酵母菌的制片与观察
酵母菌的染色与观察
摘要：本实验通过用美蓝染色制成水浸片来观察酵母形态和出芽生殖方式，并区分酵母菌死活细胞。以生长在麦氏培养基上的酿酒酵母为材料，采用Schaeffer-Fulton氏染色法，进行子囊孢子的观察。
关键词：酵母菌水浸片法子囊孢子出芽生殖
前言
酵母菌是单细胞的真核微生物，细胞核和细胞质有明且分化，个体比细菌大得多。酵母菌的形态通常有球状、卵圆状、椭圆状、柱状或香肠状等多种。酵母菌的无性繁殖有芽殖、裂殖和产生孢子；酵母菌的有性繁殖形成子囊和子囊孢子。美蓝为无毒性染料，其氧化型为蓝色，而还原型为无色。用它对酵母菌染色时，由于活细胞的新陈代谢作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化型变为无色的还原型，所以酵母的活细胞无色；对于死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们无此还原能力或还原能力极弱，而被美蓝染成蓝色或淡蓝色。因此，用美蓝水浸片不仅可观察酵母的形态，还可以区分死、活细胞。
子囊孢子是子囊菌类真菌有性生殖产生的有性孢子。在酵母菌中，能否形成子囊孢子及其形态是酵母菌分类鉴定的重要依据之一。酵母菌形成子囊孢子需要一定的条件，所以对不同种属的酵母要选择适合形成子囊孢子的培养基。麦氏(McClary) 培养基( 葡萄糖－醋酸钠培养基) 有利于酿酒酵母子囊孢子的形成。
1材料
1.1菌种
酿酒酵母麦氏琼脂斜面培养物。
1.2溶液和试剂
葡萄糖，KCl，酵母浸膏，醋酸钠，琼脂，蒸馏水，5%孔雀绿水溶液，0.5%番红水溶液，95%乙醇，0.01%美兰水溶液。
1.3仪器和其他用品
酒精灯，载玻片，盖玻片，显微镜，双层瓶（内装香柏油和二甲苯），擦镜纸，接种环，烧杯，试管等。
2实验步骤
2.1培养基的制备
2.1.1麦氏琼脂培养基的制备
麦氏（Meclary）琼脂培养基的配方如下：
113℃灭菌30min。
2.1.2液体培养基的制备
取0.5g酵母膏、1g蛋白胨、2g葡萄糖加入100ml水配制成液体培养基。
2.2斜面接种
无菌操作由酿酒酵母麦氏琼脂斜面培养物挑取菌种，在已冷凝好的斜面培养基上划线接种。
2.3培养
在28℃条件下恒温培养7d。
2.4美蓝染液水浸片法
2.4.1制片
在载玻片中央加一滴0.1％吕氏碱性美蓝染液，无菌操作法取培养基中培养的酵母菌少许，放在吕氏碱性美蓝染液中，使菌体与染液均匀混合。用镊子夹盖玻片一块，小心盖在液滴上。
2.4.2镜检
将制好的水浸片放置3min后镜检。先用低倍镜观察，然后换用高倍镜观察酵母菌的形态和出芽情况，同时可以根据是否染上颜色来区别死、活细胞。30min后再次观察。
2.5子囊孢子观察
2.5.1制片
在洁净无脂的载玻片中央滴一小滴无菌水，用无菌操作方法从菌种斜面挑取少量菌体与水滴充分混匀，涂成薄膜。
2.5.2干燥固定
待涂片自然干燥后，让菌膜朝上，通过火焰2～3次进行固定（以不烫手为宜）。
2.5.3染色
加5%孔雀绿水溶液覆盖涂菌部位，染色1~1.5min。
2.5.4水洗
用缓流自来水轻轻冲洗，直至流出的水无色为止。
2.5.5乙醇脱色
用95%的乙醇脱色30s，立即用水洗去乙醇。
2.5.6复染
用0.5%番红液染色30s~1min。
2.5.7水洗
用水轻轻地冲洗，直至流出的水无色为止。
2.5.8镜检
将载玻片晾干后，先低倍再高倍，最后在油镜观察酵母菌。
3结果与分析
3.1实验结果
3.1.1美蓝浸片观察实验结果（见图1、2）
在高倍显微镜下可以看到，酿酒酵母菌为单细胞，呈卵圆形或圆形，个体较大，细胞内有明显的液泡。酵母菌无性繁殖主要是出芽生殖，出芽时，由母细胞生出小突起，为芽体(芽孢子)。
活着的酵母菌细胞呈现无色，死亡的酵母菌细胞被染成蓝色。因为美蓝是一种无毒性染料，它的氧化型是蓝色的，而还原型是无色的。用它来对酵母的活细胞进行染色时，由于细胞中新陈代谢的作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化型变为无色的还原型，所以酵母的活细胞无色，而对于死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们无此还原能力或还原能力极弱，而被美蓝染成蓝色或淡蓝色。
在30min后观察该片，蓝色细胞增多。得出美蓝染液的作用时间会使酿酒酵母的死细胞
增多，细胞死、活比例增大。
图1 酵母菌形态结构（10×40）
图2-1 美蓝水浸片3min （10×40） 图2-2美蓝水浸片30min （10×40）
3.1.2 子囊孢子观察实验结果（见图3及分析）
图3 酵母菌子囊孢子形态观察（10×40）
通过染色镜检，酵母菌的子囊为圆形大细胞，呈现红色；其附近有2~4个圆形小细胞为酵母菌的子囊孢子，呈现绿色。这是因为先用着色力强的染色剂孔雀绿染色，子囊中残留染
出芽细胞
芽体
局部放大图
料经酒精脱色，而孢子一经染色难以脱色，后用番红染液复染，子囊被染成红色。
3.3思考题
1.根据你的观察结果，吕氏碱性美蓝染液的作用时间与酿酒酵母的死活细胞比例变化是否有关系？
答：有。随着作用时间的延长，死活细胞的比例增大。
2.酿酒酵母除了通过出芽方式进行无性繁殖外，还可以形成子囊孢子进行有性繁殖，你在实验中是否观察到酿酒酵母的子囊孢子？
答：通过染色，可以观察到酿酒酵母的子囊孢子为圆形的小细胞，呈现绿色。
4小结
通过本实验，了解了酵母菌的形态及出芽方式，并用美蓝染液水浸片法区别酵母菌的死活细胞，掌握了子囊染色观察方法，并了解酵母菌通过形成子囊孢子进行有性生殖。
本实验中滴加染液要适中，否则用盖玻片覆盖时，染液过多会溢出，过少会产生大量气泡。盖玻片要缓慢倾斜覆盖，以免产生气泡。染色的时间需要严格注意，在子囊孢子染色观察实验中，各步骤的时间要严格控制，以免影响实验结果。
参考文献：
1.沈萍陈向东.微生物实验[M].4版.高等教育出版社，2007.70-81页
酵母菌形态观察
微生物实验报告 酵母菌的形态观察 一、目的要求： 1、掌握普通光学显微镜的使用方法和注意事项 2、观察酵母菌的形态特征、出芽生殖方式，并掌握酵母菌与细菌形态特征的区别 3、学习鉴别死活酵母细胞的实验方法 二、器材和器皿： 1、酵母菌 2、生理盐水、美蓝染色液、 3、显微镜、酒精灯、载玻片、盖玻片、接种针、擦镜纸 三、实验原理 酵母菌是单细胞的真核微生物，菌体比细菌大而且不运动。酵母菌的繁殖方式分为无性繁殖和有性繁殖两种，以无性繁殖为主。芽殖是酵母菌普遍的无性繁殖方式，少数为裂殖；有性繁殖是产生子囊和子囊孢子。本实验是通过美蓝染液水浸片来观察酵母的形态和芽殖方式。 美蓝是一种无毒性的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色。用美蓝对酵母活细胞染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型，而对代谢作用微弱或死细胞，无此还原能力或还原能力极弱，而被美蓝染成蓝色或淡蓝色。因此，不仅用此法可观察酵母细胞形态，也可用来鉴别酵母菌的死细胞和活细胞。 四、操作步骤： （一）显微镜的主要构造： 普通光学显微镜的构造主要分为三部分：机械部分、照明部分和光学部分。（二）显微镜的使用方法 1．低倍镜的使用方法 （1）取镜和放置： 显微镜平时存放在柜或箱中，用时从柜中取出，右手紧握镜臂，左一手托住镜座,将显微镜放在自己左肩前方的实验台上，镜座后端距桌边1－2寸为宜，便于坐着操作。 （2）调节光源 （3）低倍镜观察 先将标本玻片置于载物台上，并将标本部位处于物镜的正下方，以左手按逆时针方向转动粗调节器，使镜台缓慢地上升至物镜距标本片约5毫米处，应注在上升镜台时，切勿在目镜上观察。一定要从右侧看着镜台上升，以免上升过多，造成镜头或标本片的损坏。 然后，两眼同时睁开，左眼看目镜，同时反时针方向慢慢旋转粗调节轮，当在视野内出现物象后，改用细调节轮，上下微微转动，直至视野内获得清晰的物象。然后认真观察标本各部位，确定并将需进一步要观察的部位移视野中央，准备用高倍镜观察。
酵母菌的培养和观察
酵母菌的培养和观察 目的认识酵母菌的形态特征，了解培养酵母菌的方法。 实验前的思考人类认识和利用酵母菌的历史悠久，早在史前时期，先人们就学会酿酒。约在6000年前，就发明发面的方法。直到十九世纪有了显微镜，人们才窥探到醉母菌的真面目。对酵母菌做纯系培养分类研究的是与巴斯德同时代的丹麦人汉斯，他是为寻求酿造高品质啤酒的途径才去深入研究酵母菌的。 材料器具甜酒酿汁液，新鲜酵母，豆芽；显微镜，载玻片，盖玻皮，玻璃棒，镊子，滴管，吸水纸，酒精灯，石棉网，火柴，漏斗架，玻璃斗，量杯，三角烧瓶，烧杯，天平，量筒，棉絮；蔗糖，乳酸，碘液。 步骤 1．观察酵母菌 （1）用滴管从甜酒酿的汁液中吸取一滴汁液，滴在载玻片上，用针摊开，盖上盖玻片，在低倍镜下就能清楚地看到甜酒酿的汁液中悬浮着无数酵母菌。再换高倍镜仔细观察一个酵母菌，可以看到酵母菌是椭圆形的单个细胞，细胞中有许多小颗粒，也有几个大的液泡（图示）。有的酵母菌的一端长出大小不同的突起，这是酵母菌的芽体。芽体成长脱落，就成为新的个体，有的芽体在从母体脱落前又长出突起。这种繁殖方法叫出芽繁殖。 （2）在盖玻片一边加一滴碘液，从另一边用吸水纸把染液引入盖玻片下。不久就能看到被染成棕褐色的细胞核和变成蓝紫色的淀粉粒。 2．培养酵母菌 （1）用蔗糖液培养在盛有100毫升的三角烧瓶里加5克蔗糖，煮沸。等到溶液稍稍冷却，加一小块鲜酵母，用玻璃棒搅拌均匀；再用棉絮塞紧瓶口。然后把烧瓶放在25～30℃的温暖地方，数小时后就可见到溶液里有气泡产生，并散发出酒味。这是因为酵母菌正在把糖分解成乙醇和二氧化碳。 （2）二三天后吸取溶液在显微镜下观察，就可看到已培养出大量酵母菌。
实验三 酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴别
实验三酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴别实验三酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴别 实验时间：2019-9-19 星期三 一、目的要求 ⑴. 观察酵母菌的形态及出芽生殖方式, 学习区分酵母菌死活细胞的实验方法 ⑵. 掌握酵母菌一般形态特征及其与细菌的区别 二、基本原理 酵母菌是不运动的单细胞真核微生物，其大小通常比常见细菌大几倍甚至几十倍，大 多数酵母以出芽方式进行无性繁殖，有的分裂繁殖；有性繁殖是通过接合产生子囊孢子。 本实验是通过美蓝染液水浸片来观察酵母的形态和出芽生殖方式。 美蓝是一种无毒性的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色，用美蓝对酵母的活细胞 进行染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝由蓝色的 氧化型变为无色的还原型，因此具有还原能力的酵母活细胞是无色的而死细胞或代谢作用 微弱的衰老细胞则呈蓝色或淡蓝色，借此即可对酵母菌的死细胞或活细胞进行鉴别，并可 计算其成活率。 三、实验器材 ⑴. 菌种：酿酒酵母培养约2d 的麦芽汁斜面培养物 ⑵溶液或试剂：0.05%和0.1%吕氏碱性美蓝染色液, 革兰染色用碘液 ⑶仪器或其他用具：显微镜，载玻片，盖玻片接种环、洒精灯等 四、操作步骤 美蓝浸片观察酵母培养→制片→染色→镜检→30分钟后再镜检水-碘浸片观察 1. 美蓝浸片的观察 ⑴在载玻片中央加一滴0.1%吕氏碱性美蓝染色液, 然后按无菌操作用接种环挑取少量酵母菌苔放在染液中, 混合均匀。 ⑵用镊子取一块盖玻片，先将一边与菌液接触，然后慢慢将盖玻片放下使其盖在菌液上。 ⑶将制片放置约3分钟后镜检，先用低倍镜然后用高倍镜观察酵母的形态和出芽情况，并根据颜色来区别死活细胞。
酵母菌培养基的培养技术
酵母菌的培养技术 一.酵母菌的培养基的配方 1.麦芽汁培养基的配制 培养基成分:新鲜麦芽汁一般为10-15波林。 配制方法:(1)用水将大麦或小麦洗净，用水浸泡6-12h，置于15℃阴凉处发芽，上盖纱布，每日早、中、晚淋水一次，待麦芽伸长至麦粒的两倍时，让其停止发芽，晒干或烘干，研磨成麦芽粉，贮存备用。 (2)取一份麦芽粉加四份水，在65℃水浴锅中保温3-4h，使其自行糖化，直至糖化完全(检查方法是取0.5ml的糖化液，加2滴碘液，如无蓝色出现，即表示糖化完全) (3) 糖化液用4-6层纱布过滤，滤液如仍混浊，可用鸡蛋清澄清(用一个鸡蛋清，加水20 m1，调匀至生泡沫，倒入糖化液中，搅拌煮沸，再过滤)。 (4)用波美比重计检测糖化液中糖浓度，将滤液用水稀释到10-15波林，调pH至6.4。如当地有啤酒厂，可用未经发酵，未加酒花的新鲜麦芽汁，加水稀释到10-15波林后使用。 (5)如配固体麦芽汁培养基时，加入2％琼脂，加热融化，补充失水。 (6)分装、加塞、包扎。 (7)高压蒸汽灭菌100 Pa灭菌20 min。 2.马铃薯葡萄糖培养基的配制 培养基成分:马铃薯20g 葡萄糖2 g 琼脂1.5-2g 水100ml 自然pH 配制方法:(1)配制20％马铃薯浸汁取去皮马铃薯200g，切成小块，加水1000m1。80℃浸泡lh用纱布过滤，然后补足失水至所需体积。100 Pa灭菌20 min。即成20％马铃薯浸汁，贮存备用。 （2)配制时，按每100 m1马铃薯浸汁加入2g葡萄糖，加热煮沸后加入2g琼脂，继续加热融化并补足失水。 (3)分装、加塞、包扎。 (4)高压蒸汽灭菌100 Pa灭菌20 min。 3.豆芽汁葡萄糖培养基的配制
酵母菌的培养与观察2
5.酵母菌的培养与观察 实验方向：了解酵母菌的生长特性、种类，观察并对比土壤，水果及酒曲中酵母菌的形态及种类。 一、实验目的 1. 学会选择酵母菌在土壤中采样点并合理取样； 2. 掌握PDA培养基的配制方法； 3. 学习分离纯化酵母菌的基本操作技术，掌握微生物培养方法以及接种技术。 4. 学会使用高压蒸汽灭菌锅、显微成像系统等实验仪器设备； 5. 培养并学习微生物实验的一般思维及方法。 二、实验原理 酵母菌是单细胞真核微生物。酵母菌细胞的形态通常有球形、卵圆形、腊肠形、椭圆形、柠檬形或藕节形等。比细菌的单细胞个体要大得多，一般为1~5微米′5~30微米。酵母菌无鞭毛，不能游动。 酵母菌在自然界分布广泛，目前已知有1000多种酵母，根据酵母菌产生孢子(子囊孢子和担孢子)的能力，可将酵母分成三类：形成孢子的株系属于子囊菌和担子菌。不形成孢子但主要通过芽殖来繁殖的称为不完全真菌，或者叫“假酵母”。目前已知大部分酵母被分类到子囊菌门。 大多数酵母菌为腐生，其生活最适pH为4.5—6，常见于含糖份较高的环境，如果园土，菜地图及果皮等职务表面。酵母菌生长迅速，易于分离培养，在液体培养集中，酵母菌比霉菌生长的快。 利用酵母菌喜欢酸性环境的特点，常用酸性液体培养基获得酵母菌的培养液（这样做可抑制细菌生长），然后再固体培养基上划线分离。 三、实验器材 1.培养基配方 PDA培养基：马铃薯（去皮）100g，蔗糖与葡萄糖分别10g，水500g，琼脂10g. PDA乳酸液态培养基：马铃薯（去皮）40g，蔗糖与葡萄糖分别4g，水200g，乳酸1ml 2. 仪器及其它用品 小铲，500mL三角锥形瓶，500mL及300mL烧杯，药勺，无菌培养皿，剩9mL无菌水试管8支，无菌玻璃珠，接种环，酒精灯，称量纸，高压蒸汽灭菌器，超净工作台，移液器，分析天平，恒温震荡仪，微波炉显微成像系统。 四、实验步骤与方法 1. 样品收集 （1）土壤样本：在花圃里找开花较多的花丛下离地面5-10厘米的土壤取一小块土壤，（2）水果样本：一小块腐烂水果，一小块新鲜水果 （3）酒曲样本：一小块酒曲 2. 培养基的制备 ⑴PDA培养基的制作 把马铃薯去皮，切成小块状，称量100克，放进500mL的水中用电热炉加热，边用玻璃棒搅拌，以免糊底，煮沸至马铃薯成糊状便停止加热。再用双层纱布放在大烧杯上，左手握住，右手戴上手套把马铃薯慢慢倾倒在纱布上，倒完便把纱布与滤渣拿起来把剩余的汁压挤出来。再用水补充至500mL，加8克葡萄糖及4克琼脂，搅匀后用报纸折成小方块放在瓶口上用手沿瓶口形状往下按并用橡皮胶扎紧，放于高压蒸汽灭菌炉中，用121度灭菌15分钟。待其冷却至45度左右便在无菌条件下倒在灭菌了的培养皿上。待其冷却凝结后便倒置放进
酵母菌的形态观察
【实验题目】 酵母菌的形态观察 【实验目的】 1.掌握酵母菌一般形态与细菌的区别 2.观察酵母菌的出芽生殖，区分酵母菌的死细胞和活细胞 3.学习酵母菌子囊孢子的观察方法 【实验器材】 1.菌种： 酿酒酵母2d麦芽汁斜面培养物 2.溶液和试剂： A) 0.1%吕氏碱性美蓝溶液、质量分数为95%的乙醇溶液、5%孔雀绿水溶液、0.5%番红水 溶液、蒸馏水 B）香柏油、二甲苯 3.仪器及其它用品： 普通光学显微镜、擦镜纸、绸布、酒精灯、载玻片、接种针、培养皿、双层瓶（内装香柏油和二甲苯）等 【实验原理】 ?1、单细胞的酵母菌个体是常见细菌的几倍甚至几十倍，大部分采取出芽方式进行无性繁殖，也可以通过接合产生子囊孢子进行有性繁殖。 2、由于细胞个体大，采取涂片的方法制片有可能损伤细胞，一般采用美蓝染液水浸片法或水-碘液浸片法来观察酵母菌形态及出芽生殖方式。 3、采用美蓝染液水浸法可以对酵母菌的活细胞和死细胞进行鉴别。美蓝对细胞无毒，其氧化型呈蓝色，还原型无色，由于新陈代谢，活细胞内有较强还原能力，使美蓝由蓝色氧化型转变为无色的还原型，而死细胞或衰老细胞胞内还原性弱，染色后细胞呈蓝色或淡蓝色，因此，用美兰染色后，活细胞呈无色，死细胞呈蓝色。 【实验内容及步骤】 1、酵母菌制片与简单染色--美蓝染液水浸片法 1)滴加一滴0.1%吕氏碱性美蓝染液于载玻片中央，无菌操作用接种环由酿酒酵母麦芽汁斜面培养物挑取少许菌体置于染液中，混合均匀。 2)用镊子取一盖玻片，将盖玻片一边与菌液接触，缓慢将盖玻片倾斜并覆盖在菌液上。 3)将制片放置3min后，用低倍镜及高倍镜观察酵母菌形态和出芽情况，并根据细胞颜色区分死细胞和活细胞。 4)染色30min后，再次观察，注意死活细胞的比例是否发生变化。 2、酵母菌子囊孢子的观察 1)涂片。先在洁净载玻片上滴一滴蒸馏水，用接种环无菌操作挑取适量酵母菌菌体于蒸馏水中，混合均匀。 2)干燥固定。将载玻片在酒精灯上方来回移动，注意不要让载玻片距离火焰过近，以免烫死酵母菌细胞，可用手背反复试温度。 3)染色。孔雀绿染色 1-2min；水洗后用95%的乙醇溶液脱色30s；水洗后用番红染液复染1min；水洗后干燥。 4)镜检。将制好的装片放在显微镜下镜检，由低倍镜到高倍镜，最后用油镜观察。【实验结果】 1、酵母菌死活细胞鉴定
“观察酵母菌和霉菌”实验报告单
“观察酵母菌和霉菌”实验报告单 名称 姓名实验“观察酵母菌和霉菌” 组员 实验内容 材料用具 目的要求酵母菌培养液、橘子皮上的青霉、吸管、镊子、显微镜、解剖针、载玻片、盖玻片、放大镜、稀释的碘液、吸水纸 认识酵母菌、霉菌的形态结构年级八上生物实验类型提交时间分组实验指导老师 方法步骤 酵母菌电镜照片xx霉菌电镜照片 (1)观察酵母菌 1.取一滴酵母菌培养液，滴在载玻片上、盖上盖玻片、用显微镜观察，就能看到一个个椭圆形的细胞，细胞中有明显的液泡，这就是酵母菌。 2.在盖玻片的一侧滴一滴碘液、用吸水纸从另一侧吸引，对酵母菌进行染色、在显微镜下能看到酵母菌细胞中染上颜色的细胞核和淀粉粒。有的细胞上长出大小不一的突起，这是酵母菌在进行出芽生殖。 （2）观察青霉 1.从培养皿中取一块长有青霉的橘子皮，垫上白纸，用放大镜观察，可以看到一条条直立生长的白色绒毛，这就是青霉的直立菌丝，菌丝的顶端长有成串的青绿色的孢子。
2.用解剖针挑取少许长有袍子的菌丝，制成临时装片，置于显微镜下观察。注意观察菌丝有没有颜色，直立菌丝的顶端有没有扫帚状的结构，以及孢子的着生状态和颜色。 讨论 1.酵母菌的细胞结构有什么特点？ 2.青霉孢子的颜色和着生状态有什么特点？ 1.制备酵母菌培养液时，应将装置放在25-30℃的环境中培养，以使酵母菌快速繁殖。 2.酵母菌培养液应含有一定浓度的糖，但是糖的浓度不宜过高。 3.培养青霉时，可以在培养皿里垫一层吸水纸，加适量的水，并盖上盖，放在阴暗温暖的环境中。 每天往里面加适量的温水，以保持一定的温度。 4.青霉分生孢子梗上成串的孢子容易碰落，盖盖玻片时要特别小心，动作须轻缓，盖好后不能移动位置。 注意事项 AA
酵母菌的分离筛选方法
酵母菌的分离筛选方法 酵母菌多数为腐生，一般生长在含糖较高，偏酸的环境中，在通气条 件下，液体培养比霉菌快。菌落与细菌相似，较大而厚，多数不透明， 菌落光滑湿润粘稠，乳白色，少数干皱，边缘整齐，呈红色或粉红色， 圆形椭圆卵形，液体培养基生长会生成沉淀或菌膜。 含高糖浓度（45%），分离蜂蜜酵母，球拟酵母属等嗜高渗透压的酵母。 1.培养基： 1.1葡萄糖50g/L 尿素1g/L （NH4）2SO41g/L KH2PO4 2.5g/L Na2HPO40.5g/L MgSO41g/L FeSO4 0.1g/L 酵母膏 0.5g/L 孟加 拉红 0.03g/L PH4.5-5.0 （富集用） ★1.2乳酸-马铃薯-葡萄糖培养基：马铃薯200g/L 葡萄糖（霉菌用 蔗糖）20g/L 乳酸5ml马铃薯去皮切片200g，加水煮沸30min，纱 布过滤，补足蒸馏水1L，PH自然。（去掉乳酸可用于酵母菌和霉菌培 养用）（富集用） ★1.3麦芽汁培养基：1：4水60-65℃水浴3-4小时，4-6层纱布过 滤，可加一个蛋清加水20mL调均生泡沫，倒入糖化液中，煮沸过滤， 10-15波林，氯霉素0.1g/L PH6.0-6.4 121℃ 20min （分离保存用）灭菌后加入300u/ml硫酸链霉素（集菌用） ★1.4虎红（孟加拉红）培养基：蛋白胨5.0g/L 葡萄糖10g/L KH2PO41.0g/L MgSO40.5g/L 孟加拉红0.033g/L 氯霉素0.1g/L 琼 脂15g/L PH自然
（分离纯化用） ★1.5 豆芽汁培养基：黄豆芽100g/L 葡萄糖50g/L PH自然。100g 黄豆芽，加水煮沸30min，纱布过滤，补足蒸馏水1L 1.6察氏培养基：主要培养霉菌观察形态用 蔗糖30g/L 硝酸钠3g/L 磷酸氢二钾1g/L 氯化钾0.5g/L 硫酸镁0.5g/L 硫酸亚铁0.01g/L 琼脂15-20g/L 121℃ 20min PH自然一般分离黄酒酵母酒精酵母使用曲汁培养基，啤酒酵母用酒花麦汁培养基，葡萄酒酵母用葡萄汁培养基。 2.集菌：研究酵母菌生态和某种基物或样品中的酵母菌区系，一般不进行集菌，以免改变其中不同种类数量间的对比，将样品制成菌悬液按常规法分离。若从样品中分离特定种类时先集菌。集菌发酵力强菌株，加酸性含糖的培养基，酸性豆汁，必要时注入高浓度的酒精（13-17%），霉菌在液体中形成菌丝体，酵母不形成菌丝，25-28℃2-3d，遇到菌丝体用接种环挑去烧掉，去掉上清液，取沉淀酵母一至两环移植另一液体培养基中，集菌连续两至三次才能完成，要配合镜检。 实例：将待分离的样品10g（ml）放入90ml无菌水或生理盐水/150ml 三角瓶（玻璃珠），摇床振荡20-30min，取上清液接种于酸性培养液（乳酸-马铃薯-葡萄糖培养基酸性麦芽汁或酸性豆芽汁）25-28℃2-3d，培养过程中若出现菌丝体跳出烧掉，集菌连续两至三次，培养液变成混浊，产生菌膜和沉淀物。镜检：美兰染液染色，活菌可还原美兰染液，菌体无色。
四种克鲁弗酵母菌培养及形态特征的观察
四种克鲁弗酵母菌培养及形态特征的观察 阿克依旦,山格依里四巴依尔,古丽娜孜四托合塔日巴依,热娜古丽四木沙* （新疆农业大学食品科学与药学学院,新疆乌鲁木齐830052） 摘要：以克鲁弗酵母菌（S.kluyveri ）作为实验材料，研究培养基及甜菜糖蜜添加量对4种S.kluyveri 菌落增殖的影响，同时对菌落形态和细胞形态进行观察三结果表明：与麦芽汁固体培养基和马铃薯葡萄糖琼脂培养基相比，4种S.kluyveri 均适合生长在甜菜糖蜜培养基中，其甜菜糖蜜最适添加比例为4％三4种S.kluyveri 在同一培养条件下生长，其形态结构并无明显差异，其菌落均为湿润有光泽二不透明的圆形菌落，细胞形态均为圆形的两端芽殖细胞三其中编号为1685和编号为10955的菌株菌落和细胞大小较其他两种菌株较大三 关键词：S.kluyveri ；培养基；甜菜糖蜜；形态结构 中图分类号：TQ926.2文献标识码：A 文章编号：1674-506X （2017）01-0006-0003 Observation of Four Saccharomyces kluyveri Culture and Morphological Characteristics Aheyidan,Shangeyili 四Bayier,Gulinazi 四Tuohetamubayi,Renaguli 四Musha * （College of Food Science and Pharmaceutical Science ,Xinjiang Agricultural University ,Urumqi Xinjiang 830052,China ）Abstract ：Saccharomyces kluyveri （S.kluyveri ）as experimental materials,discuss medium and beet molasses addi-tion on effect of four hinds of S.kluyveri colony proliferation,colony and cell morphology were observed simultane-ously.Results show that compared with malt extract agar medium and potato dextrose agar,four species of S.kluyveri are suitable for growing in beet molasses medium,beet molasses is the optimum ratio of 4％.Four S.hluyveri under the same conditions,no significant differences in morphological structure,their colonies are circular colony with wet shiny,opaque,cells are round both ends of the budding cells.Strain number 1685and numbered 10955colonies and cell size are larger than the other two strains. Key words ：S.kluyveri ；medium；beet molasses；morphological structure doi ：10.3969／j.issn.1674-506X.2017.01-002收稿日期：2016-12-04 基金项目：国家自然科学基金资助项目（31460440） 作者简介：阿克依旦（1991-）,女,研究生三研究方向：食品加工与安全*通讯作者 Saccharomyces kluyveri （克鲁弗酵母菌）简称S.kluyveri ,是芽殖酵母,具有降解嘧啶的作用[1-2］三其特点为菌体营养丰富,是唯一持有神经酰胺的菌株, 具有较强的发酵功能,可以分解甜菜糖蜜中的棉籽 糖[3］三神经酰胺存在于植物[4］二哺乳动物[5］二酵母[6］等真核生物中三Tamura 等[3］报道S.kluyveri 酵母菌在甜菜糖蜜培养物中的脑苷脂富集功能三糖蜜作为制糖产业的副产品之一,可添加在酵母生产培养基中[7-10］,而S.kluyveri 酵母菌的培养基基质中需要添加一定比例的可溶性糖类,目前,国内涉及到关于酵母菌的第53卷（第1期）Vol.53, No.1 万方数据
酵母菌的形态观察
姓名班级13级生命基地班学号同组者： 科目微生物学实验题目酵母菌的形态观察组别3 【实验题目】 酵母菌的形态观察 【实验目的】 1.掌握酵母菌一般形态与细菌的区别 2.观察酵母菌的出芽生殖，区分酵母菌的死细胞和活细胞 3.学习酵母菌子囊孢子的观察方法 【实验器材】 1.菌种： 酿酒酵母2d麦芽汁斜面培养物 2.溶液和试剂： A) 0.1%吕氏碱性美蓝溶液、质量分数为95%的乙醇溶液、5%孔雀绿水溶液、0.5%番红水 溶液、蒸馏水 B）香柏油、二甲苯 3.仪器及其它用品： 普通光学显微镜、擦镜纸、绸布、酒精灯、载玻片、接种针、培养皿、双层瓶（内装香柏油和二甲苯）等 【实验原理】 1、单细胞的酵母菌个体是常见细菌的几倍甚至几十倍，大部分采取出芽方式进行无性繁殖，也可以通过接合产生子囊孢子进行有性繁殖。 2、由于细胞个体大，采取涂片的方法制片有可能损伤细胞，一般采用美蓝染液水浸片法或水-碘液浸片法来观察酵母菌形态及出芽生殖方式。 3、采用美蓝染液水浸法可以对酵母菌的活细胞和死细胞进行鉴别。美蓝对细胞无毒，其氧化型呈蓝色，还原型无色，由于新陈代谢，活细胞内有较强还原能力，使美蓝由蓝色氧化型转变为无色的还原型，而死细胞或衰老细胞胞内还原性弱，染色后细胞呈蓝色或淡蓝色，因此，用美兰染色后，活细胞呈无色，死细胞呈蓝色。 【实验内容及步骤】 1、酵母菌制片与简单染色--美蓝染液水浸片法 1)滴加一滴0.1%吕氏碱性美蓝染液于载玻片中央，无菌操作用接种环由酿酒酵母麦芽汁斜面培养物挑取少许菌体置于染液中，混合均匀。 2)用镊子取一盖玻片，将盖玻片一边与菌液接触，缓慢将盖玻片倾斜并覆盖在菌液上。 3)将制片放置3min后，用低倍镜及高倍镜观察酵母菌形态和出芽情况，并根据细胞颜色区分死细胞和活细胞。 4)染色30min后，再次观察，注意死活细胞的比例是否发生变化。 2、酵母菌子囊孢子的观察 1)涂片。先在洁净载玻片上滴一滴蒸馏水，用接种环无菌操作挑取适量酵母菌菌体于
摇床培养确定酵母菌的培养条件或营养条件完整版
摇床培养确定酵母菌的 培养条件或营养条件 HEN system office room 【HEN16H-HENS2AHENS8Q8-HENH1688】
摇床培养确定酵母菌的最适营养条件和培养条件 实验方案 酵母是单细胞微生物，形态通常有球形、卵圆形、腊肠形、椭圆形、柠檬形或藕节形等，一般为1～5或5～20微米，它属于高等微生物的真菌类。酵母菌是兼性厌氧菌，在有氧的情况下，它把糖分解成二氧化碳和水且酵母菌生长较快。在缺氧的情况下，酵母菌把糖分解成酒精和二氧化碳。酵母菌能在PH值为～的范围内生长，最适PH值为6~7。在低于水的冰点或者高于47℃的温度下，酵母细胞一般不能生长，生长温度一般在20～30℃，最适生长温度范围为28～30℃。 一、实验目的 1、认识了解酵母菌的细胞形态和生理特性； 2、学习了解酵母菌的营养需求，确定酵母菌生长的最适条件； 3、掌握摇床培养酵母菌的操作技术及工艺流程； 4、掌握正交试验的概念、原理、方法及运用领域，学习设计兵进行正交试验 操作； 5、学习掌握生物量的测定方法，利用比浊法和计数法分析确定酵母菌的最适 营养条件和培养条件。 二、实验原理 酵母菌的最适营养条件和培养条件是利用PDA液体培养基摇床培养，通过正交实验设计进行的。正交试验设计(Orthogonal experimental design)是研究多因素多水平的一种设计方法，它是根据正交性从全面试验中挑选出部分有代表性的点进行试验，这些有代表性的点具备了“均匀分散，齐整可比”的特点，正交试验设计是分式析因设计的主要方法，是一种高效率、快速、经济的实验设计方法。正交表是一整套规则的设计表格，用L表示正交表的代号，a为试验的次数，b为水平数，c为列数，也就是可能安排最多的因素个数。本实验采用了三因素三水平的正交试验来确定酵母菌的最适营养条件和培养条件。 生物量的测定方法有比浊法、计数法和直接称重法等。由于酵母在液体摇床发酵培养过程中是以均一性的混浊液状态存在的，所以可以利用紫外分光光度计进行直接比色法来测定其生物量。 三、实验设备、材料及试剂 （一）设备 超净工作台、高压蒸汽灭菌锅、恒温振荡培养箱、紫外分光光度计、高速冷冻离心机、电子天平、显微镜、电磁炉、锅、酒精灯、锥形瓶（250mL 10支）棉塞、
酵母菌分类
酵母菌分类 根据荷兰Lodder&Kreger-vanRij所着“TheYeasts,ATaxonomyStudy” 分类主要依据是 1.形态 2.对硝酸盐或碳源的利用 3.对糖的发酵性 形态与大小：因酵母种类不同而不同，同一种也会因培养条件或发育时期不同而有异，一般直径约在5μm，显微镜40X及100X接物镜下皆可观察到。 cerevisiae型：球形与卵形(如啤酒酵母Saccharomycescereviisiae) ellipsoideus型：椭圆形(如葡萄酒酵母Saccharomycesellipsoideus) pastorianus型：香肠形 apiculatus型：柠檬形 trigonopsis型：三角形 增殖法：主要为营养增殖(即出芽生殖(budding))，偶而发生有性生殖时则行子囊胞子来增殖。 母细胞(mothercell)：原来的细胞 子细胞daughtercell)：增殖後的细胞 多极出芽(multilateralbudding)：同一个细胞上数个地方可以出芽者 两极出芽(bipolarbudding)：只有细胞两端才会出芽者(如Kloeckera spp.) 伪菌丝(pseudomycelium)：出芽後的细胞一直连成很长，呈菌丝状者(如Candida spp.) 真菌丝(truemycelium)：有些酵母会形成如同霉菌具有隔膜(septum)的真菌丝(如Endomycopsis spp.,Trichosporum spp.) 分裂酵母(fissionyeast)：非出芽，而是在细胞中央形成隔膜再分裂成两个细胞者(如Schizosaccharomyces spp.) 出芽分裂(budfission)：出芽後基部不缩小，在子细胞与母细胞之间直接分裂的酵母谓之(如Saccharomycodes spp.) 子囊孢子(ascospore)：在不利的环境下，在酵母的生活史中某一部分会形成子囊孢子 有孢子酵母(sporogenousyeasts)：能产生子囊孢子的酵母称之 无孢子酵母(asporogenousyeasts)：不形成子囊孢子之酵母 一倍体营养细胞(haploid)： 由二个一倍体细胞接合後再形成子囊胞子者(如Schizosaccharomyces) 出芽时分裂的二个核融合後在母细胞内形成子囊孢子者(如Debaryomyces) 母细胞与出芽细胞间融合後的核，移到另一个出芽细胞内形成子囊孢子者(如Nadsonia) 二倍体营养细胞(diploid)：环境不合适时，停止出芽生殖，直接减数分裂产生子囊胞子(如Saccharomycodes(孢子能在子囊内直接接合成两倍体)或Saccharomyces(发芽後的胞子间才接合成两倍体)) 子囊(ascus)内的孢子数，普通为2or4，多者可8or16，偶而会有奇数，其形状有：
酵母培养操作规程
酵母培养操作规程 本文主要介绍酵母的选育、保种、培养的操作工艺等。 目录 第一章酵母扩培 (2) §1-1 实验室扩培 (2) 1培养基制备 (2) 2接种操作 (3) §1-2 生产现场扩培 (5) 1准备工作 (5) 2汉生罐接种操作 (5) 3扩大罐扩培 (5) 4二次（车间）扩大罐扩培 (6) 第二章菌种保藏 (7) 1实验室菌种保藏与活化 (7) 2汉生罐菌种保藏与活化 (7) 第三章酵母检测 (8) §3-1 取样 (8) 1扩培液、发酵液及待滤酒等的取样 (8) 2酵母泥的取样 (8) §3-2 检测 (10) 1酵母细胞形态检测 (10) 2酵母细胞大小测定 (10) 3酵母泥外观检测 (11) 4酵母细胞数和出芽率的测定（血球计数板法） (11) 5酵母死亡率的测定（血球计数板法） (12) 6酵母肝糖染色法 (13) 7酵母凝聚性的测定 (14) 8酵母死灭温度的测定 (15) 9酵母发酵失重实验 (16) 10酵母的呼吸缺陷型检测 (16) 第一章酵母扩培 §1-1 实验室扩培 1培养基制备 【试剂】：冷麦汁、蒸馏水、新鲜鸡蛋。 【器具】：试管（15×150）及（18×180）、小巴氏瓶（三角瓶）、大巴氏瓶（大三角瓶）、卡氏罐、中 速滤纸、电炉、量筒、不锈钢锅、糖度计等。 【仪器】：杀菌锅、天平（精度0.1g）。
【方法】 〖试管、三角瓶及巴氏瓶培养基的制备〗 ①取样：取糖化冷却麦汁，视麦汁浊度情况判定是否进行过滤。 2℃，按每0.5~1L使用一个鸡蛋的比例，加入打成泡沫的蛋清，在不断地搅拌下保温30min；然后升温煮沸30min；将煮沸后的麦汁用水浴冷至80~90℃，用双层中速滤纸过滤。±②澄清：将麦汁加热至45 0.2°P。±③调糖：将过滤后的麦汁用蒸馏水调整糖度为11 ④分装：试管（15×150）5mL，试管（18×180）10mL，分装小巴氏瓶（三角瓶）、大巴氏瓶（大三 角瓶）。 ⑤灭菌：分装后包扎好，115℃杀菌20min；杀菌后培养基放置2~3天，确定无菌后备用。 〖卡氏罐培养基的制备〗 取糖化冷却麦汁（有条件的可取薄板前热麦汁）加入卡氏罐，然后封闭卡氏罐取样口，各呼吸阀等接口处均应以棉塞或呼吸阀进行封闭后包扎结实，115℃杀菌30~40min，于室温冷却至17~18℃；接种前以3L/min的速率充纯氧2~3min（卡氏罐有效容积20L）。 2接种操作 【器具】：酒精灯、酒精棉、剪刀、接种针、镊子、定量移液器或吸管等。 【仪器】：超净工作台等。 【方法】 无菌室使用前，使用紫外线灯照射20~30分钟进行杀菌；进入无菌室换无菌工作服；所有操作采用无菌操 作。 〖活化〗 ①操作前将冷冻管菌种置于室温下，使之内部培养基达到室温后，振荡均匀；无菌操作，将冷冻管内 的培养液全部转入盛有5mL培养基的试管中，于25±1℃培养72±2小时。 ②将试管中的培养液轻轻振荡均匀，用接种环接取三环加入另一支盛有5mL培养基的试管中，于 25±1℃培养24~36小时。 ③将培养结束的试管培养液轻轻振荡均匀，用无菌吸管接0.1mL加入盛有10mL培养基的试管，振荡 均匀后于25±1℃培养24~36小时。 〖扩大〗 ①将培养结束的试管培养液轻轻振荡均匀后，全部接入小巴氏瓶（三角瓶），每个小巴氏瓶（三角瓶） 接入一支试管的培养液；然后于23±1℃培养24~36小时。 ②将培养结束的小巴氏瓶（三角瓶）轻轻振荡均匀后，全部接入大巴氏瓶（大三角瓶），每个大巴氏 瓶（大三角瓶）接入一只小巴氏瓶（三角瓶）的培养液；然后于21±1℃培养24~36小时。 ③将培养结束的大巴氏瓶（大三角瓶）轻轻振荡均匀后，全部接入卡氏罐，每个卡氏罐接入两只大巴 氏瓶（大三角瓶）的培养液；然后于18±1℃培养24~36小时。 〖注〗：除卡氏罐外，其它液体培养基在接种后每12小时应振摇一次，以去除二氧化碳，保证酵母耗氧需 求。 【实验室扩培工艺】 容器扩大倍数培养温度℃培养时间hr
新版酵母菌形态观察实验报告单课件.doc
酵母菌形态观察实验报告单 班级日期姓名 实验目的 认识酵母菌的形态结构，掌握其观察方法。 实验内容 1．酵母菌菌落特征的观察 2．酵母菌细胞形态及芽殖方式 3．液泡的活体染色观察 4．肝糖粒染色观察 5．脂肪粒染色观察 实验原理 酵母菌是单细胞真菌，通常呈圆形、椭圆形或卵圆形，其菌落较大而厚， 湿润，较光滑，颜色多为乳白、灰黄、淡黄、灰褐色，少见粉红或红色，偶见黑色。酵母菌个体比细菌大几倍到十几倍， 在高倍镜下即能观察清楚。细胞内常有明显的细胞核及其内含物。无性繁殖以芽殖为主，在细胞的一端初生小突起如芽，逐渐增大，芽缢裂而与母细胞分离，形成独立的菌体。发生的芽如不立即脱离母细胞并继续出芽，则多数芽细胞集聚成芽簇。在陈旧培养中，芽簇细胞伸长成丝状，称假菌丝。 酵母菌的有性生殖形成子囊袍子，其过程由两个菌休细胞结合后，其中配合的细胞核分裂，形成2个、4个或8个子囊孢子。 实验器材 酿酒酵母培养物 显微镜、载玻片、盖玻片、接种针 0.1％美蓝液、中性红染色液、碘液 实验步骤 1．菌落特征的观察 取少量酿酒酵母划线接种在土豆平板培养基上，28—30℃养3—5d。用肉眼观察菌落特征，项目包括菌落表面湿润或干燥、有无光泽、隆起形状、边缘形状、大小、颜色等。 2．酵母菌细胞形态及芽殖方式 在洁净载玻片上滴加一滴无菌水或0.1%美蓝液一滴，用接种环取酵母菌菌台少许与无菌水或美蓝液混匀，盖上盖玻片，即成为水浸片。用高倍镜观察酵母细胞形态及出芽情况。 染液不宜过多或过少，否则，在盖上盖玻片时，菌液会溢出或出现大量气泡 而影响观察。盖玻片不宜平着放下，以免产生气泡影响观察 3．液泡的活体染色观察 在洁净的载玻片上滴加一滴中性红染色液，用接种环取少量酿洒酵母与染液混匀，染色4—5min后，盖上盖玻片在显微镜下观察。中性红是液泡的活体
酵母菌观察
酵母菌子囊孢子观察及死活细胞鉴别 摘要：以酿酒酵母（S.cerevisiae）为菌种，采用美蓝浸片法和孔雀绿-番红复染法对酿酒酵母进行染色，然后制片，进行显微观察。结果显示，酵母菌进行无性生殖（出芽生殖）和有性生殖（产生子囊孢子）；死细胞呈蓝色或淡蓝色，活细胞呈无色；菌体及子囊呈红色，子囊孢子呈绿色。 关键词：酿酒酵母；美蓝浸片；孔雀绿-番红复染；显微观察 前言：酵母菌是不运动的单核真核微生物，有有性生殖和无性生殖两种生殖方式。有性生殖是通过结合产生的子囊孢子，无性生殖主要以出芽生殖的方式。可以通过美蓝浸片法观察酵母菌形态和出芽生殖方式。美蓝无毒性，酵母活细胞能使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型。因此，染色时具有还原能力的酵母活细胞是无色的，而死细胞或衰老细胞为蓝色或淡蓝色。子囊孢子是子囊类真菌的有性生殖产生的有性孢子，能否形成子囊孢子及其形态是酵母菌分类鉴别的重要依据之一。酵母菌要形成子囊孢子需要一定条件，麦氏培养基（葡萄糖-醋酸钠培养基）有利于酿酒酵母子囊孢子的形成。通过孔雀绿-番红复染法对酵母染色，使菌体和子囊孢子呈不同颜色，制片及显微观察，可以看到子囊孢子的形态和位置。 1材料与方法 1.1材料 1.1.1菌种 酿酒酵母（S.cerevisiae）。 1.1.2培养基 麦芽汁液体培养基；麦氏（Meclary）琼脂斜面。 1.1.3溶液或试剂 0.1% 吕氏碱性美蓝染液，5%孔雀绿染液，0.5%番红水溶液，95%乙醇，葡萄糖，氯化钾，酵母浸膏，醋酸钠，K2HPO4，蒸馏水，蛋白胨，酵母膏，琼脂。 1.1.4仪器 显微镜，载玻片，盖玻片，双层瓶，酒精灯。 1.2方法 1.2.1 液体培养基制备 1.2.1.1 取蛋白胨4g，酵母膏2g，葡萄糖4g放入约200ml水中，加热融化，待混合均匀后（呈深棕色）将水补充至200ml，然后将其分装到两个锥形瓶中，每个三角瓶中100ml。 1.2.1.2 113℃灭菌30min，取出，冷却，备用。 1.2.2麦氏培养基制备 1.2.2．1 取葡萄糖0.1g，氯化钾0.18 g，酵母浸膏0.25 g，醋酸钠0.82 g，2 g，琼脂2 g，蒸馏水100 ml。 1.2.2．2 按常规方法制备培养基后，装入10支试管，每支5mL左右。 1.2.2．3 将装好的试管与上步中液体培养基一起113℃灭菌30min。取出，静置，摆斜面。 1.2.3接种和培养 1.2.3.1 液体培养基将接种环用酒精灯灭菌，在酿酒酵母斜面培养基试管内冷却后，轻轻刮取适量酿酒酵母孢子。将带有菌种的接种环伸入液体培养基内，轻轻搅拌。将接种后的三角瓶至于恒温25-28℃箱中培养。1.2.3.2 麦氏琼脂斜面按常规方法接种，培养（即产孢培养）。 1.2.4美兰浸片观察 1.2.4．1滴加一滴0.1% 吕氏碱性美
酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴定
实验七酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴定 一、实验目的 1.观察酵母菌的形态特征、出芽生殖方式，并掌握酵母菌与细菌形态特征的区别。 2.学习鉴别死活细胞的实验方法。 二、实验原理 酵母菌是单细胞的真核微生物，菌体比细菌大而且不运动。酵母菌的繁殖方式分为无性繁殖和有性繁殖两种，以无性繁殖为主。芽殖是酵母菌普遍的无性繁殖方式，少数为裂殖；有性繁殖是产生子囊和子囊孢子。本实验是通过美蓝染液水浸片和水一碘液水浸片来观察酵母的形态和芽殖方式。 美蓝是一种无毒性的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色。用美蓝对酵母活细胞染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型，而对代谢作用微弱或死细胞，无此还原能力或还原能力极弱，而被美蓝染成蓝色或淡蓝色。因此，不仅用此法可观察酵母细胞形态，也可用来鉴别酵母菌的死细胞和活细胞。 三、试剂与器材 1.材料酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)或卡尔酵母(Saccharomyces calsbergensis)培养2天左右的麦芽汁(或豆芽汁)液体培养物。 2.试剂0.05％和O.1％吕氏碱性美蓝染色液、革兰氏染色用的碘液。 3.器材显微镜、载玻片、盖玻片、接种环、洒精灯等。 四、实验内容 1.美蓝浸片观察酵母培养→制片→染色→镜检→30分钟后再镜检 2.水-碘浸片观察 五、关键步骤及注意事项 1.染液不宜过多或过少，否则，在盖上盖玻片时，菌液溢出或出现大量气泡。 2.用镊子取一块盖玻片，先将一侧与菌液接触，然后慢慢将盖玻片放下，使其盖在菌液上，盖玻片不宜平着放下，避免气泡产生。 六、思考题 1.吕氏碱性美蓝染液浓度和作用时间的不同，对酵母菌死细胞数量有何影响?试分析其原因。 2.在显微镜下，酵母菌有哪些突出的特征区别于一般细菌? 实验七酵母菌的形态观察及死活细胞的鉴定 一、实验目的 1.观察酵母菌的形态特征、出芽生殖方式，并掌握酵母菌与细菌形态特征的区别。 2.学习鉴别死活细胞的实验方法。 二、实验原理 酵母菌是单细胞的真核微生物，菌体比细菌大而且不运动。酵母菌的繁殖方式分为无性繁殖和有性繁殖两种，以无性繁殖为主。芽殖是酵母菌普遍的无性繁殖方式，少数为裂殖；有性繁殖是产生子囊和子囊孢子。本实验是通过美蓝染液水浸片和水一碘液水浸片来观察酵母的形态和芽殖方式。 美蓝是一种无毒性的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色。用美蓝对酵母活细胞染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型，而对代谢作用微
微生实验报告 2012.10.31 实验四 酵母菌的形态观察及细胞死活的鉴别,微生物细胞大小的测定
微生实验报告 姓名：王晶晖 专业年级：2011级生物技术 学号：040312011032 实验四酵母菌的形态观察及细胞死活的鉴别，微生物细胞大小的测定 一、实验目的 1．观察酵母菌的形态及出芽生殖方式，学习区分酵母菌死活细胞的实验方法；掌握酵母菌的一般形态特征及其与细菌的区别。 2．了解目镜测微尺和镜台测微尺的构造及使用原理，掌握测定微生物细胞大小的方法 . 3．了解血球计数板的构造和使用方法,学会用血球计数板对酵母细胞进行计数。 二、实验原理 美蓝是一种无毒性的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色。用美蓝对酵母的活细胞进行染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型。因此，具有还原能力的酵母细胞是无色的，而死细胞或代谢作用微弱的衰老细胞则呈蓝色或淡蓝色。 微生物细胞的大小是微生物重要的形态特征之一，由于菌体微小，只能在显微镜下测量。用于测量微主物细胞大小的工具有目镜测微尺和镜台测微尺。 目镜测微尺是一块圆形玻片，在玻片中央把5mm长度刻成50等分，或把10 mm长度刻成100等分。测量时，将其放在接目镜中的隔板上(此处正好与物镜放大的中间物像重叠)用于测量经显微镜放大后的细胞物象。由于不同目镜、物镜组合的放大倍数不相同，目镜测微尺每格实际表示的长度也不一样，因此目镜测微尺测量微生物大小时须先用置于镜台上的镜台测微尺校正，以求出在一定放大倍数下，目镜测微尺每小格所代表的相对长度。 镜台测微尺是中央部分刻有精确等分线的专用载玻片，一般将lmm等分为100格，每格长10μm，每格长（0.01mm），是专门用来校正目镜测微尺的。校正时，将镜台测微尺放在载物台上，由于镜台测微尺与细胞标本是处于同一位置，都要经过物镜和目镜的两次放大成像进入视野，即镜台测微尺随着显微镜总放大倍数的放大而放大，因此从镜台测微尺上得到的读数就是细胞的真实大小，所以用镜台测微尺的已知长度在一定放大倍数下校正目镜测微尺，即可求出目镜测微尺每格所代表的实际长度，然后移去镜台测微尺，换上待测标本片，用校正好的目镜测微尺在同样放大倍数下测量微生物细胞大小。 利用血球计数板在显微镜下直接计数，是一种常用的微生物计数方法。此法的优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬液（或孢子悬液）放在血球计数板载玻片与盖玻片之间的
酵母菌培养基
麦芽汁培养基和马铃薯葡萄糖培养基被广泛用于培养酵母菌和霉菌。马铃薯葡萄糖培养基有时也可用于培养放线菌。豆芽汁葡萄糖培养基也是培养酵母菌及霉菌的一种优良培养基。察氏培养基主要用于培养霉菌观察形态用。麦芽汁培养基为天然培养基，马铃薯葡萄糖培养基和豆芽汁葡萄糖培养基二者均为半合成培养基，而察氏培养基则为合成培养基。培养基配方中出现的自然pH系指培养基不经酸、碱调节而自然呈现的pH。 (一)麦芽汁培养基的配制 1．培养基成分 新鲜麦芽汁一般为10-15波林。 2．配制方法 (1)用水将大麦或小麦洗净，用水浸泡6-12h，置于15℃阴凉处发芽，上盖纱布，每日早、中、晚淋水一次，待麦芽伸长至麦粒的两倍时，让其停止发芽，晒干或烘干，研磨成麦芽粉，贮存备用。 (2)取一份麦芽粉加四份水，在65℃水浴锅中保温3-4h，使其自行糖化，直至糖化完全(检查方法是取0.5ml的糖化液，加2滴碘液，如无蓝色出现，即表示糖化完全)。 (3) 糖化液用4-6层纱布过滤，滤液如仍混浊，可用鸡蛋清澄清(用一个鸡蛋清，加水20 m1，调匀至生泡沫，倒入糖化液中，搅拌煮沸，再过滤)。 (4)用波美比重计检测糖化液中糖浓度，将滤液用水稀释到10-15波林，调pH至6．4。如当地有啤酒厂，可用未经发酵，未加酒花的新鲜麦芽汁，加水稀释到10-15波林后使用。 (5)如配固体麦芽汁培养基时，加入2％琼脂，加热融化，补充失水。 (6)分装、加塞、包扎。 (7)高压蒸汽灭菌100 Pa灭菌20 min。 （二)马铃薯葡萄糖培养基的配制 1、培养基成分 马铃薯20g 葡萄糖 2 g 琼脂 1.5-2g 水100ml 自然pH 2．配制方法 (1)配制20％马铃薯浸汁取去皮马铃薯200g，切成小块，加水1000m1。80℃浸泡lh，用纱布过滤，然后补足失水至所需体积。100 Pa灭菌20 min。即成20％马铃薯浸汁，贮存备用。 （2)配制时，按每100 m1马铃薯浸汁加入2g葡萄糖，加热煮沸后加入2g琼脂，继续加热融化并补足失水。 (3)分装、加塞、包扎。 (4)高压蒸汽灭菌100 Pa灭菌20 min。 (三)豆芽汁葡萄糟培养基的配制 1．培养基成分 黄豆芽10g 葡萄糖5g 琼脂 1.5-2g 水100ml 自然pH 2．配制方法