供者清洁静脉穿刺部位皮肤，排空二便，通常采用平卧，测量血压、脉搏及呼吸。 ( 4 ) 选择两处静脉穿刺部位(分别为采血和回输血通道)以肘部粗而直的大静脉最适宜。下肢静脉、颈静脉亦可作为回输通道。 ( 5 ) 经皮肤消毒，用16 号穿刺针头依次进行两处静脉穿刺，首先穿刺的一侧连接回输导管，次之连接采血导管。妥善固定针头，局部覆盖无菌纱布。 ( 6 ) 医生操纵血液成分分离机，将供者身高、体重、红细胞比积等数据输入机器电脑，自动调节采集分离血液成分的速度，匀速加入抗凝剂。 ( 7) 供者采血侧上臂间断使用止血带或血压计袖带打气加压，同时手握海绵芯子，反复一松一紧直到采集完毕。 ( 8 ) 遵医嘱补钙。

（ 9 ）随时观察血压、脉搏、呼吸及其有无不适感，注意不良反应和合并并发症。 （10）采集完毕，静脉穿刺局部以无菌棉球按压5min 以上，用无菌纱布保护。供者静卧，继续观察。 （11）外周血干细胞一次采集量一般200?300ml，由检验人员进行细胞计数 （12）采集后嘱患者多饮水，以促进抗凝剂代谢。 【不良反应与并发症及其处理原则】 （一）空气栓塞其原因为采血管连接不严密或回输管空气未完全排除。无论是怀疑还是确定空气进入静脉，应立即压迫穿刺静脉的近心端，拔除针头扎紧止血带，使该静脉的血液回流完全阻断，取左侧卧头低足高位并给予氧气吸入。 （二）感觉异常和肌肉痉挛其原因为枸橼酸钠抗凝剂的应用，降低了血清钙离子 水平。立即减慢回输速度，口服钙剂或静脉补充钙剂。 （三）头晕、恶心及不适其原因为过度紧张、饥饿、低血糖、低血压、过饱、疲 劳过度、睡眠不足、体质虚弱或采血过快。减慢采血速度，去枕平卧；给予解释消除其顾虑及紧张心理；针刺内关、合谷、涌泉穴，前额冷敷等。 （四）血肿其原因为静脉穿刺穿透血管壁，血溢出于皮下，或拔针后局部针眼处压迫力度不够，压迫面积太小，按压时间太短，或拔针后才松解止血带，或袖口太紧，以致静脉穿刺处血外溢于皮下。终止采集技术操作，先松止血带放松袖口。 针眼处用无菌棉球。多个手指，大面积压紧血肿局部10min 以上。将有血肿的手臂举高至心脏水平以上，促使血液回流、吸收及消散，并可局部做冷敷。 （五）局部感染其原因为静脉穿刺局部皮肤洗涤和消毒不严，采集技术中无菌技术操作规程执行不力或针头污染或采集后针眼处未保护好。局部红、肿、热、痛，感染初期可做热敷或用金黄散湿敷；局部感染破溃者定时换药；按医嘱应用抗生

血液标本的采集方法及注意事项(陈觉)

血液标本的采集方法及注意事项 生化检验用的血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1、分类： ①全血标本。需加抗凝剂，用作血沉、血常规和测定血液中某些物质含量，如血氨、血糖、尿素氮、肌酐、尿酸、肌酸等。 ②血清标本，使用普通干燥试管，用于血清酶、脂类、电解质、肝功能等测定 ③血培养标本。查找血液中的病原体。 2、评估：病人的诊断。明确检查项目、采血量、抗凝剂。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血种类和试验用途。生化检测为红色或者黄色，全血标本为紫色，主要检测血常规、血型、高血压四项、糖化血红蛋白。凝血测定为蓝色，红细胞沉淀率为黑色。绿色主要用于血流变检测、染色体检测和微量元素。 3、准备： ①病人准备。告知检查项目及意义，如肝功能、空腹血糖等检查宜清晨空腹抽血，通知病人禁食，避免因进食而影响检验结果（应清晨空腹时血液中的各种化学成分处于相对恒定状态）。采血前患者情绪应保持稳定。避免剧烈运动，匆忙赶到门诊的患者，应至少休息15分钟后再抽血。避免在用药四小时内抽血（观察药物治疗效果除外）。

②物品准备：化验单、试管、采血针、酒精灯（培养标本）等。 ③采血前要核对病人姓名、年龄、性别、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。 ④采血时间：理想的采血时间是早上7：00-8:00，血培养标本应在发热初期或者发热高峰期采血。 4、注意事项 （1）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。（2）采血过程中必须严格无菌技术操作，以免将污染菌误以为病原菌。 （3）采血的体位：坐位或卧位对检验结果无太大的差异，站立时，血液中成分浓缩，部分激素、蛋白、酶类、钙、镁结果偏高。 （4）避免在水肿、血肿、有烧伤或瘢痕部位，手臂上有导管、瘘管、或者血管移植等部位采血。若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 (5) 采血时，在静脉穿刺上方约6cm外扎止血带，用消毒液消毒穿刺部位，以进针点为中心，消毒范围大于5cm，30秒待干后采血。穿刺针头斜面向上，穿刺角度为15°~30°，穿刺部位采血部位通常是前臂肘部正中静脉。 （6）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （7）采集血培养标本采血量为5ml，防止标本污染，血培养标本应在用抗生素之前采集，已用抗生素应在检验单上注明。亚急性细菌性

生化检验 化学检验血液标本采集和处理

生化检验化学检验血液标本采集和处理 临床检验的目的是为临床提供准确可靠的实验诊断依据。为了保证实验数据的可靠性，在检验医学中必须坚持全面质量控制（total quality control，TQC.即指对影响临床检验结果可靠性的各方面因素及各个环节进行质量控制）和全过程质量控制（即指对实验工作的全过程进行质量控制和质量管理）。全过程质量控制包括实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制。在实验误差中实验前误差占70%，因而实验前质量保证对减少实验误差显得尤其重要。 实验前质量保证包括病人准备、标本收集、处理、贮存和运输等，因而能否正确地、规范化地采集和处理标本，是能否做到实验前质量保证的重要内容。在临床化学检验中，血液标本是最多应用的生物体液，血液标本因素是影响临床化学分析准确性和可靠性的最重要、最直接的因素。我国从我们的国情出发，参考了美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）的有关规定，对临床化学检验血液标本的有关问题也提出了相应的要求。我国卫生标准技术委员会临床检验标准专业委员会（CCCLS）已对“临床化学检验血液标本的收集与处理”提出了“中华人民共和国卫生行业标准”，旨在通过标本方面的质量控制达到临床化学分析的质量保证。目前该“标准”文件正在待批中。 一、临床化学检验血液标本的定义 临床化学检验血液标本是指为完成某项或多项临床化学检验项目而采集的一定量的血液，包括抗凝及非抗凝血。 二、血液标本的采取 （一）采取部位 1.静脉采血：应用最多的采血方式。常用的静脉为肘前静脉、腕背静脉，小儿和新生儿有时用颈静脉和前囟静脉。 2.动脉采血：主要用于血气分析时。常用的动脉为股动脉、肱动脉、桡动脉和脐动脉。 3.毛细血管采血：适用于仅需微量血液的试验或婴幼儿。常用部位为耳垂、指端，小儿有时为大趾和足跟。采血针刺入皮肤深度应为2mm 医学教.育网搜集（＜2.5mm），采血局部应无炎症、水肿等。 （二）标本类型 临床化学检验血液标本分为血清、血浆和全血3种。血清和血浆为临床常用，除前者不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分无差异；全血只有在红细胞内成分与血浆成分相似时才用；血气分析、血红蛋白电泳等时用全血，一般临床化学分析多不用全血。 三、全血处理为血清或血浆 血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清（浆）从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。 （一）离心前阶段

血样样本的采集和处理

血液样本的采集和处理 血液样本的采集和处理 (1) CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理 (4) 血液样本的采集和处理 一、血清样品的采集和处理 1、用一次性注射器（或真空采血管）抽取一定量静脉血，室温下自然放置1～2h，待血液凝固、血块收缩后再用3000r/min离心15min，吸出血清于血清管内备用。 2、如用滤纸片采样，则手指或耳垂局部严格进行消毒，在刺破皮肤后，迅速把滤纸片沾上，切勿让血液滴落在其他物体表面造成污染。采血后要待血样干燥后再包装送检。 二、抗凝血样品采集和处理 1、用加有抗凝剂的真空采血管（或一次性注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管），反复轻摇，分离血浆和血细胞备用。 2、应根据实验要求选用适当的抗凝剂，如CD4+ /CD 8+T淋巴细胞测定可选用K3EDTA或肝素或枸橼酸钠，HIV病毒分离、核酸定性/定量检测可选取K3EDTA或枸橼酸纳。 3、用于核酸定性检测时，采集的抗凝全血应在4～8h内分离PBMC和血浆，否则应在24～48h内分离血浆和血细胞。

三、采集样品注意事项 1、采集样品原则上应按临床采血技术规范操作（试剂盒说明书有特殊要求除外）。 2、采集样品时应注意安全，建议采用真空采血管及蝶形针具（有条件者可用持针器），以避免直接接触血液；直接接触HIV感染者/艾滋病（AIDS）病人血液/体液的操作，应戴双层手套。 四、样品的保存 1、用于抗体检测的血清或血浆样品，应存放于-20℃以下，短期（一周）内进行检测的样品可存放于2-8℃。 2、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下，进行病毒RNA检测的样品如需存放3个月以上应置于-80℃。 3、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期存放，样品采集时间超过48h则不可检测。 五、样品的运送 1、实验室间传递的样品应为血清和血浆，除特殊情况外一般不运送全血。 (1) 第一层容器：装样品，要求防渗漏。样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。在试管的周围应垫有缓冲吸水材料，以免破碎。随样品应附有送检单，送检单应与样品分开放置。 (2) 第二层容器：要求耐受性好，防渗漏，容纳和保护第一层

血常规标本采集与处理程序

血常规标本采集与处理程序 1．目的 规范血液常规检查标本的采集与处理方法，减少分析前因素对检验结果的影响，保证检验质量。 2．适用范围 适用于各种血液常规检测标本的采集。 3．职责 3.1 门诊和临床各科护士、门诊检验工作人员负责标本的采集。 3.2 临床护士或检验科后勤组人员负责标本的运送。 3.3 检验科负责标本的接收和处理，负责指导临床各科室如何正确采集标本。4．程序 4.1 标本采集前病人的准备 4.1.1 避免剧烈运动及情绪紧张。建议取血前采取坐位5分钟。 4.2 标本采集 4.2.1 静脉采血法 4.2.1.1器材：真空采血针、含EDT A·K2（3.0-4.0mg）真空采血管、消毒液、消毒棉球、压脉带。 4.2.1.2标本采集部量：2.0ml。 4.2.1.3采血部位：手臂肘部静脉。 4.2.1.4 操作程序 a. 患者坐位或卧位，扎上压脉带消毒皮肤。嘱病人握紧拳头，暴露静脉。 b.操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持真空采血针，与皮肤呈30度角的位置迅速刺破皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁进入静脉腔中，见回血后，解开压脉带，将针头顺势深入少许。将采血针另一端插入真空采血管中。 c. 利用真空负压，血液自动注入抗凝管直至所需血量。嘱患者松拳，用无菌干棉球压住伤口，拔出针头。 d. 立即将采血管轻轻颠倒5-8次，使其充分抗凝，并贴上对应病人及检测项目信息的条码。2小时内送检。

4.2.1.5 注意事项 a. 禁止在输液手臂同侧采血，同时在申请单上注明“输液时采血”。 b. 止血带使用时间应少于1分钟，以免引起血液淤滞，血液成分的改变。 c. 防止溶血，避免采血管过度震荡。 e. 正确选择抗凝管并注意抗凝剂与血液的比例。 4.2.2 毛细血管采血法 4.2.2.1 器材：一次性采血针、微量吸管、小试管、玻片，75%乙醇棉球、消毒干棉球、无菌镊子。 4.2.2.2 采血量：20ul。 4.2.2.3采血部位：成人以左手无名指指端内侧为宜，半岁以上儿童以中指为好，半岁以下婴幼儿通常选择足跟或拇指采血。 4.2.2.4操作程序 a. 操作者轻轻按摩采血部位，使其自然充血，用75%乙醇棉球消毒局部皮肤，自然待干。 b. 紧捏刺血部位，用一次性采血针迅速刺破皮肤，深度约2-3mm。 c. 擦去第一滴血，吸取从穿刺处自然流出的血液或从远端向指尖方向轻轻挤压的血液20ul，迅速轻轻注入已加入稀释液的小试管里。 d.用无菌玻片沾取末梢血一滴推制血片一张，用消毒干棉球压住伤口。 4.2.2.5注意事项 a. 末梢采血时，挤压力不能过大，以免过多组织液混入。 b. 避开冻疮、发炎、水肿部位，以免影响结果。 4.3 标本的处理 4.3.1 检测前的标本处理 对临床标本进行验收，对有凝块、溶血、采血量不符合要求、无条码或无标识等不合格标本，按照《标本采集与管理程序》处理。合格标本，常温放置，4小时内完成检测。 4.3.2 检测后标本的处理 按照实验室规定，血常规标本保存3天，对超过保存期的标本，由实验室工作人员放置于专门的污物间废弃标本箱中，再由医院专门工作人员统一处理。

血液标本采集流程

31 血液标本采集流程 注意点： 1、根据医嘱采集标本，根据检验目的与要求确定采集时间、方法和试管，并通知患者准备。 2、落实双人核对检验项目、检验时间、试管、电子条形码上的科室、床号、姓名、年齡、 住院号。标本容器准备：应根据真空采血对照表准备核对试管。 3、应严格执行无菌操作，严禁在正在输液或输血的肢体或针头、输液或输血穿刺点上方、 皮管内采血标本，应在对侧肢体采血。 4、如同时采多个项目的标本，采血顺序：血培养→不含添加剂的试管→凝血标本管→其他 标本管，需抗凝的试管拔出后按要求轻轻摇匀。 5、凝血功能障碍患者拔管后按压时间延长至10 min.。 1、 采血的目的和配合方法。 2、 采血前后的注意事项。 需空腹采血应提前通知患者，避免因进食而影响检验 1、 核对床号、姓名、检验单检验项目、采血量、试管。 2、 选择合适的静脉、穿刺点，上止血带，常规消毒皮肤，嘱患者握拳。 3、 載手套→穿刺→固定头皮针→接采血真空试管→根据目的采集所需血量→反折针头，拔/换采血管→松止血带、松拳→迅速拔出头皮针→用干棉签按压穿刺点1~2min.→脱手套。 操作前准备 试管准备 1、 核对医嘱/执行本，检验单、患者。 2、 根据检查项目准备核对试管、检查试管质量并贴好试管上的标签，不能遮挡试管中的刻度。 1、 操作者着装整洁、洗手、載口罩，掌握正确采集血液标本的方法。 2、 操作用物准备齐全，环境符合操作要求。 1、 查对床号、姓名。 2、 患者病情、意识状态、生命体征、正在进行的治疗。 3、 肢体活动情况和静脉充盈情况。 4、 穿刺部位皮肤情况：有无水肿、结节、疤痕、伤口等。 5、 患者的心理状态，沟通、理解及合作能力，需求等。 1、 再次认真查对，询问并观察患者反应，交代注意事项。 2、 整理床单位及用物，医疗废物按有关规定处置。 3、 标本及时送检。 采血 评估 告知 整理送检

标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程

标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 4.1样本采集要求: 4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 4.1.2:采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:

(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 4.2运输要求:

造血干细胞分离培养方法

一造血干细胞分离 （一）小鼠骨髓采集与单个核细胞悬液的制备 1 HES(羟乙基淀粉)沉淀法 抽取髓液500 m L按4∶1比例加入HES，自然沉降红细胞后，分离上清。4℃400 g离心10 min得细胞沉淀物，以1 %白蛋白盐水液洗涤细胞2次。 2 percoll液密度梯度离心法 ①按体积比为(1.5～2)∶1在骨髓液中加入淋巴细胞分离液。4℃,1 5 00 r / min，离心20 min。取单个核细胞层，以1%白蛋白盐水液洗涤3次。 ②取鼠股骨和胫骨, 在两头关节处切开骨骼, 反复用培养基冲洗骨髓腔, 随后小心地逐滴将细胞悬液加在淋巴细胞分离液上, 2 000 r / min 离心20 min。吸取离心后相交液面处的白色细胞层即为单个核细胞。 3 Ficoll分离法 方法一在15ml分离管中加7.5ml比重为1.017的Ficoll液，缓慢移入等量骨髓细胞悬液，整体平衡后低温离心2000r/min×20min,吸取白细胞层，用RPMI1640液亲清洗后离心2000r/min×10min,取白细胞层加RPMI1640液到10ml制成造血干细胞悬液样本。 方法二取无菌离心管1支，预先添加3mlFicoll(与骨髓细胞悬液体积1:1)，用滴管取单细胞悬液3ml，沿离心管壁小心缓慢叠加于分离液面上，注意保持清楚的界面，室温下水平离心2000rpm×20分钟，（后续在冰上进行）用毛细吸管插到云雾层，小心吸取单个核细胞，置入另一短中管中，加入5倍以上体积的磷酸缓冲液PBS，1500rpm×10分钟，L-DMEM 洗涤细胞两次，每次以1000r/min离心10min，去上清液。（除第一步的室温离心外，其余为低温离心）。 取骨髓细胞悬液的方法是：取出大鼠腿骨将肌肉尽可能剔除，并用PBS缓冲液冲洗干净。在超净台中腿骨浸泡在PBS缓冲液中5min，之后在两头关节处切开骨骼, 反复用PBS 缓冲液冲洗骨髓腔，从而得到骨髓细胞悬液。 （二）Linc-- kit+造血干细胞的分离纯化。 去除Lin+细胞( 负筛选) : 带有生物素的混合抗体标记成熟细胞; 抗生物素的磁珠吸附抗体标记的成熟细胞, 包括T , B淋巴细胞、粒细胞、巨噬细胞以及它们的定向前体细胞; 细胞通过磁场不被柱子吸附的包括造血干细胞和骨髓间质干细胞。收集CD117+细胞( 正筛选)：带有CD117抗体的磁珠吸附CD117+细胞, 细胞通过磁场被柱子吸附的CD117+细胞(具体操作步骤参照M iltenyi公司MACS手册)。 （三）根据细胞表面CD34+抗原进行分离纯化 流式细胞仪检测骨髓CD34+细胞：取50μL细胞悬液, 加入2.5μL CD45- FITC和10μL CD34- PE充分混合, 避光孵育15 min。以PBS液洗涤并加多聚甲醛固定液450μL固定, 上机检测。

临床血液标本采集指南 (一医院资料)

临床血液标本采集指南 一、检验申请 规范填写检验申请单 项目填写齐全，用词规范、字迹清楚、避免涂改。不同标本类型最好分开申请对于被检者的特殊情况，应当在申请单上注明，供检验人员判断结果参考。 检验科要求检验人员加强与临床医护人员沟通，及时解决检验项目申请和送检标本存在的问题和疑问；对于不合格检验申请单和不合格送检标本按照“医学检验工作制度”进行登记、处理。对于漏填或错填申请科室的检验申请单，检验科一律禁止发送检验报告，必要时送交医务科处理。 二、病人准备 医护、检验人员指导病人做好准备 考虑饮食、运动、生理周期、疾病及药物等对检验结果可能产生的影响，指导病人正确采集标本。 (一) 控制饮食 （1）大多数检验项目都要求在早晨空腹采血，咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食。 （2）肝功、血脂、凝血等项目要求禁食12-16小时，且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁止高脂肪、高蛋白饮食。 （3）饮食对血脂检验影响重大，至少应当在抽血前的三天内注意保持正常饮食。

（4）在做内生肌酐清除率测定之前，待检者应禁食肉类3天，不饮咖啡和茶，停用利尿剂，实验前避免剧烈运动，饮足量的水。（二）避免药物影响 许多药物（如VitC、雌激素、降血脂药等）对检验结果尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响，抗生素应用将对微生物培养检验结果产生直接的影响。申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导，在对检验结果可能产生明显影响时，应当在检验申请单上注明，或以电话或其他方式告知相关检验人员。 举例：降血脂、避孕药、噻嗪类利尿剂、§-受体阻滞剂、免疫抑制剂、某些降压药、降糖药、胰岛素及其它激素制剂等可影响血脂检验结果；应根据药物特性，在作血脂检验前停药数天至数周。如不能停药，应记录用药情况，恰当评估药物及检验结果的影响。（三）避免运动影响 （1）剧烈运动可以使许多血液成分发生变化，甚至持续24小时以上，因此剧烈运动之后不能立即抽血；快步行走之后至少应休息10-15分钟后再抽血。 （2）应在平静状态抽血，避免情绪激动。 （四）注意生理差异 临床医生申请检验项目及评估检验报告时，应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期（如怀孕、月经）等因素对检验结果的影响，并给与必要指导。

标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 标本的来源，性质，采集方式不同，将直接影响临床检验结果的准确性。 1 血标本采集方法及注意事项 （1）采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，根据检验的不同要求，采血的时间也不同： 1）空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。 2）餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3）急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维 持3-6d。 4）血清淀粉酶起病后6～12小时开始升高，12～24小时达到高峰，一般持续3～5天后下降，超过500U（Somogy法）即有确诊价值。 5）留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 （2）采血部位 1）动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2）静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取 一次操作成功。 3）毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。（3）采血器材：a,注射器，B，真空采血器： （4）标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 1）全血：用抗凝剂。 2）血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。 3）血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。 （5）操作重点 1）止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。 2）当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。 3）注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4）操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5）有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。 尿标本采集方法及注意事项 方法： （1）导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送检。

血液标本采集方法

血液标本采集方法 一、静脉采血法 1.用物同静脉注射法，备干燥注射器（5－10ml），7号针头，标本容器（按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶），酒精灯，火柴等。 2.操作方法 （1）备齐用物，贴好标签，核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量，立即卸下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内，切勿将泡沫注入，避免震荡，以防红细胞破裂而造成溶血。因血液中细胞的内外成分有很大差异，如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍，细胞内的某些酶含量也较细胞外高，如发生溶血，则直接影响检验结果的准确性。 （2）如需全血、血浆，可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内，立即轻轻摇动，使血液和抗凝剂混匀，以防血液凝固。如需作二氧化碳结合力测定时，抽取血液后，应立即注入有石蜡油的抗凝试管中，注入时针头应插入石蜡油面以下，以隔绝空气，立即送验。否则血液中二氧化碳逸出，使检验结果降低，影响准确性。 （3）采集血培养标本时，应防止污染。静脉采血后，将血液注入培养瓶内，一般培养标本用肉汤培养瓶，如做伤寒杆菌培养则备胆汁培养瓶。 临床常用的培养瓶有两种，一种是密封瓶，瓶口除橡胶塞外另加铝盖密封。瓶内盛培养液约50ml，经高压灭菌，使用时将铝盖剔去，用2％碘酒和70％酒精消毒瓶盖，更换针头将抽出的血液注入瓶内，摇匀后送验。另一种是三角烧瓶，瓶口以棉花塞子及纸严密包封，使用时先将封瓶纸松开，取血后将棉塞取出迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纸送验。一般血培养取血5ml，亚急性细菌性心内膜炎病人，因血中细菌数目较少，为提高细菌培养阳性率，应取血10－15ml. （4）采血完毕，连同检验单及时送验，清理用物，归还原处。一次性注射器使用后应经消毒液浸泡集中处理。 血液标本采集所需血量视检验目的而定，各医院检验方法不同，其采血量也各异。下面介绍常用检验项目全血、血清标本和放射免疫检验采血量与要求（表17－1，17－2，17－3，17－4）。 表17－1常用全血标本采血量与要求（不需空腹）

造血干细胞匹配成功率

造血干细胞匹配成功率 文章目录*一、造血干细胞匹配成功率*二、造血干细胞的来源*三、造血干细胞的细胞特性 造血干细胞匹配成功率1、造血干细胞匹配成功率同卵(同基因)双生兄弟姐妹为100%;非同卵(异基因)双生或亲生兄弟姐妹是1/4;人类非血缘关系的HLA型别中,相合几率是四百分之一到万分之一;在较为罕见的HLA型别中,相合几率只有几十万分之一。由于独生子女家庭的普遍性,高相合率人群减少,今后移植主要在非血缘关系供者中寻找相合者。 2、造血干细胞采集量标准 成年人( 18 ～ 45 岁)的骨髓量一般在 3000 克左右,大部存于骨髓腔。 成人一例采集量为 50 — 200ml 造血细胞悬液,采集次数不超过 2 次。一般循环处理血量不少于 10000ml 。 CD34+ 2 × 106/kg 、 MNC 5 × 108/kg 。每天检测 CD34+ 量,在最高峰时间采集,对捐献者本身无不良影响。 3、造血干细胞的用途 造血干细胞是血液成分之一,是生成各种血细胞的最起始细胞,又称造血多能干细胞,存在于骨髓、胚胎肝、外周血及脐带血中。它既具有高度自我更新能力,又具有进一步分化各系统祖细胞的能力。近代输血就利用这两种能力,对受血者用放射或大剂

量化学药物使其免疫系统受抑再输入献血者的造血干细胞,让它在受血者骨髓内“定居下来,分化增殖”,这即是造血干细胞移植。造血干细胞移植包括骨髓移植(BMT),胎肝造血细胞移植,外周血干细胞(PBSC)移植及脐带血造血细胞移植。 造血干细胞的来源造血干细胞,目前有三个来源渠道:骨髓、外周血、脐带血。其中脐带血造血干细胞相比较前两者来说,采集更方便,同时来源丰富,是一种宝贵的生命资源。 脐带血造血干细胞用于临床治疗已20多年了,临床上明确 可重建造血系统和免疫系统,治疗多种疾病。而且自存脐带血在自体移植上有着更好的治疗效果。自存脐带血在使用上,无需配型,随用随取。因为是自存自用并无排斥反应,治疗成功率高。同时一般自存脐带血会附送医疗保险,在赢得治疗时间的同时,还 减轻了经济上的压力。 造血干细胞的细胞特性血液系统中的成熟细胞寿命极短,因此在人的一生中,造血干细胞需要根据机体的生理需求适时的补充血液系统各个成熟细胞组分。同时在损伤、炎症等应激状态下,造血干细胞也扮演着调节和维持体内血液系统各个细胞组分的 生理平衡的角色。1961年Till JE, McCulloch EA用小鼠体内脾结节方法第一次证实了造血干细胞的存在。

动脉血标本采集技术答案

动脉血标本采集技术答案 [选择题] [A型题] 1．血气分析时，标本的采集处理中，以下做法错误的是： A．采集动脉血 B．以肝素抗凝 C．立即送检 D．不需与空气隔绝E．抽血后将针头刺入胶塞摇匀血液 2．I型呼衰是指： A．PaO2＞60mmHg，PaCO2＞50mmHg B．PaO2＞60mmHg，PaCO2＜50mmHg C．PaO2＞70mmHg，PaCO2＜55mmHg D．PaO2＜60mmHg E．以上都不是 3．Ⅱ型呼衰是指： A．PaO2＜60mmHg，PaCO2＜40mmHg B．PaO2＜55mmHg，PaCO2＞30mmHg C．PaO2＜50mmHg，PaCO2＞20mmHg D．PaO2＜60mmHg，PaCO2＞50mmHg E．PaO2＞60mmHg，PaCO2＜15mmHg 4．关于I型呼衰，说法不正确的是： A．缺氧但不伴二氧化碳潴留 B．为肺泡换气不足所致 C．若伴通气功能障碍则缺氧更为严重 D．常见于肺间质纤维化 E．常见于慢性阻塞性肺疾病 5．动脉血气分析pH = 7.46，PCO2 = 32mmHg，BE = 3mmol／L，提示： A．正常范围B．呼吸性碱中毒 C．呼吸性酸中毒 D．代谢性碱中毒 E．代谢性酸中毒 6．代谢性酸中毒的临床表现为： A．呼吸快而浅B．呼吸慢而浅 C．尿液呈碱性 D．肌肉震颤 E．呼吸深而快 7．股动脉位于： A．股三角内由髂外动脉发出B．股神经外侧C．股静脉内侧 D．股静脉外侧 E．股深动脉内侧 8．判断机体低氧血症最敏感的指标为： A．发绀 B．静脉血氧分压 C．动脉血氧分压 D．动脉血氧饱和度 E．弥散功能测定 9．呼吸衰竭时，其血气分析结果会出现哪些改变： A．PaO2＜70mmHg、PaCO2＞50mmHg B．PaO2＜60mmHg(伴或不伴)PaCO2＞50mmHg C.PaO2＜80mmHg、PaCO2＞60mmHg D．PaO2＜60mmHg、PaCO2＞60mmHg E．PaO2＜65mmHg、PaCO2＞70mmHg 10．纠正缺氧和二氧化碳潴留最重要的措施是： A．氧气疗法B．保持气道通畅C．增加通气量 D．纠正酸碱平衡失调 E．提高呼吸系统兴奋性 [X型题]

外周血造血干细胞动员及采集术常规程序

中国医学科学院血液病医院 第 页 1 外周血造血干细胞动员及采集术常规程序 1．移植前供者检查常规 2．详问病史（女性供者询问孕产史），如有动脉粥样硬化、静脉血栓、自身免 疫病史者慎用G-CSF ，防止疾病加重，如必须应用，需仔细观察病情变化。脑血管疾病是动员的禁忌征。 3．PBSC 采集时机应于疾病早期，骨髓尚未损伤前；反复接受化疗者，尤其 用过烷化剂者动员效果差。 4．采集外周血干细胞的会诊单必须提前一周（开始用G-CSF 动员时）送血库， 细胞治疗室。 5．用G-CSF 动员前外周血查CD34,淋巴细胞亚群，细胞因子。 6．请护士长提前查看手术者血管情况，预计血管穿刺不良者，请会诊行股静 脉插管。 7．患者PBSC 动员方案：化疗＋G-CSF 5ug/kg/d(一般为300ug,IH,qd,停化疗后 第８天开始)最佳采集时机为WBC>5×109/l,CD34+>1%. 8．供者PBSC 动员方案：G-CSF10ug/kg/d,分两次用（一般为300ug,IH,Bid,-4 天开始），在用药第５～６天采集，不应早于第３天或晚于第７天 9．用G-CSF 后勤查血常规，尤其是WBC>1.0×109/l,后每日查血常规，及时追 查结果，当WBC>5.0×109/l 时开始采集。 10． 供者plt<70×109/l,不得采集干细胞。 11． 供者WBC>70×109/l,G-CSF 应减量。 12． 采集当日6am 查血常规及分类，G-CSF 注射时间以6-7am 为宜，G-CSF 应用３小时后CD34+细胞峰值上升，故应于G-CSF 应用３小时后采集 PBSC. 13． 采集当日查CD34、淋巴细胞亚群、细胞因子；单采物查CD34、淋巴 细胞亚群（自身动员者查干细胞培养）（如采集两天则两次单采物均行上述检查）。 14． 采集前准备糖水饮用，采集当日不得进食油性食物，准备钙片一瓶／ 葡萄糖酸钙８支，采集前口服４支，备用４支，另葡萄糖溶液及生理盐水备用。 15． 采集过程中应有医师在场，可能出现口唇、四肢麻木（枸橼酸中毒、 低钙血症），恶心、呕吐、眩晕（紧张或一过性血循环量减少所致）。 16． 采集量：Allo-PBSCT 需MNC 5～8×108/kg ，CD34+ 2～5×106/kg ， CFU-GM 2～5×104/k g, Auto-PBSCT 需MNC 2～3×108/kg,CD34+>2×106/kg. 17. 如第一天采集量不够，第２天需重复采集，G-CSF 第一天晚上和第二天６ 点应继续应用，用量视采集量而定。 18. 采集结束后每２－３天复查血象直至正常。

血液常规标本的采集与处理程序

血液常规标本的采集与处理程序 第一节概述 一、编写目的 有效地指导血液常规标本的采集、接收及保存，使标本中的待测成分不受影响，保证检测结果准确可靠。 二、适用范围 适用于血液白细胞计数及分类，红细胞计数，血红蛋白，血小板计数，红细胞压积，红细胞体积分布宽度，平均红细胞血红蛋白含量，平均红细胞血红蛋白浓度，平均红细胞体积，血小板体积分布宽度，血小板压积，网织红细胞计数与分类，嗜酸性粒细胞计数等标本的采集、接收及处理。 三、人员职责 1. 血液标本采集静脉血标本由临床医护人员采集，末梢血标本由检验科技术人员采集。检验人员有义务向临床提供检验项目标本采集的类型、血量、保存条件、注意事项、生物参考区间及临床意义等。 2. 血液标本运送静脉血标本由患者或临床卫生员运送，末梢血标本由检验科技术人员运送。 3. 检验后血液标本及废物处理由检验人员或检验科卫生员进行处理。 第二节工作程序 一、患者准备及原始样品识别 患者血液采集前，应避免跑步、骑自行车、爬楼梯等剧烈的运动，要求患者休息15min 后进行采血。冬季保持血液循环通畅，化疗患者要求在化疗前采集标本，以保证检测结果准确。 静脉血常规标本由临床医护人员采集，遵照医嘱作好样品采集前所用的容器以及消毒器材、一次性注射器等备用。首先确认患者姓名，并将姓名和(或)标本标识写在(贴于)标本采血真空试管上。 采血前应向患者作适当解释，以消除疑虑和恐惧。如遇患者采血后发生晕厥，可让患者平卧，通常休息片刻即可恢复。必要时可嗅芳香氨酊，针刺或指掐人中、合谷等穴位。 住院患者原始样品识别以“患者姓名+申请序号”为惟一识别，门诊患者以“姓名”为惟一识别。 二、申请者的指导 （一）申请者必须对患者讲清楚血液标本检验的目的(血液检验不仅是诊断各种血液病的主要依据，对其他系统疾病的诊断和鉴别也提供许多信息)，采血时间(住院患者应在早晨卧床时取血；其他人员应最好在空腹时采血)及注意事项。 （二）申请者应向患者讲清楚收集血液标本前服用以下药物，可能会影响检验结果，提醒临床医生在分析实验结果或申请检验应予以注意。 1.白细胞计数禁止服用的药物

非血缘造血干细胞采集技术管理规范

非血缘造血干细胞采集技术管理规范 为规范非血缘造血干细胞采集技术的临床应用，保证医疗质量和医疗安全，制定本规范。本规范适用于非血缘外周血造血干细胞（以下简称造血干细胞）的采集。 一、医疗机构基本要求 采集造血干细胞的医疗机构应当保证造血干细胞来源合法。 （一）有卫生行政部门核准登记的血液内科专业诊疗科目。 （二）三级甲等医院或者血液专科医院。 （三）采集条件 1、采集室：有20m2以上的造血干细胞采集工作区；有相应的造血干细胞采集设备，采集床/椅等。 2、有动员剂注射室。 3、能为捐献者提供常规体检服务。 4、应急处理区：有相应的抢救设备，能够进行急症处理。 5、有资料保存与传输设备。 6、临床实验室有流式细胞仪检测CD34＋；能够进行有核细胞计数。有质量控制和质量评价措施，相关检验项目参加卫生部指定的室间质量评价机构的室间质量评价并合格。

（四）有2名以上符合造血干细胞采集技术人员要求的执业医师，并有满足工作需要的其他相关专业技术人员。 二、人员基本要求 （一）医师 1、取得《医师执业证书》，执业范围为内科。 2、有主治医师以上专业技术职务任职资格。 3、有3年以上血液内科工作经验和造血干细胞采集经验。 负责造血干细胞采集工作的医师有副主任医师以上专业技术职务任职资格，有5年以上血液内科工作经验和造血干细胞采集经验。 （二）其他相关专业技术人员 能够胜任造血干细胞采集相关工作，能熟练掌握血细胞分离机的操作、相关仪器设备使用和电脑操作。 三、技术基本要求 （一）严格遵守相关技术操作规范和诊疗指南。 （二）采集部位：浅静脉，必要时深静脉。 （三）外周血动员剂用量：粒细胞集落刺激因子（G－CSF）5μg/kg/日，4—6天。 （四）采集方式：细胞分离机采集。 （五）采集量：造血干细胞悬液50—200ml/人/次，采集次数不超过2次，每次循环处理血量不多于15000ml。当

生化检验血液标本采集和处理

生化检验血液标本采集和处理 生化检验血液标本采集和处理 一、临床化学检验血液标本的定义 临床化学检验血液标本是指为完成某项或多项临床化学检验项目而采集的一定量的血液，包括抗凝及非抗凝血。 二、血液标本的采取 (一)采取部位 1.静脉采血：应用最多的采血方式。常用的静脉为肘前静脉、腕背静脉，小儿和新生儿有时用颈静脉和前囟静脉。 2.动脉采血：主要用于血气分析时。常用的动脉为股动脉、肱动脉、桡动脉和脐动脉。 3.毛细血管采血：适用于仅需微量血液的试验或婴幼儿。常用部位为耳垂、指端，小儿有时为大趾和足跟。采血针刺入皮肤深度应为2mm(<2.5mm)，采血局部应无炎症、水肿等。 (二)标本类型 临床化学检验血液标本分为血清、血浆和全血3种。血清和血浆为临床常用，除前者不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分无差异;全血只有在红细胞内成分与血浆成分相似时才用;血气分析、血红蛋白电泳等时用全血，一般临床化学分析多不用全血。 三、全血处理为血清或血浆 血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清(浆)从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。 (一)离心前阶段

即指标本采集到离心处理前的一段时间。 1.血清：标本离心前一般应令其自行凝集，不可用木棍等剥离凝血块。通常于室温(22～25℃)放置30～60min血标本可自发完全凝集;冷藏标本凝集缓慢;加促凝剂时凝集加快(标本采集后应轻轻颠倒 混合5～10次，以确保促凝剂作用)。 2.血浆：需用血浆标本时，必须使用含抗凝剂的血液标本收集管，而且采血后必须立即轻轻颠倒采血管混合5～10次(以确保抗凝剂发 挥作用)，5～10min后即可分离出血浆。 3.冷藏标本：标本冷藏可抑制细胞代谢，稳定某些温度依赖性成分但全血标本一般不能冷藏;血钾测定标本冷藏不得超过2h.血液中 儿茶酚胺、pH/血气、氨、乳酸、丙酮酸、胃泌素、甲状腺激素等检 测时需用制冷的标本。 标本需要冷藏(2～8℃)时，标本采取后应立即将标本置于冰屑或冰水混合物(不可用大冰块)，并且必须保证标本与制冷物充分接触，保证制冷物达到标本的高度。 4.代谢抑制剂和防腐剂：某些添加剂加入血液标本中能抑制细胞代谢，可以防止血液标本贮存时分析物浓度的变化。血液葡萄糖测 定时，如在血液中加入氟化钠，在血细胞未分离的'情况下，葡萄糖 在22～25℃时可稳定24h，2～8℃时可以稳定48h;但在新生儿和儿 童标本，由于红细胞压积高，用氟化钠难以控制细胞的糖酵解作用; 甲醛-草酸钾抗凝保存剂不适合血糖测定;氟化钠-麝香草酚混合剂因 能抑制酶活性，不适用于酶学测定。 5.标本采集现场：(1)标本采集后应尽快送往实验室，尤其当收 集区温度超过22℃时此点更为重要;(2)血液标本采集后血管必须加塞、管口向上、垂直放置，以减少管中内容物振动，促进凝血完全，防止标本蒸发、污染和外溅等;(3)已收集的血液标本应温和地处理，要防止标本管振荡所造成的溶血;溶血可影响测定结果。有严重影响(使结果升高)的项目有：乳酸脱氢酶、血清门冬氨酸氨基转移酶、 血清钾和血红蛋白;引起值得注意的影响的项目有：血清铁(↑)、血 清丙氨酸氨基转移酶(↑)和血清甲状腺素(↓);轻度受影响(增加)的

一、什么是造血干细胞它能再生吗

一、什么是造血干细胞？它能再生吗？ 造血干细胞是一类可以产生各种类型血细胞的细胞，它具有自我更新和很强的再生与分化发育能力，它来源于红骨髓，可以经血流迁移到外周血液循环中，适量的造血干细胞就能维持正常的血液成份平衡。 二、什么是造血干细胞移植? 患者因疾病或其它原因导致造血或免疫功能异常时，将他人的正常造血干细胞移植到患者体内，重建患者的正常造血等相关功能，达到治疗某些疾病的目的。 三、造血干细胞移植的分类？ 根据造血干细胞来源可分为骨髓移植、外周血造血干细胞移植、脐带血造血干细胞移植及胎肝造血干细胞移植。 四、造血干细胞移植能治疗哪些疾病? 造血干细胞移植是治疗白血病、再生障碍性贫血、重症免疫缺陷症、地中海贫血、急性放射病、某些恶性实体瘤、淋巴瘤等造血及免疫系统功能障碍性疾病的成熟技术和重要手段，对有些疾病有根治性疗效。 五、健康者在多大年龄适合捐献造血干细胞？ 年龄在18-40岁的健康者均可登记成为捐献造血干细胞的志愿者18-55岁健康者可采集造血干细胞。 六、捐献造血干细胞影响身体健康吗? 人体内的造血干细胞具有很强的再生能力。正常情况下，人体各种细胞每天都在不断新陈代谢，进行着生成、衰老、死亡的循环往复，当指出部分造血干细胞后，造血干细胞会很快增殖，一般健康者在十天左右即可补足所捐的细胞量。因此，捐献造血干细胞不仅不会影响自身的造血功能反而使自身的造血系统得到了锻炼，增强了生命的活力。 七、从外周血采集造血干细胞，对捐献者有危险、痛苦吗? 至今没有因采集外周血造血干细胞引起对指献者伤害的报道，在采集完成后，一些轻微疼痛感和不适将会消失，所用的器材都经严格消毒并一次性使用，所在的采集医院都是由卫生部认定、在中华骨髓库备案的有移植和采集资质的三甲医院，安全是有保障的。 八、捐献造血干细胞需多长时间?捐献者大约需采集多少造血干细胞?捐献期间正常工作怎么办? 约1个星期，注射动员剂4天(皮下注射，2次/日)，第5天采集，大约需采集100ml~200ml 含1%左右浓度造血干细胞的混悬液。一旦确定捐献，我们红会工作人员将会为您请假，并尽量帮您解决捐献期间的生活问题。 九、在采集造血干细胞前，为什么要对捐献者使用动员剂?对人体有副作用吗?有什么样的不适症状? 在正常生理条件下，外用血的造血干细胞量极少，不能满足移植的需要，药物动员之后，加速骨髓造血干细胞的生成并释放到外周血中，可使外用血造血干细胞增加20-30倍，以满足移植需要。据多年的临床观察和目前国际上的报道，动员剂(国际上公认的G-CSF)对人体健康没有副作用。 注射动员剂期间可能会有腰酸背痛、食欲;减退、低热等不适症状，因人而异，停药后这些不适症状就会消失。 十、捐献造血干细胞后会影响生育吗? 不会影响。志愿者指完造血干细胞后可正常怀孕生育。 十一、怎样加入中国造血干细胞捐献者资料库江苏省分库，成为一名捐献造血干细胞志愿者? 如果您适龄、身体健康、有过无偿献血经历、家人支持、在当地有比较固定的工作或住