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尼氏染色液(亚甲蓝法)

简介：

尼氏体(Nissl body)或称尼氏小体是分布于神经细胞胞质内的三角形或椭圆形小块状物质，能被碱性染料如硫堇、亚甲蓝、甲苯胺蓝和焦油紫等染料染成紫蓝色。各种神经细胞内都含有尼氏体，但其形状、数量、分布位置常常不同。尼氏体也存在于树突中，但不在于轴突和包体的轴丘。尼氏体会因为生理状态的变化而变化，尼氏体是神经元内合成蛋白质合成的重要部位，当神经元受到刺激后，包体内的尼氏体会明显减少。

Leagene 尼氏染色液(Nissl Stain ，亚甲蓝法)主要优点是操作简便、染色稳定、适用范围广，可以用于石蜡组织切片的尼氏物质、神经元等的染色，尼氏体的存在和消失是神经细胞是否受损的重要指标，当发生脑炎、脑缺血、轴突反应等情况时，尼氏体会发生溶解甚至消失。

组成：

操作步骤(仅供参考)：

1、新鲜组织固定于20%甲醛液中，常规脱水包埋。

2、切片厚5μm，常规脱蜡至水。

3、 Methylene Blue Stain 滴染。

4、入Nissl Differentiation 分化1～3min ，在显微镜下观察至尼氏体清晰为止。

5、入Ammonium Molybdate Solution 处理切片。

6、蒸馏水冲洗。

7、常规脱水透明，中性树胶封固。

染色结果：

尼氏体及核仁

蓝色背景

红色或粉红色

注意事项：编号名称 DK0020 3×50ml Storage 试剂(A): Methylene Blue Stain 50ml RT 避光试剂(B): Nissl Differentiation 50ml RT 试剂(C): Ammonium Molybdate Solution 50ml RT 使用说明书 1份

1、尼氏体离体后容易溶解，所以组织取出后应立即固定，否则难以着色。

2、组织固定起着非常重要的作用，固定可采用乙醇、Carnoy固定液或中性福尔马林溶液。

3、染色后的标本务必避光保存，否则容易褪色。

4、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

有效期：12个月有效。

软骨染色液(番红O法)步骤及注意事项

软骨染色液(番红O法)步骤及注意事项货号：G2540 规格：100ml 有效期：12个月有效产品简介：软骨组织由软骨细胞、软骨基质和纤维组成，软骨组织及其周围的软骨膜构成软骨。软骨根据基质内所含纤维素成分不同分为透明软骨、弹性软骨、纤维软骨。软骨染色方法有很多种，例如甲苯胺蓝法、阿利新蓝法、番红O法等。番红0软骨染色的原理在于嗜碱性的软骨与碱性染料番红O结合呈现红色。番红O是一种结合多阴离子的阳离子染料，其显示软骨组织是基于阳离子染料与多糖中阴离子基团（硫酸软骨素或硫酸角质素）结合。自备材料： 10%福尔马林固定液、脱钙液、蒸馏水、Weigert铁苏木素、系列乙醇等。操作步骤（仅供参考）： 1.标本的处理：10%福尔马林固定、脱钙、石蜡切片。 2.常规脱蜡至水。 3.入新鲜配制的Weigert染液染色3-5min。 4.酸性乙醇分化液分化15s。 5.蒸馏水洗10min。 6.（可选）在固绿染色液内浸染5min，蒸馏水洗1min。 7.入Safranin O stain内浸染1-2min，蒸馏水洗1min。 8.分别用95%乙醇、无水乙醇脱水。

9.二甲苯透明，光学树脂封固。染色结果：软骨基质深红色软骨细胞核蓝色软骨细胞浆红色细胞核灰黑色注意事项： 1.需要显示细胞核时，尽量采用铁苏木素染色，其着色力强色调浓，一般的苏木素着色力不强。 2.Weigert苏木素染液不可预先配制后放置，配制好后一般24h失去染色能力。 3.切片在Safranin O stain中染色不宜过长，否则易导致背景的深红色不易分化掉。 4.Safranin O stain染色后，不宜在低浓度乙醇脱水，否则易褪色。 5.95%乙醇脱水时间不宜过长。 6.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

尼氏Nissl染色

尼氏(Nissl)染色液产品简介：碧云天生产的尼氏(Nissl)染色液(Nissl Staining Solution)是神经生物学家广泛使用的一种Nissl染色液，用于石蜡或冰冻切片神经元细胞浆中的尼氏小体(Nissl body)染色。 Nissl染色是以德国的精神病学家和神经病理学家Franz Nissl的名字命名的。 Nissl染色液染色后呈蓝紫色，常用于显示脑或脊髓的基本神经结构。Nissl小体大而数量多，说明神经细胞合成蛋白质的功能较强；相反在神经细胞受到损伤时，Nissl小体的数量会减少甚至消失。本Nissl染色液染色的有效成分是Cresyl violet。Cresyl violet可以和RNA或DNA结合，可以染色粗面型内质网上的核糖体，也可以染色细胞核。染色后使细胞体呈现斑驳的(mottled)蓝紫色染色。一个包装的本染色液至少可以染色200个样品。保存条件：室温避光保存，至少一年有效。注意事项：特别注意：Nissl染色液的染色能力很强，并且染色后很难去除，请注意勿使染色液沾染皮肤和衣物等。需自备4%多聚甲醛、70%乙醇和95%乙醇。如果需要脱水、透明和封片处理，还需自备二甲苯，中性树胶或其它封片剂。如果样品是石蜡切片，需自备90％乙醇，无水乙醇以及二甲苯。样品数量较多时，可以使用碧云天生产的染色架和染色缸，便于操作。第一次使用本试剂盒时建议先取1-2个样品做预实验。为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。使用说明： 1. 样品处理 a) 对于石蜡切片：二甲苯中脱蜡5-10分钟，共三次。注：脱蜡不充分会导致染色不均匀。无水乙醇5分钟。 90%乙醇2分钟。 70%乙醇2分钟。蒸馏水2分钟。 b) 对于冰冻切片：蒸馏水2分钟。 c) 对于培养细胞：用4%多聚甲醛固定10分钟以上。蒸馏水洗涤2分钟。换用新鲜的蒸馏水，再洗涤2分钟。 2. 尼氏(Nissl)染色对于上述处理好的样品：尼氏(Nissl)染色液染色染色3-10分钟(可以根据染色结果和要求调整时间，染色时温度提高到37-50℃对于25-50微米等较厚的切片可以使染色更均匀）。蒸馏水洗涤2次(每次数秒钟即可)。 95%乙醇约5秒。此时，如果需要直接观察，可以用70%乙醇洗涤2次。如需脱水、透明后封片按后续步骤进行，70%乙醇洗涤后仍可按照

HE染色和尼氏染色

HE染色 .HE染色简介: 苏木精一伊红染色法（hematoxylin-eosin staining ），简称HE染色法，石蜡切片技术里常用的染色法之一。苏木精染液为碱性，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色；伊红为酸性染料，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。由于组织或细胞的不同成分对苏木精的亲和力不同及染色性质不一样。经苏木精染色后，细胞核及钙盐粘液等呈蓝色，可用盐酸酒精分化和弱碱性溶液显蓝, 如处理适宜，可使细胞核着清楚的深蓝色，胞浆等其它成分脱色。再利用胞浆染料伊红染胞浆，使胞浆的各种不同成分又呈现出深浅不同的粉红色。故各种组织或细胞成分与病变的一般形态结构特点均可显示出来。 .实验步骤: 1.脱蜡: 将石蜡切片在65C烘箱中烘烤40-60分钟，后用二甲苯（I）、（n）浸泡，各 15min ；2.水化：无水酒精（100%乙醇）2min,下行至90%、80%、70%酒精各2min,蒸馏水（I）、 (U)各2min； 3.染色: 石蜡画圈，用滴管滴加苏木素在脑片上，放湿盒40s；（苏木素需要回收） 4.流水浸洗: 把玻片装入玻片铁架子里，在1L烧杯里用自来水对玻片进行流水浸洗；（脑片不要对着水流直接冲） 5.1%盐酸酒精分化: 快速提拉2-3下，用时3-5s左右; 6.流水浸洗: 自来水洗3次，每次20min ； 7.伊红染色: 时间15min ； 8.流水浸洗; 9.脱水:

先在通风橱外的70%酒精浸没，时长2-3S,以颜色适宜为准，再放入通风橱中脱水，70%、80%、90%2-3s, 100%酉精I、n 1min，二甲苯I、n 2min； 10.封片: 上述处理好的玻片，取中性树胶滴入载玻片的组织上，取盖玻片从一端逐步盖下去，避免发生气泡三.结果的判断: 3.1实验结果: 细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色，软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色，粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色，胞浆内嗜酸性颗粒呈反光强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色，弹力纤维呈亮粉红色，红血球呈橘红色，蛋白性液体呈粉红色。着色情况与组织或细胞的种类有关，也随其生活周期及病理变化而改变。例如，细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行性变则呈现嗜伊红浓染。胶原纤维在老化和出现透明变性时，伊红着色由浅变深。 3.2 HE染色评定标准: (1)切片完整，厚度4-6微米，厚薄均匀，无皱褶无刀痕; (2)染色核浆分明，红蓝适度，透明洁净，封裱美观。四?注意事项: 1?染色之前一定要了解清楚所用的染色液的配制方法，不同的染色液染色后的处理是不一样的。 2?染色过程中所用的时间以及酒精梯度脱水的选择要根据染色时的室内温度、染液的新鲜程度及实验室的实际情况等灵活掌握。在室温高、切片、染色液又是新配制的，染色时间就要短，反之时间就长。

尼氏染色步骤

小鼠脑冰冻切片后，想做尼氏染色，用焦油紫，具体步骤是什么？焦油紫的溶液该如何配制？焦油紫染液的配制：焦油紫/0.1g 蒸馏水/99ml 1%冰醋酸1ml 冰冻切片氯仿中1分钟；无水酒精中1分钟； 95%酒精、70%酒精各1分钟，蒸馏水洗片刻；进入焦油紫染液染色30分钟（37度温箱中染色10分钟），蒸馏水洗涤； 95%酒精分色；常规脱水、透明、封片。尼氏体呈紫色，细胞核呈淡紫色，胶质细胞呈淡紫色。 mickeyzq wrote: 焦油紫染液的配制：焦油紫/0.1g 蒸馏水/99ml 1%冰醋酸1ml 冰冻切片氯仿中1分钟；无水酒精中1分钟； 95%酒精、70%酒精各1分钟，蒸馏水洗片刻；进入焦油紫染液染色30分钟（37度温箱中染色10分钟），蒸馏水洗涤； 95%酒精分色；常规脱水、透明、封片。

尼氏体呈紫色，细胞核呈淡紫色，胶质细胞呈淡紫色。你的没有经过复染，对比也可以这么鲜明啊我用的是1％的甲苯胺蓝，具体步骤是：常规石蜡切片，二甲苯透明，酒精梯度复水，入1％甲苯胺蓝室温下染3min，自来水冲洗，95％酒精分化，0.5％伊红复染1s，水洗，透明封片，但是结果不好，伊红复染后颜色很深，原来的蓝色被覆盖的很严重，不知道该怎么改进换焦油紫看看,焦油紫着色比较深. （二）神经细胞尼氏体染色正常的神经细胞都含有一定数量的尼氏化，它们主要分布于神经细胞的浆中，形状有大有小，如三角形，有的为椭圆形。这些物质能被大部分的蓝色染料所染色，这些染料如焦油坚牢紫（Cresyl fast violet）亚甲蓝（methylene blue）甲苯胺蓝（toluidine blue）硫董（thionin）等钭其染为蓝色。但是，当神经细胞受伤后，胞质内的尼氏体更可发生变化，严重的可消失。焦油坚牢紫显示尼氏体焦油坚牢紫1g 蒸馏水100ml *作方法： 1、切片脱蜡至水 2、用焦油坚牢紫水溶液浸染20-30分钟 3、水洗 4、用95%酒精分化 5、无水酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶结果：神经细胞单位：紫-蓝色细胞核：紫-蓝色尼氏体：紫-深蓝色注意：1、应用酒精分化切片，要迅速，防止过度分化，将切片上的颜色全部脱掉。神经纤维染色使用说明： 1. 样品处理 a) 对于石蜡切片：二甲苯中脱蜡5-10分钟，共三次。注：脱蜡不充分会导致染色不均匀。无水乙醇5分钟。 90%乙醇2分钟。 70%乙醇2分钟。蒸馏水2分钟 2. 尼氏(Nissl)染色对于上述处理好的样品：

病理学技术—特殊染色最最全总结

结缔组织染色法 Mallory三色染色法蓝色：胶原和网状纤维淡蓝色：软骨、粘液、淀粉样变物质红色：神经胶原纤维、肌纤维、酸性颗粒橘红色：髓鞘、红细胞图表 A 染色，显示胶原纤维，A组排列规则 . Masson三色染色法绿色：胶原纤维红色：肌纤维橘红色：红细胞图表 B Mssson三色法图表 C 三色染色胃癌组织中血管平滑肌 . 显示胶原、网状和弹性纤维的三联染色法红色：胶原纤维黑色：网状纤维绿色：弹性纤维淡黄色：肌肉、红细胞

二、胶原纤维染色法 . Van Gieson（）苦味酸-酸性品红法鲜红色：胶原纤维黄色：肌纤维、细胞质、红细胞蓝褐色：胞核图表 E 2.胶原纤维，Van Gieson.)苦味酸-酸性品红法图心肌梗塞 myocardial infarction：心肌梗塞后2个月，van Gieson 染色, 坏死心肌被染成红色的纤维组织所代替，黄色区域为残留的心肌纤维。天狼星红（Sirius red）苦味酸染色法(参照上图)

黄色：其他三、网状纤维染色 Gordon-Sweets银氨染色法（梅花开枝图，金色阳光伴树枝）

黄棕色：胶原纤维淡红色：细胞质（红液复染）图表 F 3.Gordon-Sweets氢氧化银氨液浸染法 Gomori氏银氨液配制法图表 G Gomori氏银氨液配制法四、弹性纤维染色 Gomori醛复红染色法 *甲醛生理盐水液固定的染色效果最佳图表 H 醛复红染色法五、显示弹性、胶原纤维的双重组合染色法蓝绿色：弹性纤维红色：胶原纤维黄色：背景

六、肌肉组织染色 △横纹肌组织染色 Mallory磷钨酸苏木精染色法（PTAH）蓝色：胞核、纤维、肌肉、神经胶质纤维、纤维蛋白、横纹肌黄色或枚红色：胶原纤维、网状纤维软骨基质、骨微紫色：粗弹性纤维（有时）紫蓝色或棕黄色：缺血缺氧早期病变的心肌图表 J .磷钨酸苏木素法图表 K .磷钨酸苏木素染色液 △早期心肌病变组织染色染色法（1974年）

番红固绿切片染色快速法不使用石蜡

番红固绿染色简化法 ----------仅限观察植物苗期主根部导管1目的要求：由于专业的番红固绿需要使用超薄切片机，其功能繁琐，并十分耗时，其主要包括染色，包埋，切片，脱蜡，复染等多个步骤，这里不再赘述。若没有切片机，我们往往要四处奔走求人并支付高昂的费用。经本人亲自实验和总结，采用传统常规染色法，在不使用切片机和钞票的条件下，整理如下流程。若只作为一般实验的验证，样品的容量不大并不需要长期保存的情况下，不需要超薄切片机，只需使用双层刮胡刀片，显微镜可以观察1毫米左右的切片。直径最好大于1mm，肉眼可分辨，一般只用于观察主根。为切片方便，可稍微将根晾干，再进行横切或纵切。根据对刊用插图(照片)总的要求得出，文稿插图(含照片)的应用以少而精为原则。凡是能用文字说明的,应尽量不用插图,能用线条图表示的,就不用照片图;能用单色图表示的,就不用彩色图。即使是线条图也尽量避免搞成大幅的插页图,以便于编排和印刷。插图的线条必须准确,主次分明,清晰可辨,便于读者理解文字的内容。若切片够均匀，线条够清晰，也可作为论文插图。 2实验步骤： 2.1实验准备： 2.2材料：目的植物新鲜根部，刮胡刀刀片两片，越锋利越好，但注意安全。常规染色用品。 2.3试剂：无水酒精，95%酒精，蒸馏水，预先备制的苯胺番红试剂和苯胺固绿试剂（最好放置一段时间，可提前一月配置，效果更好，但不必要），二甲苯和50%体积无水乙醇和50%体积二甲苯混合液。 3实验步骤： 3.1切片：按照前文介绍方法切片，若视力好，手法稳，可用单个刀片细细切下，要求，横切厚度在1mm左右，并呈透明圆形，确保中心完好。 3.2染色： 1）滴1-2滴无水酒精； 2）吸去无水酒精用95%酒精冲洗，使其平铺于玻片，酒精分散均匀； 3）第1滴蒸馏水与材料上，是材料包裹于水滴中； 4）滴1-2滴苯胺番红试剂，染色1-3min； 5）使用95%酒精冲去浮色并脱水，处理至透明状态，韧皮部分由于富集细胞壁，颜色可以偏红，其余部分为粉色透明状； 6）少量（一小滴）苯胺固绿复染，并迅速吸去，并滴入无水酒精，操作在2s内完成； 7）继续用无水乙醇洗脱至半透明状，以为无集中色斑为佳； 8）各50%体积的无水酒精和二甲苯混合物，1-2滴； 9）滴1-2滴二甲苯透明； 10）擦去材料以外药剂，使玻片清洁，可不使用盖玻片，一定不能使材料山的二甲苯干掉； 11）镜检。

尼氏染色液(亚甲蓝法)操作步骤及注意事项

尼氏染色液(亚甲蓝法)操作步骤及注意事项货号：G1434 规格：3×50ml 保存：室温，避光，6个月。产品内容：规格 3×50ml Storage 名称试剂(A):Methylene Blue Stain50ml RT避光试剂(B):Nissl Differentiation50ml RT 试剂(C):Ammonium Molybdate Solution50ml RT 产品简介：尼氏体(Nissl body)或称尼氏小体是分布于神经细胞胞质内的三角形或椭圆形小块状物质，能被碱性染料如硫堇、亚甲蓝、甲苯胺蓝和焦油紫等染料染成紫蓝色。尼氏染色液(Nissl Stain，亚甲蓝法)主要优点是操作简便、染色稳定、适用范围广，可以用于石蜡组织切片的尼氏物质、神经元等的染色，尼氏体的存在和消失是神经细胞是否受损的重要指标，当发生脑炎、脑缺血、轴突反应等情况时，尼氏体会发生溶解甚至消失。操作步骤(仅供参考)： 1、新鲜组织固定于20%甲醛液中，常规脱水包埋。 2、切片厚5μm，常规脱蜡至水。 3、Methylene Blue Stain滴染10min。 4、入Nissl Differentiation分化，在显微镜下观察至尼氏体清晰为止。

5、入Ammonium Molybdate Solution处理切片数分钟。 6、蒸馏水冲洗。 7、常规脱水透明，中性树胶封固。染色结果：尼氏小体蓝色背景红色或粉红色注意事项： 1、尼氏体离体后容易溶解，所以组织取出后应立即固定，否则难以着色。 2、组织固定起着非常重要的作用，固定可采用乙醇、Carnoy固定液或中性福尔马林溶液。 3、本染色试剂盒对石蜡组织切片的尼氏染色效果较好。 4、石蜡切片厚度7～10μm或25μm(皮质神经元密度的评估要用25μm厚的切片)。

植物制片的染色及显微化学鉴定方法

植物制片的染色及显微化学鉴定方法一、目的与要求 1、学习植物制片的一般染色方法。 2、学会并掌握常用显微化学鉴定法，即细胞壁化学组成及细胞内主要后含物性质的鉴定方法。二、材料和用品 1、自备材料：植物叶片、芹菜叶柄、土豆块茎、花生种子等等，解剖器、剃刀或双面刀片。 2、其它材料和用品：显微镜、载玻片、盖玻片、纱布、吸水纸、蒸馏水、染色缸；0.1%番红、0.1% 固绿或1%苯胺蓝等染液、中性树胶、二甲苯、酒精、碘—氯化锌、盐酸—间苯三酚、苏丹Ⅲ、碘—碘化钾、10%氯化铁、盐酸等。三、实验内容 1、植物制片的染色方法 2、常用显微化学鉴定法四、实验方法 1、植物制片的染色方法用徒手切片法切得的薄片，如果仅仅是为了临时观察，制成临时装片即可，这种临时制片不能长久保存，只能作临时观察之用，又由于没经过染色，结构显示的也不够清晰。为了求得更清晰地显示其细微结构及化学成分，并能够较长时间的保存，可以进一步染色及其它处理以至封片，从而可制成半永久或永久制片。常用的染色方法是番红—苯胺蓝（或固绿）二重染色法，具体操作方法有二：方法一：（1）将植物切片材料放入30%酒精中，5分钟后移入水中。（2）用0.1%番红水溶液染色12—24小时。（3）倒去番红液，用清水冲洗数次后，再放回50%酒精中浸泡5分钟。（4）将材料从50%酒精中转入70%酒精中脱色，直至硬木质化的细胞壁呈现红色，其它部分呈粉红色或近于无色时为止。（5） 1%苯胺蓝（用70%酒精配制）对染2—5分钟。若用0.1%固绿对染，则仅需半分钟左右即可。注意：此步染色，要不时地在显微镜下检视，切忌染色过深，当木质化细胞壁呈红色，其它部分为淡蓝或淡绿色时，即可停止。（6）用95%酒精冲去多余染液，再经无水酒精脱水5分钟。（7）放入等量无水酒精与二甲苯溶液中及纯二甲苯中透明各3分钟。（8）将切片材料移入载玻片上，在二甲苯未干时立即加一滴中性树胶封片，尔后将玻片平放，自然凉干或置于摄氏35度温箱中烘干。染色结果：木质化细胞壁呈现红色，纤维素细胞壁呈现蓝色或淡绿色。方法二：（1）将切得的薄片移入盛有FAA固定液的小容器中，盖上盖固定半小时到1小时，24小时以上也可。材料经固定如不及时制片可移入70%酒精中长期保存。（2）材料从固定液中移入盛有蒸馏水的小培养皿中，漂洗半小时到1小时，换水一次。（3）将材料移入载玻片上，用吸水纸吸去多余水分，加一滴苯胺番红染色约10分钟。（4）吸去染液，滴入95%酒精洗两次，去浮色及脱水。（5）加一滴苯胺固绿复染约2～5秒钟，并轻轻晃动玻片，使染色均匀。（注意：此步骤要迅速，若染色时间过长会使红色全部褪去。）（6）吸去染液，滴入无水酒精洗两次，去浮色及脱水。（7）滴入等量无水酒精与二甲苯溶液约1分钟后吸去，再滴入纯二甲苯冲洗2次，使材料透明。（8）擦去材料以外的残存药剂，使玻片清洁，但不使材料上的二甲苯干掉，并及时镜检。（9）镜检后，如材料的构造清晰，红绿对比鲜明，立即加一滴中性树胶封片。染色结果同样是木质化细胞壁呈现红色，纤维素细胞壁呈现淡绿色。这种方法更节省时间一些。 2、常用显微化学鉴定法显微化学鉴定法即将材料经化学试剂处理后，在显微镜下检查、判定细胞壁的化学组成及细胞内含物性质的方

Cole氏苏木素染色液(常规染色)使用介绍

Cole氏苏木素染色液(常规染色) 产品说明：苏木素是组织化学和免疫组织化学中最常用的染料之一，可以广泛用于组织切片或培养细胞的染色。本染色液可以和免疫荧光染色或免疫组化染色等配合使用。可以在苏木素染色液染色后进行免疫荧光染色或其它染料的染色，也可以在免疫组化染色后再进行苏木素复染。染色步骤简单，操作时间短。苏木素染色后细胞核呈现蓝色。使?说明: 1、样品处理 a)对于石蜡切片：二甲苯中脱蜡5-10 分钟。换用新鲜的二甲苯，再脱蜡5-10 分钟。无水乙醇5 分钟。90% 乙醇2 分钟。70%乙醇 2 分钟，蒸馏水2 分钟， b)对于冰冻切片：蒸馏水2 分钟， c)对于培养细胞：用4%多聚甲醛固定10 分钟以上，蒸馏水洗涤2 分钟，换用新鲜的蒸馏水，再洗涤 2 分钟。 2、苏木素（HE）染色对于上述处理好的样品，用苏木素染色5-10 分钟（可以根据染色结果和要求调整时间），用自来水洗去残留的染色液，约10 分钟。蒸馏水再洗涤一遍(数秒钟)。 3、脱水、透明、封片或进行其它染色 a)脱水、透明、封片：95%乙醇脱水2 分钟，换用新鲜的95%乙醇再脱水2 分钟；二甲苯透明 5 分钟，换用新鲜的二甲苯，再透明 5 分钟，用中性树胶或其它封片剂封片。显微镜下观察，细胞核呈蓝色。 b)进行其它染色：如果进行免疫荧光染色或荧光染料染色，在苏木素染色后，70％乙醇洗涤2 次，每次 2 分钟。再用PBS 或生理盐水或TBS 或TBST 等用

于荧光染色的溶液浸泡 5 分钟。然后就可以进行免疫荧光染色或其它荧光染料的染色了。注意事项： 1、第一次使用本试剂时建议先取1-2 个样品做预实验。样品数量很多时，可使用染色架和染色缸，以便于操作。 2、本产品亦可反复使用多次，但染色效果会逐渐降低。 3、染色过程推荐浅染，通常只需能够分辨细胞核即可，颜色过深有可能影响细胞质颜色。 4、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。产地：国产提示：本品仅用于科研实验，不能用作医疗及临床诊断。保存：室温避光储存，有效期至少12 个月。关键词：Mayer'苏木素染液(免疫组化) Mayer'苏木素染液(免疫组化)相关染色产品:

改良番红O-固绿软骨染色液说明书

改良番红O-固绿软骨染色液说明书货号：G1371 规格：5×50ml/5×100ml 有效期：6个月有效产品简介：软骨组织由软骨细胞、软骨基质和纤维组成，软骨组织及其周围的软骨膜构成软骨。软骨根据基质内所含纤维素成分不同分为透明软骨、弹性软骨、纤维软骨。软骨染色方法有很多种，例如甲苯胺蓝法、阿利新蓝法、番红O法等。改良番红0-固绿软骨染色法的染色原理在于嗜碱性的软骨与碱性染料番红O结合呈现红色，嗜酸性的骨和酸性染料固绿结合而成绿色或蓝色，与呈现红色的软骨对比鲜明，从而将软骨组织和骨组织区分开。番红O是一种结合多阴离子的阳离子染料，其显示软骨组织是基于阳离子染料与多糖中阴离子基团（硫酸软骨素或硫酸角质素）结合。番红O着色与阴离子的浓度近似成正比关系，间接反映了基质中蛋白多糖的含量和分布。当软骨受到损伤时，软骨中的糖蛋白会释放出来，使基质成分分布不均匀，从而导致番红O淡染或不着色。通过图像分析软件可对番红O染色的软骨基质进行定量分析。固绿与胶原纤维结合，不宜褪色。番红O-固绿染色的分化很关键，分化过度易导致切片不着色，分化不足易导致切片着色过深。产品组成：名称规格5×50ml5×100ml Storage 试剂(A)A1:Weigert A液25ml50ml RT避光 A2:Weigert B液25ml50ml RT避光临用时，取A1、A2等量混合为Weigert染液，24h后失去染色力，不宜预先配制。试剂(B):酸性分化液50ml100ml RT 试剂(C):固绿染色液50ml100ml RT避光试剂(D):Safranin O stain50ml100ml RT避光试剂(E):弱酸溶液50ml100ml RT 自备材料： 10%福尔马林固定液，脱钙液，蒸馏水，系列乙醇。第1页，共2页

改良番红O-固绿软骨染色液

改良番红O-固绿软骨染色液简介：软骨组织由软骨细胞和软骨基质组成，软骨组织及其周围的软骨膜构成软骨。软骨根据基质内所含纤维素成分不同分为透明软骨、弹性软骨、纤维软骨。改良番红O-固绿软骨染色法的染色原理在于嗜碱性的软骨与碱性染料番红O结合呈现红色，嗜酸性的骨和酸性染料固绿结合而呈绿色或蓝色，与呈现红色的软骨对比鲜明，从而将软骨组织与骨组织区分开。组成：编号名称DB0082 5×50ml DB0082 5×100ml Storage 试剂(A) A1: Weigert A液25ml 50ml RT 避光A2: Weigert B液25ml 50ml RT 试剂(B): 酸性乙醇分化液50ml 100ml RT 试剂(C): 固绿染色液50ml 100ml RT 避光试剂(D): Safranin O stain 50ml 100ml RT 避光试剂(E): 乙酸溶液50ml 100ml RT 使用说明书1份操作步骤(仅供参考)： 1、标本的处理：10%福尔马林固定、脱钙、石蜡切片。 2、常规脱蜡至水。 3、入新鲜配制的Weigert染液染色。 4、酸性乙醇分化液分化。 5、蒸馏水洗1min。 6、在固绿染色液内浸染，蒸馏水洗1min。 7、入Safranin O stain内浸染色，蒸馏水洗1min。 8、用乙酸溶液洗涤切片，以便去除残留的固绿，蒸馏水洗1min。 9、分别用95%乙醇、无水乙醇脱水。 10、二甲苯透明，光学树脂封固。染色结果：软骨基质深红色软骨细胞核蓝色

细胞浆、肌肉、胶原纤维及骨组织呈灰绿色注意事项： 1、需要显示细胞核时，尽量采用铁苏木素染色，其着色力强色调浓，一般的苏木素着色力不强。 2、Weigert染液不可预先配制后放置，配制好后一般24h后失去染色力。 3、切片在Safranin O stain中染色不宜过长，否则易导致背景的深红色不易分化掉。有效期：6个月有效。

改良番红 O-固绿软骨染色液

第1页，共2页改良番红G1371 5×50ml/5×100ml 6个月有效软骨组织由软骨细胞、软骨基质和纤维组成，软骨组织及其周围的软骨膜构成软骨。软骨根据基质内所含纤维素成分不同分为透明软骨、弹性软骨、纤维软骨。软骨染色方法有很多种，例如甲苯胺蓝法、阿利新蓝法、番红O 法等。改良番红0-固绿软骨染色法的染色原理在于嗜碱性的软骨与碱性染料番红O 结合呈现红色，嗜酸性的骨和酸性染料固绿结合而成绿色或蓝色，与呈现红色的软骨对比鲜明，从而将软骨组织和骨组织区分开。番红O 是一种结合多阴离子的阳离子染料，其显示软骨组织是基于阳离子染料与多糖中阴离子基团（硫酸软骨素或硫酸角质素）结合。番红O 着色与阴离子的浓度近似成正比关系，间接反映了基质中蛋白多糖的含量和分布。当软骨受到损伤时，软骨中的糖蛋白会释放出来，使基质成分分布不均匀，从而导致番红O 淡染或不着色。通过图像分析软件可对番红O 染色的软骨基质进行定量分析。固绿与胶原纤维结合，不宜褪色。番红O-固绿染色的分化很关键，分化过度易导致切片不着色，分化不足易导致切片着色过深。 10%福尔马林固定液，脱钙液，蒸馏水，系列乙醇。 1、标本的处理：10%福尔马林固定、脱钙、石蜡切片。 2、常规脱蜡至水。 3、入新鲜配制的Weigert 染液染色3-5min ，水洗。 4、酸性分化液分化15s 。 5、蒸馏水洗10min 。

6、在固绿染色液内浸染5min。 7、快速用弱酸溶液洗涤切片10-15s，以便去除残留的固绿。 8、入Safranin O stain内浸染5min。 9、分别用95%乙醇、无水乙醇脱水。 10、二甲苯透明，光学树脂封固。 1、需要显示细胞核时，尽量采用铁苏木素染色，其着色力强色调浓，一般的苏木素着色力不强。 2、Weigert苏木素染液不可预先配制后放置，配制好后一般24h失去染色能力。 3、切片在Safranin O stain中染色不宜过长，否则易导致背景的深红色不易分化掉。 4、切片分化时间应恰当，以背景呈绿色为宜。 5、 Safranin O stain染色后，不宜在低浓度乙醇脱水，否则易褪色。 6、95%乙醇脱水时间不宜过长。 7、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。第2页，共2页

病理技术卫生考试常考固定液与特殊染色总结

单纯固定液甲醛：能固定类脂和脂类，但必须冷冻切。也可固定高尔基体、线粒。是糖的保护剂。体除去甲醛色素的方法：Verocay法，乙醇配氨水；Schride法。重铬酸钾Zenker，Helly，Maximov，Regaud。苦味酸：易燃易爆，强酸，糖类；可以软化皮肤，易于切片。不宜用火棉胶包埋。70%乙醇中加浓氨水去除固定产生的黄色。三氯醋酸：SUSa液的主要成分，使蛋白沉淀，良好的脱钙剂。升汞：针状结晶，组织收缩明显。不能固定类脂和糖类。可固定蛋白，固定后需用碘液脱汞乙醇：固定兼有脱水作用，糖原的固定，纤维蛋白和弹性纤维固定。浓度80-95%。醋酸：固定染色体，清楚的显示细胞核，但组织膨胀明显，尤其对于胶原纤维和纤维蛋白。铬酸避光保存。不能固定脂肪。固定后流水冲洗大于24h。饿酸延长固定时间，脆性增加，对染色不力。1%高锰酸钾脱碘，固定后流水冲洗12-24h。丙酮：酶组织化学。丙酮对组织块的收缩作用强于乙醇，对糖原无固定作用。异丙醇：是乙醇良好的替代品，组织收缩小，硬化作用较弱；不能再用于火棉胶的包埋。叔丁醇：脱水后可不经透明，直接浸蜡。电镜标本中常用作中间脱水剂。环氧己烷：不引起组织收缩和硬化，常用于植物标本制作，价格贵。四氢呋喃：既是脱水剂，又可以作为封片溶媒。环己酮：代替乙醇作脱水剂和随后的浸蜡和包埋。混合固定液 B-5固定液：固定淋巴组织，配方无水醋酸钠-升汞-甲醛，染色前脱汞处理； Muller液：媒染和硬化神经组织，需常更换液体，固定作用缓慢。 Bouin液：结缔组织比较差。不适宜长期固定（12-24h）。固定后组织被染成黄色需用70%-80%乙醇洗涤。

HE染色和尼氏染色

HE染色一．HE染色简介：苏木精—伊红染色法( hematoxylin-eosin staining ) ，简称HE染色法，石蜡切片技术里常用的染色法之一。苏木精染液为碱性，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色；伊红为酸性染料，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。由于组织或细胞的不同成分对苏木精的亲和力不同及染色性质不一样。经苏木精染色后，细胞核及钙盐粘液等呈蓝色，可用盐酸酒精分化和弱碱性溶液显蓝，如处理适宜，可使细胞核着清楚的深蓝色，胞浆等其它成分脱色。再利用胞浆染料伊红染胞浆，使胞浆的各种不同成分又呈现出深浅不同的粉红色。故各种组织或细胞成分与病变的一般形态结构特点均可显示出来。二．实验步骤： 1.脱蜡：将石蜡切片在65℃烘箱中烘烤40-60分钟，后用二甲苯（Ⅰ）、（Ⅱ）浸泡，各15min；2.水化：无水酒精（100%乙醇）2min，下行至90%、80%、70%酒精各2min，蒸馏水（Ⅰ）、（Ⅱ）各2min； 3．染色：石蜡画圈，用滴管滴加苏木素在脑片上，放湿盒40s；（苏木素需要回收） 4.流水浸洗：把玻片装入玻片铁架子里，在1L烧杯里用自来水对玻片进行流水浸洗；（脑片不要对着水流直接冲） 5.1%盐酸酒精分化：快速提拉2-3下，用时3-5s左右； 6.流水浸洗：自来水洗3次，每次20min； 7.伊红染色：时间15min；

8.流水浸洗； 9.脱水：先在通风橱外的70%酒精浸没，时长2-3s，以颜色适宜为准，再放入通风橱中脱水，70%、80%、90%2-3s，100%酒精Ⅰ、Ⅱ1min，二甲苯Ⅰ、Ⅱ2min；10．封片：上述处理好的玻片，取中性树胶滴入载玻片的组织上，取盖玻片从一端逐步盖下去，避免发生气泡三．结果的判断： 3.1实验结果：细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色，软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色，粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色，胞浆内嗜酸性颗粒呈反光强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色，弹力纤维呈亮粉红色，红血球呈橘红色，蛋白性液体呈粉红色。着色情况与组织或细胞的种类有关，也随其生活周期及病理变化而改变。例如，细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行性变则呈现嗜伊红浓染。胶原纤维在老化和出现透明变性时，伊红着色由浅变深。 3.2 HE染色评定标准：（1）切片完整，厚度4-6微米，厚薄均匀，无皱褶无刀痕；（2）染色核浆分明，红蓝适度，透明洁净，封裱美观。四．注意事项： 1．染色之前一定要了解清楚所用的染色液的配制方法，不同的染色液染色后的处理是不一样的。 2．染色过程中所用的时间以及酒精梯度脱水的选择要根据染色时的室内温度、染液的新鲜程度及实验室的实际情况等灵活掌握。在室温高、切片、染色液又是新配制的，染色时间就要短，反之时间就长。

PH1085 番红O-固绿软骨染色液使用说明 Phygene

PH1085|改良番红O-固绿软骨染色液 Safranin O-Fast Green Staining Kit(modified) Catalog No：PH1085Size：?5×50mL|?5×100mL Store at RT 试剂简介软骨组织由软骨细胞和软骨基质组成，软骨组织及其周围的软骨膜构成软骨。软骨根据基质内所含纤维素成分不同分为透明软骨、弹性软骨、纤维软骨。软骨染色方法有很多种，例如甲苯胺蓝法、阿利新蓝法、番红O法等。改良番红O-固绿软骨染色法的染色原理在于嗜碱性的软骨与碱性染料番红O结合呈现红色，嗜酸性的骨和酸性染料固绿结合而呈绿色或蓝色，与呈现红色的软骨对比鲜明，从而将软骨组织与骨组织区分开。番红O是一种结合多阴离子的阳离子染料，其显示软骨是基于阳离子染料与多糖中阴离子基团(硫酸软骨素或硫酸角质素)结合。番红O着色与阴离子的浓度近似成正比关系，间接反映基质中蛋白多糖的含量和分布。当软骨受到损伤时，软骨中的糖蛋白会释放出来，使基质成分分布不均匀，从而导致番红O淡染或不着色。通过图像分析软件可对番红O染色的软骨基质进行定量分析，固绿与胶原纤维结合，不宜褪色，番红O-固绿染色的分化很关键，分化过度易导致切片不着色，分化不足易导致切片着色过深。试剂组分 Components5×50mL5×100mL Storage A1:Weigert A液25ml50ml RT避光 A2:Weigert B液25ml50ml RT 取A1、A2等量混合即为Weigert染液，24h后失去染色力，不宜预先配制。试剂(B):酸性乙醇分化液50ml100ml RT 试剂(C):固绿染色液50ml100ml RT避光试剂(D):Safranin O stain50ml100ml RT避光试剂(E):乙酸溶液50ml100ml RT 有效期：12个月有效。操作步骤(仅供参考)： 1、标本的处理：10%福尔马林固定、脱钙、石蜡切片。 2、常规脱蜡至水。 3、入新鲜配制的Weigert染液染色3～5min。 4、酸性乙醇分化液分化15s。 5、蒸馏水洗1min。 6、入固绿染色液内浸染1.5～3min，蒸馏水洗1min。 7、入Safranin O stain内浸染2～5min，蒸馏水洗1min。 8、用乙酸溶液洗涤切片1～2min，以便去除残留的固绿，蒸馏水洗1min。 9、分别用95%乙醇、无水乙醇脱水。

病理技术卫生考试常考固定液与特殊染色总结电子教案

病理技术卫生考试常考固定液与特殊染色总结

叔丁醇：脱水后可不经透明，直接浸蜡。电镜标本中常用作中间脱水剂。环氧己烷：不引起组织收缩和硬化，常用于植物标本制作，价格贵。四氢呋喃：既是脱水剂，又可以作为封片溶媒。环己酮：代替乙醇作脱水剂和随后的浸蜡和包埋。混合固定液 B-5固定液：固定淋巴组织，配方无水醋酸钠-升汞-甲醛，染色前脱汞处理；Muller液：媒染和硬化神经组织，需常更换液体，固定作用缓慢。 Bouin液：结缔组织鲜明，细胞质比较差。不适宜长期固定（12-24h）。固定后组织被染成黄色需用70%-80%乙醇洗涤。 Orth：胚胎，神经，脂肪均可。需在暗处固定24h。 Carnoy液：胞质和胞核，染色体，糖原保存，尼氏体；不能保存脂类。Helly固定液：含有氧化剂和还原剂，临时配制，久置失效。 PFG：肽类抗原固定，用于免疫电镜研究。 PLP和PLPD（含有过碘酸钠） Rossman： Zenker固定液：形态学研究常用固定液。不适宜固定含血量较多的标本，脾肾；对免疫球蛋白效果最好，对病毒包涵体固定也较好。不能用金属容易盛放，也不能用金属镊子夹取组织块。固定后流水冲洗12H，在70%乙醇脱水时加入碘脱汞。PATH染色用该液固定。嗜铬细胞染色；三色染色。中性缓冲甲醛液：为免疫组化最常用。24h内为宜中性甲醛液：为最常用的固定液。

(10)--石蜡切片制作及HE染色实验预习测试(2)

细胞生物学实验动植物石蜡切片的制作实验预习测试题及答案 1、制作动物石蜡切片，利用______染色方法。（每空1分） 2、番红-固绿对染法，为______上最普遍的一种二重染色法。（每空1分） 3、通常石蜡采用熔点为______或60～62℃两种，可根据季节及操作环境温度来选用。石蜡熔化后应在蜡箱内______后使用，以免因含杂质而影响切片质量，且可能损伤切片刀。（每空1分） 4、经过HE染色，______被苏木精染成蓝紫色，______被伊红染色呈粉红色。（每空1分） 5、番红为______染料，能使细胞核及______染成红色；固绿为______染料，能使细胞质及______染成绿色。（每空1分） 6、凡用水溶液配制的固定液，特别是含有铬酸、重铬酸钾的固定液，一律用水洗。利用卡诺固定液固定的样品，应该用______洗涤。（每空1分） 7、固定液可分为______固定液及______固定液，卡诺固定液是______。（每空1分） 8、固定材料时，固定液必须充足，一般为材料块的______倍，有些水分多的材料，中间应该更换______次新液。（每空1分） 9、有些混合固定液的成份之间会发生______，一定要在使用前才混合，如果混合太早，______就没有作用了。（每空1分） 10、石蜡切片制作过程中，如需过夜，应停留在______中。脱水必须彻底，否则

不易透明，甚至使______内出现白色混浊现象。（每空1分） 11、______为常用脱水剂，它既能与水相混合，又能与透明剂相混。（每空1分）12、更换每级透明剂，动作要迅速，一方面为了不使材料块______，另一方面能避免吸收______。在透明过程中，如果______出现白色雾状，说明材料中的水未被脱净，应退回______中重新脱水，然后再透明。（每空1分） 13、透蜡温度要______，不可忽高忽低；一般动物材料常用的石蜡熔点为_____ _，植物材料用的石蜡熔点为______。（每空1分） 14、透蜡时间根据组织的______来进行。透蜡应在恒温箱内进行，并保持箱内温度在______左右，注意温度不要过高，以免组织发脆。置于恒温箱______。（每空1分） 15、包埋时应根据组织材料、切片厚度、气候条件等因素，选择______的石蜡。包埋时，待石蜡完全凝固需要______。（每空1分） 16、在透明过程中，如果材料周围出现______，说明材料中的水未被脱净，应退回______中重新脱水，然后再透明。（每空1分） 17、脱水时，在高浓度或纯乙醇中，每级停留的时间______，否则会使组织变脆，影响切片。（每空1分） 18、常用的透明剂有二甲苯、苯、氯仿、正丁醇等，各种透明剂均是溶于______的溶剂。透明剂，纯乙醇、二甲苯等量混合液______，二甲苯______（或至透明为止），须换一次二甲苯。（每空1分）

病理学技术—特殊染色最最全总结(均配图)

结缔组织染色法1.1 Mallory三色染色法蓝色：胶原和网状纤维淡蓝色：软骨、粘液、淀粉样变物质红色：神经胶原纤维、肌纤维、酸性颗粒橘红色：髓鞘、红细胞图表A 1.1.Mallory染色，显示胶原纤维，A组排列规则

1.2. Masson三色染色法绿色：胶原纤维红色：肌纤维橘红色：红细胞图表B 1.2 Mssson三色法图表C 1.2.Masson三色染色胃癌组织中血管平滑肌

1.3. 显示胶原、网状和弹性纤维的三联染色法红色：胶原纤维黑色：网状纤维绿色：弹性纤维淡黄色：肌肉、红细胞图表D 4.Weigert间苯二酚法

二、胶原纤维染色法 2.2. Van Gieson（V.G）苦味酸-酸性品红法鲜红色：胶原纤维黄色：肌纤维、细胞质、红细胞蓝褐色：胞核图表E 2.胶原纤维，Van Gieson(V.G.)苦味酸-酸性品红法图心肌梗塞myocardial infarction：心肌梗塞后2个月，van Gieson 染色, 坏死心肌被染成红色的纤维组织所代替，黄色区域为残留的心肌纤维。

2.1 天狼星红（Sirius red）苦味酸染色法(参照上图)红色：胶原纤维绿色：细胞核黄色：其他

3.1 Gordon-Sweets银氨染色法（梅花开枝图，金色阳光伴树枝）黑色：网状纤维红色：胞核（核固红复染）黄棕色：胶原纤维淡红色：细胞质（红液复染）图表F 3.Gordon-Sweets氢氧化银氨液浸染法 3.2 Gomori氏银氨液配制法图表G Gomori氏银氨液配制法

髓鞘染色液(固绿法)

髓鞘染色液(固绿法) 简介：髓鞘(Myelin Sheath)是包裹在神经细胞轴突外面的一层膜，即髓鞘由髓鞘细胞和细胞膜组成，是神经膜细胞的质膜沿着轴索的轴心螺旋缠绕形成的多层脂双层结构,髓鞘上有郎飞氏结，可使神经冲动跳跃传递。髓鞘染色在病理诊断中有一定意义，髓鞘的病理变化分为早期、中期和晚期。在早期着色较深；病变中期阶段的髓鞘变性形成脂滴，可用脂质染色加以显示，后期彻底溃变并被吞噬细胞清除，故不再有髓鞘的阳性结果。很多疾病都可以引起髓鞘的变化，Leagene 髓鞘染色液(固绿法可以显示病理情况下髓鞘是否完整、变性、坏死程度及修复情况，对神经组织的病理诊断和研究均有意义,髓鞘呈深蓝色，脱髓鞘纤维不着色。组成：操作步骤(仅供参考)： 1、固定：采用甲醛钙固定液固定样本。 2、石蜡切片脱蜡至蒸馏水。 3、切片入95%乙醇稍洗。 4、入固绿染色液，37℃恒温箱染色。 5、直接用95%乙醇洗涤。 6、蒸馏水冲洗。 7、入MS 分化液分色。 8、蒸馏水冲洗(如果分色不足，可重复6步骤)。9、常规梯度乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。染色结果：髓鞘深绿色，横截面呈环状，纵截面呈条索状或鱼骨刺状脱髓鞘纤维不着色，横截面呈半环状或不着编号名称 DK00063×50ml Storage 试剂(A):甲醛钙固定液250ml RT 避光试剂(B):固绿染色液50ml RT 避光试剂(C):MS 分化液100ml RT 使用说明书 1份

色，呈空白区。注意事项： 1、分化这一步很关键，应严格控制分化时间，可在镜下观察分化程度。 2、固定液以10%的甲醛钙固定液为佳。 3、切片不宜太厚，应控制在5～7μm以内，否则易出现脱片或过染等现象。 4、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。有效期：12个月有效。相关：编号名称 DC0032Masson三色染色液 DF0111中性福尔马林固定液(10%) DG0005糖原PAS染色液 DH0001改良Lillie-Mayer苏木素染色液 DJ0001普鲁士蓝染色液(核固红法) DK0022尼氏染色液(焦油紫法) NH0043SSC缓冲液(20×,pH7.0) TC0713葡萄糖检测试剂盒(GOD-POD比色法)