家兔血压调节实验报告解读

实验报告

专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日

（一）实验项目：家兔动脉血压调节

（二）实验目的：

1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。

2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。

3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。

4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。

（三）基本原理：（要求对写出关键点）

动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。

实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品

1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。

2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。

3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。

4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。

5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。

α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。

α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。

（四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）

1、仪器设备：婴儿秤、兔手术台、哺乳动物手术器械一套，BL-420生物机能实验系统，动脉夹、压力换能器等；

2、试剂用品：20%氨基甲酸酯（5mL/kg）、1%去甲肾上腺素、1%肝素、生理盐水、1g/L异丙肾上腺素、1g/L酚妥拉明、5mL 、10mL 、20mL 注射器各一支、三通管、插管、小烧杯等；

（五）实验的步骤与方法（列出主要步骤、方法要点）

1、动物手术：

（1）、麻醉、固定：家兔称重后，按5mL/kg从耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸酯。将家兔麻醉后，使其仰卧固定在兔手术台上。

（2）颈部手术：颈部备皮，沿颈前正中切开皮肤5~6cm，分离气管并做气管插管。分离两侧的迷走神经，穿线备用。手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术野。分离左侧颈总动脉、右侧颈外静脉，分别备线。

（3）插管肝素化后，行右侧颈外静脉插管，通过三通管接动脉血压描记检测装置，然后静脉注射1%全身肝素（按2mL/kg为标准）让家兔全身肝素化。

2、实验装置：

（1）准备检压系统：将动脉插管于压力换能器相连，通过三通管用1%肝素化充满动脉插管和压力换能器，排尽里面的气泡，然后关闭三通管备用。

（2）将记录动脉的压力换能器连接在BL-420生物机能实验系统的通道1

上，描记动脉血压。

（3）打开计算机，启动BL-420生物机能实验系统，点击系统菜单，选择实验项目，调整相关参数。

3、实验观察与记录：

（1）记录正常曲线；

（2）夹闭右侧颈总动脉，观察曲线变化；

（3）静脉给药：

①按0.1mL/kg静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素

②按0.1mL/kg静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素

③按0.1mL/kg静脉注射0.01%盐酸肾上腺素

④按0.2mL/kg静脉注射1%酚妥拉明

⑤按0.1mL/kg静脉注射0.01%肾上腺素

（六）实验参考指导（相关教材、参考资料、学习网站等）

机能综合实验报告——动脉血压调节

一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克（一） 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔（新西兰大白兔），2.5公斤，雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套，计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置，带三通针头的细塑料管2个，注射器若干，20%乌拉坦，0.3%肝素，去甲肾上腺素针剂，0.02g/L 肾上腺素，0.03g/L去甲肾上腺素，0.01g/L异丙肾上腺素，5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台，颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉，沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口，分离气管，再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经，穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明：给药体积均为0.2ml/kg；每次给药后可住生理盐水，将死腔内的药液注入静脉； 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 （1）夹闭一侧颈总动脉 （2）刺激一侧减压神经，双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端

（3）结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素

4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告 一、实验动物：小鼠 二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。 三、具体操作 1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。 2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药：常用的给药方式有： ①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。 5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢，用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两

家兔血压调节实验报告解读

实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品

1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）

动物实验报告

实验动物学实验报告 学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验

一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。

4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml。 3）心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，

生理学实验 家兔动脉血压的调节

实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心脏收缩力减弱， 传导速度减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时血管收缩，外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动，改变心输出量和外周阻力，从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体，对β受体作用很小，因而使外周阻力 增加，动脉血压增加，其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血 压升高，启动减压反射，可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器，刺激 电极，照明灯，万能支台，双凹夹，烧瓶夹，试管夹，气管插管，动脉夹，三通开关，动脉 导管，注射器(1ml、5ml、20ml)，有色丝线，纱布，棉花，1.5％戊巴比妥钠，1000U/ml 肝 素生理盐水，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 去甲肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液， 生理盐水。 【实验步骤】 1．连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2．手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5％戊巴比妥钠以 2.0ml／kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛，沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉， 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方 2～3cm处作“⊥”形切口，插入 气管插管，以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉，并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U／kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动

动物实验报告

动物实验（小鼠）的一般操作技术 实习日期：2007—11—13 一目的和要求： 通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。 二实习内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖 三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉，注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。 四讨论和结论： 通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。

家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)

家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。

实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作

实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,

家兔血压变化

结果讨论分析： 1血压的二级波是由于呼吸运动引起的血压波动。心搏为一级波，呼吸波为二级波。吸气时先是下降，继则上升；呼气时先是上升，继则下降，频率与呼吸频率一致。 2.夹闭对侧颈总动脉血压升高 3.刺激迷走神经血压下降 刺激迷走神经后，家兔的血压、心率恢复较快，说明迷走效应持续时间不长。 4. 刺激减压神经血压下降 刺激减压神经后，心率并不是预料中的无明显变化，变化明显，但不如刺激迷走神经显着。验证了刺激交感神经引起了迷走中枢的活动。 5.静脉注射0.1g/L去甲肾上腺素0.5ml，血压升高 注射去甲肾上腺素后，血压和心率都保持了长时间的变化，说明可能去甲肾上腺素对血压和心率的调节能力持续性好。 6.静脉注射10-2g/L乙酰胆碱（0.1ml/kg体重），血压下降 首先，乙酰胆碱作用与心脏的M受体，引起心率减慢，心肌收缩力减弱，房室传导减慢甚至阻滞，心输出量明显减少，血管舒张血压下降。其次，乙酰胆碱还作用于血管内皮的M受体，使血管内皮细胞释放“松弛因子”，引起血管平滑肌舒张，外周阻力下降。最后，乙酰胆碱激活交感神经的突触前M-R，产生突触前调制效应，导致交感神经末梢释放去甲肾上腺素减少，从而减少交感缩血管紧张效应。这不但可降低外周阻力，减少心输出量，还可扩张容量血管而减少循环血量，最终也导致了血压的下降。 注射乙酰胆碱后，血压急剧下降，而心率暂时没有减慢，可能是因为血压通过血压感受器对心率本身有调节效应，之后血压较快恢复之后，心率才明显减慢。这里血压和心率是交错受到乙酰胆碱调节的，但最终心率调节持续时间更长，说明乙酰胆碱更趋向于以调节心率为目的。 实验结论： 1.从以上实验分析中可以发现，无论是血管壁的被动收缩还是刺激不同的神经，其本质都是通过心交感神经与心迷走神经对心血管系统产生影响。即直接支配心血管活动的神经为交感神经和迷走神经。由于这两种神经节后神经末梢分别释放肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱作为递质，因此肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱所产生的效应与刺激两种神经是相对应的。 2.从以上实验分析中，可以总结出心输出量是影响动脉血压的因素：心输出量由两个因素决定：心搏出量和心率。心搏出量增加时，心脏射血增多，动脉血压会升高（主要是收缩压），心率增加时，心舒期缩短，流向外周的血液不充分，因此心舒末期留于主动脉的血量增多，致使血压增大。心迷走神经或心交感神经兴奋，作用于心肌细胞，控制心输出量，会影响血压的升降。

兔子实验报告

生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适

应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备

青蛙解剖实验报告

2012 级应心班《人体解剖生理学》实验内容 一、人体基本组织的观察 （一）实验目的观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。 （二）实验材料四大基本组织的永久装片；显微镜 （三）实验要求正确使用显微镜，观察各种组织的基本特征。注：实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。 二、人神经系统的形态观察 （一）实验目的 1. 观察脊髓的形态结，了解脊神经的组成。 2. 观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位，了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3. 观察间脑、小脑和大脑的形态结构，辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。 （二）实验材料脊髓模型；脑干模型；人脑模型；脊髓横切片；显微镜 （三）实验要求观察各模型加深对神经系统的认识；正确使用显微镜，观察脊髓横切片。注：实验前请复习神经系统的结构组成和功能。 三、反射弧的分析和脊髓反射的观察 （一）实验目的 1. 通过用脊蛙（去除脑保留脊髓的蛙，成为脊蛙）分析屈肌反射的反射弧的组成部分，探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2. 观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。 （二）实验原理 （三）材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械 1 套，铁支架，电刺激器，刺激电极，秒表，棉球，纱布，培 养皿 2 个，烧杯 1.3 药品 0.5% 硫酸， 1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物：取青蛙一只，用剪刀横向插入口腔，从鼓膜后缘处剪去颅脑部，保留下颌部分。以棉球压迫创口止血，然后用止血钳夹住下颌，悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射：将浸以 0.5%硫酸的小滤纸片一块，贴在青蛙腹部下段的皮肤上，可见四肢向此处搔扒，直到去掉滤纸片为止，之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定：用培养皿分别盛 0.5%和 1%硫酸溶液，将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中，同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间，即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次，然后用纱布拭干。按上法重复三次，求其平均值，此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤：在左侧后肢趾关节上方，将皮肤作一环状切口，将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1% 硫酸刺激左趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.3 1% 硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.4 1% 硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上，观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干，两侧结扎，中间剪断，1%硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动。 2.6.6 刺激神经两端：以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端，观察腿部反应。 2.6.7 破坏脊髓：以探针捣毁青蛙脊髓后，以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和 外周端，观察腿部反应。 2.6.8 刺激腓肠肌：直接刺激右侧腓肠肌，观察有何反应。

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管

内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察

动物实验报告修订稿

动物实验报告 集团文件发布号：（9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-

实验动物学实验报告学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠

尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线

实验动物学实验报告

实验动物学实验报告 Document number：NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT

实验一大、小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。 二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。 三、实验步骤 1、抓取和固定 抓取：左手抓小鼠的尾根部 固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。 同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定： 抓取和固定小鼠 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。 同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。 3. 给药 灌胃法 按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。

固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。 用大鼠重复同样操作 注射给药 皮下注射 用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤， 右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位 用大鼠重复同样操作 腹腔注射 以左手固定小鼠，使腹部向上， 右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。 用大鼠重复同样操作 尾静脉注射 先将动物固定在暴露尾部的固定器内， 用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，

影响家兔血压的因素

影响家兔血压的因素 福建医科大学教案 （首页） 课程名称：机能学 授课系别：临床本科 年级： 对象班级：临床本科 实验五动脉血压的调节 教学目的观察一些因素对动脉血压的影响 本单元（章节） 9 学时数课程大课（）类型实验课（√）讨论课（） 教学内容 1. 实验目的原理 2. 操作步骤 3. 观察项目与预计结果夹闭颈总动脉；牵拉颈总动脉；电刺激迷走神经；电刺激减压神经； 静脉注射去甲肾上腺素；静脉注射肾上腺素；静脉注射异丙肾上腺素；静脉注射乙酰胆碱 4. 学生操作 5. 总结 6. 整理实验室 重点（△）时间难点（○）分配疑点（）（分钟） 举例/教具 10 45 20 255 15 15 讨论、思考题、作业：参考书目： 1.生理学朱大年编着第8版北京：人民卫生出版社 2.机能学实验林默君等编着 授课教师：张明芳 2015年9月24日 实验动脉血压的调节 一、目的：观察一些因素对动脉血压的影响 二、材料：家兔、血压换能器、手术器械、D-951实验系统、20%乌拉坦、生理盐水、%肝素、1/10000去 甲肾上腺素、1/10000肾上腺素、1%立其丁、%心得安、1/1000多巴胺、1/10000异丙肾上腺素、1/10万乙酰胆碱、1%阿托品三、实验方法： 1、麻醉

2、固定 3、气管插管 4、分离右颈总动脉、减压神经、迷走神经 5、左颈总动脉插管 6、装置及仪器联接 四、观察项目、结果、讨论 1、刺激支配心脏的迷走神经，引起心率下降、心输出量下降，导致动脉血压下降；刺激减压神经，导致动脉血压下降，减压神经为主动脉弓压力感受器传入神经，刺激模拟压力感受器传入增加，经减压反射引起动脉血压下降；牵拉颈总动脉刺激颈动脉窦压力感受器，压力感受器传入增加，经减压反射引起动脉血压下降；夹闭颈总动脉，使颈动脉窦压力感受器所受的刺激减弱，经减压反射引起动脉血压上升。 2、NA主要作用于α受体，使外周阻力增加，心输出量增加，血压上升。Adr主要作用于β受体，使心输出量增加，外周阻力增加，血压上升。 3、立其丁阻断α受体，使外周阻力下降，引起舒张压下降。使用立其丁后NA主要作用的α受体被阻断，使 NA缩血管作用减弱，而NA 对β受体的作用因β1、β2受体作用相反，可能互相抵消，所以NA升血压作用很弱。Adr主要作用于β受体，阻断α受体对其影响较小，其作用以β1受体为主，血压上升。异丙肾上腺素主要作用于β受体，其效应与被立其丁阻断后的Adr相似。心得安为β受体阻断剂，其主要作用为扩张血管、抑制交感中枢、抑制肾素分泌，使血压下降。 4、多巴胺兴奋β1、α、DA受体，因立其丁和心得安已经阻断α、β受体，这时主要作用于DA受体，使血压下降。Ach主要作用于M受体，使心率下降，血压下降。当M受体被阿托品阻断后，Ach主要作用于N1受体，出现类似于交感神经兴奋的作用。 5、放血后，血容量下降，血管充盈压下降，动脉血压下降；经过一段时间以后，机体出现代偿：⑴通过减压反射，使血压有一定的恢复⑵血压下降通过容量感受器，引起ADH分泌增加，再使尿量减少、外周阻力增加、容量血管收缩，使血压增加。由于阻力血管收缩大于容量血管收缩，毛细血管血压下降，组织液回收增加，有利于血容量恢复。以上因素都有利于血压逐渐恢复。 回输血后，血容量减少现象得到彻底纠正，血压恢复正常。

家兔血压实验报告

家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]

家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器