临床微生物标本采集与运送标准操作规程

3872 h 24 h () 1 25 cm (30 s ) () () () 1 2 3 424 h 330 min 2 5101810 ml 2 ml 1 2 h 临床微生物标本采集与运送标准操作规程

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

一、血培养指征

患者出现寒战，体温超过℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。

二、采血时机

一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物后，以寒战、发热时采集为宜。

三、采血流程

一消毒

．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。

．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达以上，待消毒液挥发干燥后常需以上穿刺采血。二静脉穿刺和培养瓶接种

成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。

三注意事项

．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。

．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。

．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。

．细菌性心内膜炎：在内取血次，每次间隔不少于；必要时次日再做血培养次。

．采血量：以培养基与血液之比：为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血～，婴幼儿每次每培养瓶采血。

四、运送要求

．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在内。如果不能及

2 3 ()() () (1)() (2) (3)() (4) (5) ()() (1)(5) (2)() () 1 23 1 2 312324 h 43 时送检，宜置于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。

．送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。．安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。五、报告要求

一紧急口头电话报告

血培养出现阳性报警时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头电话报告。口头报告包含以下内容，并记录在案。

报告者全名或工号；

报告的时间；

所联系医生的全名或工号；

报告镜检结果并强调其紧急价值；

确认临床医生收到报告并复述结果。

二最终结果书面报告

无菌生长培养天无需氧菌和厌氧菌生长；

阳性培养结果最终鉴定结果、最终药敏结果。

三其他报告和记录

．标本被拒收时，需即刻通知临床立即重新采血，并记录在案。．最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需立即通知临床，同时必须在书面报告上提供正确的结果，注明变更的内容。

．其他需临床注意的事项的记录，如：采血量不足、标本转运时间过长、标本采集份数不够等

痰标本采集与运送标准操作规程

一、采集目的

一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。

二、一般原则

．采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。

．宜采集清晨第二口痰液。

．对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天次，连续～天。不建议内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。

．怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集天清晨痰液送检。

三、采集方法

() 1()(250 ml 500 m1) 2 335 5 ml 5 min 4 () () 1() 2 3 4(40053 3 kPa <400 kPa) 56(15 s 1 2 min) 7()() 2 h 424 h 1 2一自然咳痰法与雾化导痰法

．用物准备：无菌容器盒、生理盐水或、化验单。．核对患者床号、姓名等。

．无痰或痰量极少者可用％～％氯化钠溶液雾化吸入约后留取痰液。

．如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。

二支气管镜法

鼻或口腔插人支气管镜。常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。

三经人工气道吸引法

．用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器试管、化验单。

．核对患者床号、姓名等。

．将患者头部转向操作者一侧。

．进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压成人：．～．；小儿：．。

．将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。

．折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过，吸痰前后需吸入高浓度氧气～。

．将痰液注入无菌容器试管内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器试管内。

四、运送和保存

应在之内送至实验室，否则应℃冷藏，但放置时间不可超过。

手术部位感染标本采集及运送标准操作规程

一、一般原则

．在抗菌药物使用前，且仅在有临床感染症状或伤口恶化或长期不愈合时采集标本。

．皮肤或黏膜表面的清洁。

(1)() (2) 3 4 1 2MW&E TRANSWAB () 1 2 1 ml 3 () 11mm 2 () 1 2 ()()() 30 min ()24 h 闭合伤口和穿刺物标本：消毒方法同血培养标本的皮肤消毒见《血培养标本采集和运送标准操作规程》。

开放伤口：无菌生理盐水充分冲洗伤口部位。不可以用消毒剂。．采集新鲜的感染组织，避免采集浅表的组织碎屑。

．若可以采集穿刺物或活检标本，应避免拭子标本。

二、容器

．较大的标本：含有少量生理盐水的带螺纹口的无菌塑料容器。．标本较小或拭子标本：运输培养基，适用于需氧和厌氧菌。

三、采集方法

一封闭性脓肿

．注射器穿刺抽取脓液。

．若无法抽到脓液，应先皮下注射少量无菌生理盐水，再次穿刺抽吸脓液；若脓液过多，应先切开引流，在基底部或脓肿壁采集标本。脓液的量以大于为宜。

．排除注射器内部及针头的气体，用无菌橡皮塞封闭针头送检；或直接打人血培养瓶中。疑为厌氧菌，应迅速将脓液打人厌氧血培养瓶中。二组织和活检标本

．采集足够大的组织，体积以为宜，避免在坏死区域采集。

．将小块的组织放在运输培养基内；较大的放在无菌容器中，并加入少量无菌生理盐水。

三开放伤口

．无菌生理盐水彻底冲洗浅表部位，去除表面的渗出物和碎屑。．用拭子深入伤口的基底部或伤口一正常组织边缘部采集两个标本，分别用于培养和革兰氏染色。

四、标本的标识

填写患者信息、标本类型深部组织、表浅组织、脓肿和穿刺物等、标本的来源腹腔、腿和上臂等，记录标本采集的日期和时间及是否在使用抗菌药物前采集，选择检查项目需氧培养或厌氧培养。

五、标本的送检

为了更好地分离病原菌，标本应在采集后的内送到实验室。送检时应保持

标本的湿润尽量采用运输培养基，组织可以放在生理盐水中。在送检前或运送过程

中，禁止将标本放于冰箱。若不能及时送检，运输培养基中标本应室温保存，但最长不可超过。

() 1011020ml 200501()1020 ml () 0252cm 1020 ml () 10050115 ml 1020 ml 2o 2505()1020 ml 300501 1020 ml () 2 h()4尿液标本采集和运送标准操作规程

一、采集时机

宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。

二、采集方法

一清洁中段尿

．女性：采样前用肥皂水或．％的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿～于无菌容器内。

．男性：采样前用肥皂水或．％～．％的聚维酮碘碘伏溶液等消毒液清洗尿道口，擦干后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿～于无菌容器

二耻骨上膀胱穿刺

主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。先用

．％的聚维酮碘溶液等消毒液消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合处刺人膀胱吸取尿液～于无菌容器内。

三导尿管尿

．直接导尿法：使用．％～．％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约，再留取中段尿液～于无菌容器内。

．留置导尿管法：医院内尿路感染中，临床最常用此法。采集前先夹住导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用．％～．％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管从采样口或靠近尿道的导尿管管壁抽取～尿液于无菌容器内。．回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，先用．％～．％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒吻合口，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集～尿液于无菌容器内。

四小儿收集包

对于无自控能力的小儿可应用收集包采集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。

三、标本运送

标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存。如果不能及时运送或接种，应℃冷藏，

8 h 123424 h 56但保存时间也不应超过。

四、注意事项

．不应从集尿袋中采集尿液。

．尿液中不应加防腐剂或消毒剂。

．若尿液培养前患者曾使用抗菌药物，应反复多次送检。．多次采集或尿不应用于尿液培养。

．除非进行流行病学调查，不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。

．培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等，进行综合判断。

微生物标本采集、运送及管理

微生物标本采集、运送及管理 来源:https://www.wendangku.net/doc/eb2051479.html,时间:2007-10-08 字体:[大中小] 收藏我要投稿文章出处：朱敏转载请注明出处 血液 血液是实验室所接收的最重要的标本之一。送检血液标本有助于识别由细菌、真菌引起的菌血症、脓毒血症、心内膜炎及人工瓣膜感染、化脓性血栓性静脉炎、以及其它感染或导管引起的感染（vascular grafts）.因为大量的各种微生物与血源性感染有关，所以用于血培养的培养基应该能广泛支持各种细菌的生长。所幸的是在过去的十多年间，已经发展出许多用作血培养的改进的培养基及技术，产生出了高度可靠的手工血培养基和自动化血液培养系统。 血标本量，采血时机，及采血量 对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助我们区分是病原菌还是污染菌，特别是对于凝固酶阴性的葡萄球菌、棒状杆菌、viridans链球菌、以及布鲁氏菌要考虑其污染的可能性。一般来说，单一采集的血培养标本更可能被污染，而要检出具有代表性的病原体则往往要在两个以上部位采集两份以上的血作培养。在24h内采血部位不得多于4个以上。此限制考虑到一天中每次发热时只采集2个部位的血作2份血培养就可评价2次发热。作再多的血培养都没有必要。根据几份研究资料表明，95%以上的菌血症都是在头2、3份血培养中检测出来的。 采集血标本应该在使用抗生素之前，尽管有些培养基含有消除抗生素影响的物质。理论上说，采血时机应恰好在发热高峰之前；而实际上应该是在发热高峰后立即采血。采血的总量也是影响检出病原体的重要因素之一。在一项研究中，增加血培养的血量从40ml到60ml可提高检出率10%。对于成人，每次穿刺应采血20～30ml，。对于儿童的采血量就要求少一些，因为其每毫升中的细菌要多些。血与肉汤的比例以1:5～1:10更有利于检出细菌，这或许是肉汤稀释了抑菌物质的缘故。大多数商业血培养系统为了最佳检出，都规定了必要的血标本量。对于标本量不足的血培养标本不必拒收，除非使用的是Isolator system。应定时举办讲座，向临床讲解最佳血培养技术。 初步处理 血培养标本的初步处理需要视所用的培养系统而定。送检的血培养瓶应放于室温待处理。对于一些连续监测系统，培养瓶需要用针通气或将附件插在瓶顶用于压力测定，等等。 直接法 我们不推荐血标本直接作Gram染色，因为通常血流中的细菌太少。一旦检测到有细菌生长就应该取培养瓶的肉汤或培养瓶固相琼脂的细菌作Gram染色。Gram染色报告应该详尽描述以便于选择适当的抗生素。例如，排列的Gram阳性球菌应该作出描述，i.e.,成对的，簇状的，或链状的；而Gram阴性杆菌时，有描述为细小或球杆状的。 当怀疑阳性肉汤中为金黄色葡萄球菌时，要直接作一个…2-h凝固酶试管法实验?，以快速作出鉴定。有各种资料表明，有些商业鉴定板条能够直接用阳性肉汤接种鉴定出Gram阴性菌。 血培养系统

临床检验标本采集、运输、保存操作规程

临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。

3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。

医院尿液标本采集和运送操作规程

文档序号：XXYY-ZWK-001 文档编号：ZWK-20XX-001 XXX医院 尿液标本采集和运送 操作规程 编制科室：知丁 日期：年月日

尿液标本采集和运送操作规程1．目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2．范围 医院科室／部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3．定义 无。 4．内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.2耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接

从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.3.3回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液，这种方法易污染产生假阳性。 4.2.4.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。 4.3标本运送：标本采集后应及时送检，室温下保存时间不应超过2小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）。如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8小时。

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

检验标本的采集与运送规范

检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；

临床微生物标本采集注意事项

临床微生物标本采集注意事项一 .血液标本1.血液标本采集应尽可能抽取患者动、静脉血管中血液。 2.血液标本采集自留置管、中心静脉导管内，应在申请检验单上注明。 3.不管临床症状经历的严重程度，但患者血液中病原菌浓度水平相当低，因此临床应多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次，成人每次血量10~20ml，可提高检出率。二 .呼吸道标本1.上呼吸道标本 A.咽拭子：用无菌棉拭子直接擦拭咽后壁、扁桃体、或假膜边缘处。 B.口腔内溃疡：用无菌棉拭子直接在溃疡处采集标本。 C.鼻拭子：用无菌棉拭子插入鼻孔约 2.5cm，接触鼻黏膜采集。 2.下呼吸道标本采集①自然咳痰法：A.患者早上起床后用清水漱口，不要刷牙，收集从下呼吸道咳出的第二口痰，吐在塑料痰盒中。 B.痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液，使痰液易于排出。 C.对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。②气管镜下采集法：用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本，但这种方法患者有一定痛苦。三 .尿液标本 1.导尿虽然可以减少污染，但多次重复导尿可造成逆行感染，因此多采用中段尿，简单易行，又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。 2.女性：成年女性外阴部以肥皂水清洗，再用无菌水洗净，用无菌纱布擦拭，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿3毫升，置于无菌容器内。 3.男性：用肥皂水清洗尿

道口，后用清水洗后取中段尿。包皮过长者为防止包皮内细菌污染，可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。4.儿童：采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多，高度怀疑尿路感染，无细菌则可否定，细菌数中度增加时，有必要用膀胱穿刺术或导尿采集尿液。 5.为确定菌尿是否来自肾脏，可通过膀胱镜，输尿管插管采集左右肾盂尿。四 .大便标本1.自然排便采集法：自然排便后，可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2-3克，粘液状大便取絮状物，盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。 2.直肠拭子法：适宜不易获得大便或排便困难的患者及幼儿。方法是将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，然后插入肛门约4-5cm（幼儿约2-3cm）处，轻轻在直肠内旋转，檫取直肠表面粘液后取出，置于无菌试管或保存液中送检。 3.采集大便标本应在急性期，使用抗生素前进行，并要采集新鲜粪便。五 .生殖道标本 1.男性应冲洗尿道口，采集从尿道口溢出的脓性分泌物或用男性专用拭子插入尿道内2-4厘米取分泌物。 2.前列腺液可用前列腺按摩法采集标本于无菌试管。 3.女性则用窥器扩张阴道，用无菌棉拭子可根据临床需要采集阴道、宫颈、宫内分泌物。六 .脓液及创伤分泌物标本尽可能在应用抗生素前采集标本。当创伤出血时，敷用药物在2小时内以及烧伤在12小时内不应采集标本。采集标本时应注意分泌物的性状、色泽和气味。标本采集需注意无菌操作，及时送检。 1.开放性感染和已破溃的化脓灶标本采集前先用灭菌生理盐水

检验标本采集规范

检验标本采集规范 一、常规标本采集规范 （一）静脉血标本采集规范 1．真空采血标本对应真空管 真空管项目备注 血培养瓶血培养 儿童1-2ml 成人8-10ml 枸橼酸抗凝管（1：9抗凝）（蓝帽） 凝血全项 （PT、APTT、FIB、TT、D-D、FDP、 AT3） 标本采集2ml （不能多不能少） 枸橼酸抗凝管 （1：4）抗凝（黑色）血沉 至刻度线 （不能多不能少） 促凝剂管（黄帽）生化全项、肝功能、肾功能、血糖、血 脂、心肌酶、电解质、RF、ASO、血 清铁、血清同型半胱氨酸、淀粉酶 标本采集量4-5ml 促凝剂管 （黄帽） 肌钙蛋白I、人绒毛膜促性腺激素标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） 乙肝三系、病毒四项标本采集量4-5ml 无添加剂管甲状腺激素五项，雌激素五项，甲胎蛋标本采集量4-5ml

（红帽）白、癌胚抗原、CA125、CA19-9、CA15-3 总前列腺特异性抗原 无添加剂管 （红帽） 结核抗体、肺炎支原体标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） PCR 标本采集量4-5ml EDTA-2K 抗凝管（红帽）血常规、血型、CRP 标本采集量2ml 可以使用同一管 血 网织红细胞计数 外周血涂片 糖化血红蛋白标本采集量2ml 交叉配血标本采集量2ml 2．理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00。 3．采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 4．采血顺序 为血培养管→凝血项目管（蓝帽）→血沉管（黑帽）→促凝剂管（黄帽）→无添加剂管（红帽）→EDTA管（紫帽） 5．在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，血培养优先考虑需氧瓶，其他管应首先考虑凝血（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因为这2种标本对血量要求最严格，且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。 6．检验申请条码贴在采血管上时，请注意不要将采血管完全包裹，应留出空白，以便观察液面高和血液状态，若未打印条码，请将采血管上的

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

【2017年整理】血标本采集运送、交接管理制度与流程

【2017年整理】血标本采集运送、交接管理制度与流程血标本采集运送、交接管理制度与流程 为落实执行《临床输血技术规范》第三章“受血者血样采集与送检”有关规定，确保血液样本的有效性，防止发生差错事故，以及便于追踪调查，特制定本制度。适用于临床输血工作中血标本的采集、标识、运输、交接、检测、保存和销毁等工作环节的管理。 一、血标本采集要求 1、人员要求:采集交叉配血、血型血样的护士必须具有有资质并接受过相关的血标本采集的培训，实习或进修护士不得进行。 2、采集血标本时要求采血护士必须认真核对受血者身份，如果患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清，通过询问患者的亲属确认患者身份。只有当《临床输血申请单》与患者腕带的资料完全一致时方可采集血标本，并在采血后将标有患者姓名、性别、年龄、住院号、检测项目的条形码标签贴在采血试管上并与《临床输血申请单》资料仔细核对。绝对禁止通过床头卡来核实患者身份。 二、血标本的要求: 1、ABO及RhD血型鉴定试验血标本推荐用EDTA?K2抗凝，血量不少于2m1;交叉配血、红细胞不规则抗体筛选试验血标本推荐用白盖不含抗凝剂管，血量至少5ml。 2、疑难交叉配血的血标本要求送检2管，1管抗凝(推荐EDTA?K2抗凝，另1管不抗凝，血量依照2.1要求。) 3、交叉配血标本采集要求，凡患者上次输注过血制品，再次输血仍须重新抽取交叉配血血标本以防止输血反应的发生。 4、受血者血标本采集

(1)血标本采集前应征得受血者知情同意，采血时采血人员持《临床输血申请单》和血型鉴定报告认真核对受血者身份，若患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清.通过询问患者的亲属核对患者身份。《临床输血申请单》的相关信息与受血者的资料完全一致时方可采集血标本，二者不一致时不得采集血标本。 (2)采集血标本时严格执行无菌操作和正确穿刺。 (3)一位采血人员不得同时采集两位以上患者用于交叉配血的血标本。 (4)血标本的标识:血标本采集后，采血人员必须于患者床边在血标本上贴上条码，内容至少包括患者姓名、性别、年龄、病案号、检测项目及血标本采集时间等信息采血人员在《临床输血申请单》上签名并注明采血时间。 5、受血者血标本的运输: 1)标识好的血标本连同《临床输血申请单》由医护人员送往输血科。 ( (2)紧急送检血标本应符合输血科紧急检测项目的相关要求，并在申请单上注明“紧急”字样。 (3)送外单位检测的血标本应有试管盖封口，同《疑难配血登记表》一起放入标本袋并密封，观察无血液渗漏后方能送检;若采取4?条件送检，应避免该血标本与冰盒等接触发生溶血。 6、受血者血标本的交接: (1)血标本送交人员与输血科人员交接血标本时按照3. 2的要求对血标本进行检查， 并仔细核对血标本信息与《临床输血申请单》是否一致等。 )确认无误后，由血标本送交人员和接收人员共同在《输血科血标本交接记录表》(2 上签名并注明送检时间。

病原微生物标本采集、运送

病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送

1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

试题微生物标本采集与运送

《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分（每题5分） 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分（每题5分） 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙（不用牙膏）或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则

尿液标本采集和运送操作规程

尿液标本采集和运送操作规程 1 Women and Children ' Hospital 1.目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2.范围 医院科室/部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3.定义 无。 4.内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿 液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液 等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL 于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒 尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段 尿10 - 20mL于无菌容器内。

422耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿 液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取 中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.233回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液， 这种方法易污染产生假阳性。 424.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。

(完整版)临床常见微生物标本的采集与运送

临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药 物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防 腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存， 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会 影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4 度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织

（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送 1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的

痰培养标本采集 与运送标准操作规程

鹤壁京立医院痰培养 标本采集与运送标准操作规程(SOP) （试行） 一、目的 正确采集、运送痰标本。 二、内容 （一）采集目的 一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。 （二）一般原则 1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2 宜采集清晨第二口痰液。 3 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。不建议24h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。

4 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。 （三）采集方法 1 自然咳痰法与雾化导痰法 1.1 用物准备：无菌容器、生理盐水、化验单。 1.2 核对患者床号、姓名等。 1.3 无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml 雾化吸入约5min后留取痰液。 1.4 如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘取牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。 2 经人工气道吸引法 2.1 用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。 2.2 核对患者床号、姓名等。 2.3 将患者头部转向操作者一侧。

2.4 进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：40.0～5 3.3kPa；小儿：＜40.0kPa）。 2.5 将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。 2.6 折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2min）。 2.7 将痰液注入无菌容器内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器内。 （四）运送与保存 应在2h内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24h。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范 一血常规检验标本 1用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。 2注意事项： A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 二红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 1静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 三凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 1静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。 四血型与交叉配合标本 1用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。 2注意事项： A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五血流变检查标本 1 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽） 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 六尿液常规检查标本 1住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。 2门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。 3尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。 标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 七尿液特殊检查标本 1尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。 A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间 分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。 B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。 C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。 2尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。 八粪便常规检查标本 1一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。 2样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。 3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。 4做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。 九浆膜腔积液检查标本 1标本一般由临床医师无菌穿刺采取。

血培养标本的采集与运送操作规程

血培养标本的采集与运送操作规程 一目的 1、确保血标本样本培养的准确性。 2、采集血标本做细菌培养。 二用物准备 一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带 三操作方法及程序 1、洗手、戴口罩。 2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒 至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。 3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。 4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。 5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。 6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。同时采集标本间隔时间小于5分钟。 7、立即送实验室室温放置不超过12小时。 四注意事项 1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。 4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。 5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。 6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。