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家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救
家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救

【实验目的】

掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。

观察高钾血症及抢救后的心电图变化。

分析高血钾引起心电异常的机制

【实验原理】

钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。正常血清钾离子浓度保持在L~L的范围内,当家离子浓度大于L时称为高钾血症。以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制:

心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。

高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。

心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。

心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。

心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。

综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间

期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。

应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。

【实验材料】

家兔1只,兔手术台,婴儿秤,手术器械,BL-420生物信号采集系统,心电记录电极,5ml、10ml注射器各一个、静脉输液装置一套,小儿头皮针,静脉导管、气管插管各1套,3%戊巴比妥钠溶液,4%氯化钾溶液,10%氯化钙溶液。【实验步骤】

1.麻醉

取家兔称重,耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠kg麻醉,仰卧位固定于手术台,分离气管和右侧颈外静脉并进行插管,颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,以备滴注氯化钾溶液用。

2.将针形电极分别插图家兔四至皮下,并连接BL=420生物机能实验系统,红色连右前肢,黑色连右后,绿色连左后,描述正常心电图。

3.耳缘静脉插入头皮针固定以备抢救注射氯化钙用。

4.造成高钾及抢救

待心电曲线平稳后,向静脉内缓慢滴注4%氯化钾溶液,以每分钟15-20滴为宜,注意观察心电曲线的变化,20--30min后如仍没有改变,可加快滴注速度。如心电图出现P波低平、增宽,QRS波群低压变宽,高尖T波等改变,立即停止滴注,立即用10%氯化钙溶液按2ml/kg体重通过头皮针快速注入。

5.待心电曲线基本恢复正常后,继续滴注氯化钾溶液使家兔心肌纤颤致死,观察发生心肌纤颤时的心电曲线。

【实验结果预期】

静脉滴注氯化钾溶液可导致家兔急性高钾血症,血钾增高使心急兴奋性,传导性,收缩性,自律性降低,心电图出现P波低平,增宽,QRS波群低压变宽,

高尖T波等异常。通过注射氯化钙能纠正高血钾,心电曲线能基本恢复正常。最后注射致死量氯化钾,高钾血症加剧,导致家兔心肌纤颤而死。

【注意事项】

1.麻醉要适度,过深抑制呼吸,过浅时家兔疼痛则易引起肌颤,干扰心电图波形。

2.严格控制好氯化钾滴注的速度,以防过量导致家兔过早死亡。

3.滴注氯化钾时要时刻关注心电曲线,出现特征性异常即停止输液,快速基于氯化钙抢救,如果10S内无法输入抢救药物,则久之效果欠佳。

参考文献

[1]朱健平生理科学实验教程,第一版,北京,科学出版社 2008年5月

[2]姚泰麻醉生理学第六版人民卫生出版社2006年5月P75-88

家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救 【实验目的】 掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。 观察高钾血症及抢救后的心电图变化。 分析高血钾引起心电异常的机制 【实验原理】 钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内,当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制: 心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。 高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。 心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。 心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。 心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。 综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。 应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。 【实验材料】 家兔1只,兔手术台,婴儿秤,手术器械,BL-420生物信号采集系统,心电记录电极,5ml、10ml注射器各一个、静脉输液装置一套,小儿头皮针,静脉导管、气管插管各1套,3%戊巴比妥钠溶液,4%氯化钾溶液,10%氯化钙溶液。【实验步骤】 1.麻醉 取家兔称重,耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1.0ml/kg麻醉,仰卧位固定于手术台,分离气管和右侧颈外静脉并进行插管,颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,以备滴注氯化钾溶液用。 2.将针形电极分别插图家兔四至皮下,并连接BL=420生物机能实验系统,红色连右前肢,黑色连右后,绿色连左后,描述正常心电图。 3.耳缘静脉插入头皮针固定以备抢救注射氯化钙用。

机能实验报告 高血钾

机能学实验报告 实验日期:2015年6月10日 带教教师: 小组成员: 专业班级:预防医学一大班 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔正常心电图波形的生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型的复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗的方法(4%碳酸氢钠或极化液) 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液

对抗高血钾的心肌毒性;

②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤 1.称重、麻醉和固定动物:家兔称重后,用3%注射用戊巴比妥钠,按1ml/kg从 耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态,当兔子角膜反射敏感度,肌肉紧张性明显降低,立即停止给药。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上, 2手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管的颈静脉插管以备输液,缓慢注入生理盐水(5-10滴/min)以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管的总动脉插管。 3. 测正常血钾浓度:用EP管通过颈总动脉取血0.5ml,用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前的血浆钾度。 4.描记心电图:将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红),左前肢(黄),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子的正常心电图波形。 5.复制高钾血症动物模型:通过输液装置,经颈外动脉从慢到快调滴速滴注3%的KCl溶液6滴/第1min,10滴/第2min,16滴/第3min及以后(不超20滴/min),密切观察和记录出现高钾时典型的心电图变化,一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时,立即调慢静脉滴注Kcl的速度,维持在6滴/minde,等待,当心电图出现典型高钾血症表现是,经颈外动脉取血0.5ml 作血钾测定。 6.高钾血症的抢救:在心电图出现典型高钾血症改变时,立即对家兔实施抢救。通过颈外静脉快速滴注极化液(20—30滴/秒)30min,待心电图基本恢复正常时,再次记录心电图改变,并由颈总动脉采血0.5ml,测定救治后的血钾浓度。

家兔急性高钾血症时心电图的主要变化

家兔急性高钾血症时心电图的主要变化 付涛*1,于敏*1,姜华灵*1,刘兆焱1,徐会静1,孙帅1 (潍坊医学院2009级临床124班,山东潍坊 261053) 【摘要】目的:1. 观察高血钾对心脏的毒性作用。2.了解和掌握高血钾心电图改变的特征。方法:采取对照实验的方法,先描记家兔正常的心电图,再耳缘静脉推注2%、5%、10%的KCL制造急性高钾血症模型观察心电图变化。比较分析后得出结论。结果:随着K+在家兔血液中的积累,心电图出现了高尖T波、QRS波群间期增宽且明显变钝、正弦波等变化。结论:家兔急性高钾血症可引起心电图的明显变化,心电图的变化可以指导临床的诊断,但能否确诊还需进一步研究。 【关键字】高钾血症;心电图; 严重的高钾血症属临床急症范畴,其预后严重,正所谓“低钾危险,高钾致命”如处理不当,患者会因为心室停搏或室颤而失去生命。高钾血症临床症状常无特异性,易被原发病掩盖,因此早期诊断尤为重要。本实验通过家兔耳缘静脉推注2%、5%、10%的KCL制造急性高钾血症模型,并记录正常及患高钾后的心电图进行比较。得出了高钾血症时家兔心电图的几点重要变化,为临床通过心电图快速判断高钾血症提供了线索。 材料与方法 1、实验动物:家兔一只(由潍坊医学院病生教研室友情提供)。 2、药品:20% 氨基甲酸乙酯溶液、2%、5%、10% 氯化钾溶液。 3、实验器材:5ml注射器、小儿头皮针、手术剪、电脑、bl-420F机能实验系统。 4、实验步骤 4.1 称重:家兔1.5kg。 4.2 耳缘静脉注射20% 氨基甲酸乙酯5ml/kg全麻。 4.3 固定家兔。

4.4 电极插入四肢踝部皮下,连接按右前(红),左前(黄),右后(黑)顺序。 4.5 打开bl-420F机能实验系统,描记记录正常心电图。 4.6 耳缘静脉缓慢滴注2% KCL 2ml/5min/次,重复2次;5% KCL 2ml/5min/次,重复2次;最后滴注10% KCl 2ml/5min/次,直至出现室颤,心电活动停止。 结果 1.家兔的正常心电图: 图1 所描记的心电图中QRS群明显,P波和T波在QRS后融合成了一个高而尖的波峰。 2.耳缘静脉缓慢滴注2% KCL 2ml两次后的心电图:

疾病学基础 实验六 高钾血症

实验六家兔高钾血症 一、实验目的 1.复制家兔高钾血症的动物模型。 2.了解动物高钾血症时心电图变化的特征,并设计抢救和治疗方案。 二、实验内容 1.家兔高钾血症动物模型的复制。 2.观察动物高钾血症时心电图变化的特征, 3.设计动物高钾血症的抢救和治疗方案。 三、实验准备 【实验动物】家兔 【仪器设备】计算机生物信号采集处理系统、心电电极输入线、兔手术台、哺乳类动物手术器械、三通管、双凹夹、铁支架、注射器(1ml,5ml,10ml)、输液装置、小儿头皮针等。 【药品试剂】1.5%戊巴比妥钠溶液、2%、5%、10%氯化钾生理盐水溶液、10%氯化钙溶液、5%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1单位胰岛素)、生理盐水。 四、实验方法 1.动物称重、麻醉和固定家兔称重后,用1.5%戊巴比妥钠溶液(2ml/kg)从耳缘静脉缓慢注入。待动物自然倒下,将动物仰卧固定在实验台上,并保持耳缘静脉通畅。 2.心电图描记 (1)将心电电极输入端插头插入计算机生物信号处理系统插口。 (2)将针型电极分别插入动物四肢踝部皮下,心电导联线按右前支(红)、左前支(黄)、右后支(黑)、左后支(绿)的顺序联接。或变换心电输入线的三个端点可以测出标准I、II、III导联心电信号。 (3)用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形,方法是选择心电图的I导联,将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁,相当于心尖部位的皮下。这样高血钾的异常波形出现早而清楚。 (4)开机启动计算机生物信号采集处理系统,设置心电图描记参数:低通滤波:上限频率40HZ。在MedLab中依次选择“实验/常用生理学实验”→“心电图测量”。MedLab放大器和采样参数设置如下:

家兔高钾血症的药物救治

家兔高钾血症的药物救治 一、实验原理 血清钾浓度>5.5mmol/L时称为高钾血症。高钾血症是临床上常见的电解质代谢失常导致的疾病。其通常伴随肾功能衰竭,由少尿引起的尿钾排出减少所致。高钾血症的主要临床表现为细胞外液钾离子对心肌骨骼肌毒性作用所引起的症状。测定血清钾离子浓度和多种药物对高钾血症的影响有助于高钾血症的诊断。 高钾血症时,心电图可见家兔心律失常,并且可见家兔呼吸缓慢,瞳孔放大,眼球突出,紫绀等现象。血中钾浓度升高对心脏有毒性作用,包括降低心肌兴奋性、自律性、传导性、收缩性,且钾浓度升高速度越快,毒性作用越大。对治疗高钾血症最迅速的方法是采用拮抗钾对外周神经-肌肉影响的药物。静脉推注速尿、葡萄糖酸钙溶液、葡萄糖+胰岛素和碳酸氢钠都对缓解高血钾症有一定的作用。 本实验通过研究葡萄糖+胰岛素溶液、10%葡萄酸钙溶液、4% NaHCO3溶液及速尿溶液注入模拟高钾血症家兔体内以后钾离子浓度的变化探究这几种药物对高钾血症的治疗效果。 二、实验器材及药品 器材:兔手术台,哺乳动物手术器械,气管插管,动脉夹,动脉插管,有色丝线,纱布,离心管,干燥注射器,注射器,头皮针,微量移液器及吸头,心电针形电极,生物信息采集与处理系统,分光光度计,离心机,试管,记号笔,小拉钩。 药品:20%乌拉坦溶液,肝素生理盐水溶液,1%氯化钾溶液,10%葡萄糖酸钙溶液,4%碳酸氢钠,葡萄糖胰岛素溶液,速尿,检测血钾浓度试剂。 三、实验步骤 1.麻醉: 称重后,由耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦溶液,按4.0 ml/kg剂量给药。防止麻醉过深,麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。 2.插气管插管: 颈部剪毛,沿颈正中线做一5到7cm长的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉,暴露和分离气管。在气管下方穿一较粗线备用,于甲状软骨尾侧2到3cm处做“⊥”形切口,插入气管,用备用线结扎固定。 3. 分离颈总动脉: 在气管一侧辨别颈总动脉并分离,分离后在其下方穿两条线备用。 4. 插动脉插管: 在分离出的颈总动脉的近心脏端加一动脉夹,然后结扎其远心脏端,动脉夹与结扎线之间相距至少2cm。用眼科剪在靠近结扎线处做一向心脏方向的斜形切口,将连于血压换能器的细塑料管(管内预先注入肝素以抗凝血)向心脏方向插入动脉切口内,然后用备用的线结扎固定。小心松开动脉夹,即可见血液冲进动脉插管。 5.测正常血钾浓度: 颈总动脉取血1ml,测量动物实验前的血清钾浓度。 6.连接心电图装置

家兔高钾血症实验报告

家兔高钾血症实验报告 正常家兔瞳孔大小 高钾血症时,心电图可见家兔心律失常,并且T波高耸,Q—T间期缩短;并且可见家兔呼吸缓慢,瞳孔放大,眼球突出,紫绀等现象。用葡萄糖、NaHCO3均抢救成功,而用胰岛素+葡萄糖、NaCL均抢救失败。 急性低钾血症和急性重度高钾血症时均可出现肌肉无力,其发生机制有何异同? 相同:骨骼肌兴奋性降低。 不同:低钾血症时出现超极化阻滞:即血清钾↓→细胞内外浓度差↑→静息电位负值增大→与阈电位差距增大→兴奋性降低。 严重高钾血症时出现除极化阻滞,即血清钾↑→细胞内外[K+]比值↓→静息电位太小(负值小)→钠通道失活→动作电位形成障碍→兴奋性降低。 高钾血症和低钾血症对心肌兴奋性各有何影响?阐明其机理? 钾对心肌是麻痹性离子。高钾血症时心肌的兴奋性先升高后降低,低钾血症时心肌的兴奋性升高。急性低钾血症时,尽管细胞内外液中钾离子浓度差变大,但由于此时心肌细胞膜的钾电导降低,细胞内钾外流反而减少,导致静息电位负值变小,静息电位与阈电位的距离亦变小,兴奋所需的阈刺激也变小,故心肌兴奋性增强。高钾血症时,虽然心肌细胞膜对钾的通透性增高,但细胞内外液中钾离子浓度差变小,细胞内钾外流减少而导致静息电位负值变小,静息电位与阈电位的距离变小,使心肌兴奋性增强;但当严重高钾血症时,由于静息电位太小,钠通道失活,发生去极化阻滞,导致心肌兴奋性降低或消失。 急性肾衰引起高钾血症的机制 急性肾衰竭时,肾小球滤过率的迅速下降导致钾离子的排泄减少 急性肾衰出现高钾血症应如何处理

钠型离子交换树脂15~30g口服,每日3~4次。此外,高钾血症病人禁用库存血,限制摄入含钾高的食物,停用含钾药物,并及时纠正酸中毒。 试述创伤性休克引起高钾血症的机制。 ⑴创伤性休克可引起急性肾功能衰竭,肾脏排钾障碍是引起高钾血症的主要原因。 ⑵休克时可发生乳酸性酸中毒及急性肾功能不全所致的酸中毒。酸中毒时,细胞外液 中的H+和细胞内液中的K+交换,同时肾小管泌H+增加而排K+减少。 ⑶休克时组织因血液灌流量严重而缺氧,细胞内ATP合成不足,细胞膜钠泵失灵,细胞外液中的K+不易进入缺氧严重不足引起细胞坏死时,细胞内K+释出。 急性轻度高钾血症时患者为什么会出现手足感觉异常? 急性轻度高钾血症时,由于细胞内外K+浓度差减少,细胞内K+外流减少,导致静息电位负值变小,与阈电位的距离变小而使神经肌肉兴奋性升高,故患者出现手足感觉异常或疼痛等神经肌肉兴奋性升高的表现。

实验性高钾血症及其治疗 实验报告 (2)

实验性高钾血症及其治疗 【实验目的】 1. 观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 2. 了解血钾进行性升高的不同阶段,高血钾对心肌细胞的毒性作用。 3. 了解高钾血症的基本治疗方法和抢救。 【实验原理】 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。 本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定 血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 【实验对象】 家兔,体重2~3kg,雌雄不限。 【实验药品与器材】 20%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥钠),2%、10%氯化钾溶液、10%氯化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液,葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素),肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水),手术器械、注射器、头皮针、取血器、生物信号采集处理仪、电解质测定仪。 【实验观察指标】 血钾浓度、心电图变化、呼吸频率、幅度和节律。 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用20%氨基甲酸乙酯5ml/kg或3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg 从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈总动脉按家兔血管常规分离方法分离颈总动脉,插入导管取血0.5~1ml测定实验前的血钾浓度。 3. 心电描记将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢(红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物信号记录仪使用方法描记实验前的心电图波形存盘,待实验结束后打印分析。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁上相当于心尖部位的皮下。这样可较早发现高血钾家兔的心电图异常波形。 4. 氯化钾溶液注入方法从耳缘静脉滴入2%氯化钾(15~20滴/min)。 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化钾的过程中,观察生物信号采集处理仪显示器上心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,描记存盘。同时取血0.5~1ml测定血钾浓度。 6. 实施抢救当出现心室扑动或颤动波形后,立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由另外一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖-胰岛素溶液7m1/kg)。如果短时间内无法快速输入抢救的药物,救治效果不佳。 待心室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时,再由颈总动脉采血测定救治后的血钾浓度。 7. 注入致死剂量的l0%氯化钾(8m1/kg),开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。 【实验结果】

机能实验报告 高血钾

机能学实验报告 实验日期:2015年6月10日 带教教师: 小组成员: 专业班级:预防医学一大班 家兔正常心电图及高钾血症得实验治疗Array 一、实验目得 1、掌握家兔正常心电图波形得生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型得复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗得方法(4%碳酸氢钠或极化液) 二、实验原理 血清钾高于5、5mmol/L为高钾血症(正常值:3、5~5、5mmol/L)。高钾血症对机体得危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位与有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时得心电图表现为:①P波与QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深得S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型得心律失常。高钾血症得抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾得心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度,了解高钾血症对心脏得毒性作用以及对高钾血症得抢救治疗措施。三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤

1、称重、麻醉与固定动物:家兔称重后,用3%注射用戊巴比妥钠,按1ml/kg从耳 缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子得状态,当兔子角膜反射敏感度,肌肉紧张性明显降低,立即停止给药。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上, 2手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管得颈静脉插管以备输液,缓慢注入生理盐水(5-10 滴/min)以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管得总动脉插管。 3、测正常血钾浓度:用EP管通过颈总动脉取血0、5ml,用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前得血浆钾度。 4、描记心电图:将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红),左前肢(黄),左后肢(绿) ,右后肢(黑)得顺序连接,依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子得正常心电图波形。 5、复制高钾血症动物模型:通过输液装置,经颈外动脉从慢到快调滴速滴注3%得KCl溶液6滴/第1min,10滴/第2min,16滴/第3min及以后(不超20滴/min),密切观察与记录出现高钾时典型得心电图变化,一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时,立即调慢静脉滴注Kcl得速度,维持在6滴/minde,等待,当心电图出现典型高钾血症表现就是,经颈外动脉取血0、5ml作血钾测定。 6、高钾血症得抢救:在心电图出现典型高钾血症改变时,立即对家兔实施抢救。通过颈外静脉快速滴注极化液(20—30滴/秒)30min,待心电图基本恢复正常时,再次记录心电图改变,并由颈总动脉采血0、5ml,测定救治后得血钾浓度。 五、实验结果 实验中家兔不同时期得心电图(电子版实验结果粘贴) 极化液—实验前

高钾血症实验

机能学实验报告 实验日期: 带教教师: 小组成员: 专业班级: 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“T”的机制。 3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不期缩短,传导性、自律性、收缩降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为: (1)T波高尖,基底部较窄,形如帐篷。高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏。 (2)P波减低,最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能通

过结间传导束下传至心室,则可形成“窦-室传导”,困此心室律还比较整齐 (3)S-T段压低与T波呈一斜线。或出现由Q R S波与S T-T相融合的双相波。S-T段也可抬高。(4)Q R S时间加宽,R波低小。 (5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖—胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症,观察心电图变化,了解高钾血症对心脏的毒性作用,以及对高钾血症的急救措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。 四、实验方法与步骤 1.家兔的称重、麻醉和固定:家兔称重后,用注射用乌拉坦溶液,按4ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态。麻醉的深浅,可根据兔子呼吸的深度和速度、角膜反射的有无和敏感度,四肢和腹壁肌肉的紧张性,以及趾缝、皮肤夹捏反应等进行判断。当上述活动或反应明显减弱或消失时,立即停止给药。在采用静脉注射时,速度应当缓慢,注射过快,易导致动物死亡。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上。 2.手术与血管插管:颈部剪毛,在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm,分离颈前肌肉暴露气管,做气管插管,并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉,插入连接三通管的颈静脉插管以备输液,在左侧肌肉深部分离出颈总动脉,插入连接三通管的总动脉插管。

功能学实验-家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告 一.实验目的 学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。二.实验动物 未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。 三.实验过程 1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重 2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。 2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。 3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。 4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。 5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。 6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。 7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。 8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。从心室第四次抽取血液。 9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100ul,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。 四.实验器材及注意事项 实验器材: 肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极 注意事项: 1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端,防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。 2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下,切勿插入肌肉组织中,测量心电图时应关闭附近的电灯,防止肌电和其他外部电场对心电图测量造成影响,产生误差。 3. 蠕动泵的滴速应严格调整好,滴速会影响心电图的变化时间以及抢救成功率。使用生理盐水调整时使用的EP管之后应进行蒸馏水的清洗,以免对之后血清的测量产生误差。 4. 血液样本应避免放置过久,若其中的血细胞因放置过久而破裂,细胞内的K离子溢出会使得之后血清K离子浓度测量出现较大误差。 五.实验结果 1. 家兔在KCl溶液滴注前后心电图的变化:

实验性高钾血症及其抢救

实验性高钾血症及其抢救 【实验目的】 1、学习家兔高钾血症模型的复制方法,了解钾离子的生理意义; 2、掌握高钾血症的概念及其对心肌电生理影响的病理生理机制; 3、观察高钾血症时心电图的变化特征; 4、进一步了解高钾血症产生的原因、机制和抢救措施。 【实验原理】 (一)、高钾血症定义 血清钾浓度高于5.5mmol/L为高钾血症。 (二)、高钾血症对心肌电生理影响的病理生理机制 (三)、高钾血症时心电图的变化特征 ① 0期除极速度与幅度降低,心肌动作电位传导性降低,心电图出现P波低平,QRS波增宽,P-R间期延长; ②高钾血症可激活延时整流钾通道,2期和3期钾外流加速,电位变化不大,心电图表现为T波高尖,Q-T间期缩短,同时,T波与QRS波融合成正弦波; ③心肌传导减慢,3期复极加速造成有效不应期缩短形成兴奋折返等因素可引起心室纤颤; ④严重传导阻滞或兴奋性消失可导致心脏停搏。 (四)、高钾血症的抢救措施 ①静脉输入钙盐;②静脉输入碱性溶液(如NaHCO3);③静脉输入葡萄糖-胰岛素溶液。

【实验步骤】 1、麻醉、固定:耳缘静脉注射1.5%戊巴比妥钠2ml/kg。 2、心电图描记。观察正常心电图,记录并存盘。 3、高钾血症模型复制。由耳缘静脉缓慢推注4%KCL。密切观察心电图变化及家兔的活动状态。当家兔出现P波低平增宽,QRS波群低压变宽和高尖T波时,记录心电图并存盘。 4、维持原速继续缓慢推注4%KCL。 5、当心电图出现心室扑动或颤动后立即停止注射KCL,同时,由耳缘静脉推注10%CaCL2(2ml/kg),观察并记录心电图变化,存盘。 【实验结果】 1、耳缘静脉缓慢输入4%KCL后,家兔心电图表现为:P波低平或消失,P-R间期延长,QRS波增宽,T波高耸,甚至QRS波和T波融合成正弦波。 2、若抢救及时,静脉输入10%CaCL2后,家兔心电图可逐渐恢复。 【实验讨论】 高钾血症时,虽然内向整流钾通道激活,但在静息状态时该通道已处于最大通透状态,不能是更多的钾离子有细胞内向细胞外流出以提高静息电位的绝对值,反而因细胞内外钾浓度梯度减少致细胞的静息电位绝对值减少,当静息电位与阈电位差值过小时,钠通道活性降低,动作电位0期钠内流减少,除极速度与幅度降低,心电图变现为P波低平甚至消失。因0期除极速度与幅度降低,心肌动作电位传导性降低,心电图可出现P波、QRS波群增宽,P-R间期延长。高钾还可激活延时整流钾通道,2期和3期钾离子外流加速,电位变化加大,心电图可表现为T波高尖,Q-T间期缩短。由于2期和3期钾外流加速,T波高尖和上述QRS波群增宽,因此心电图可出现QRS波和T波融合成的正弦波。心肌传导减慢,3期复极加速造成有效不应期缩短形成兴奋折返等因素可引起心室纤颤。严重的传导阻滞或兴奋性消失可导致心脏停搏。此为高钾血症时心电图变化的简要解释。 若抢救及时,静脉输入10%CaCL2后,家兔心电图可逐渐恢复。在于静脉输入钙盐,以对抗高钾对心肌的损害。钙可使Et绝对值变小,由于心肌细胞膜的Em与Et距离接近正常,故兴奋性可恢复正常;此外,钙还可使收缩性增强。 【实验结论】 静脉输入4%KCL可导致高钾血症,而钙盐可对抗钾离子对心肌的毒性。

高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验

高血钾对家兔的毒性作用表现及其 解救实验 组别:9 组长:白晓阳11202170578 组员:杨小容11202170572 黎艳11202170573 陈欣欣11202170574 林春玲11202170575 李雪梅11202170576

高血钾对家兔的毒性作用表现及其 解救实验 【前期汇总】 高钾血症是临床上多种疾病所并发的一种常见病理生理过程,是最易危及生命的水、电解质紊乱性疾病之一,在临床上属于急症范畴,主要表现为对心肌、骨骼肌和酸碱平衡的影响。 当血清钾为5~7mmol/L时,心肌细胞静息电位轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也减小,心肌兴奋性增高,导致室颤的发生;当血清钾>7mmol/L时,使心肌细胞产生去极化阻滞,静息电位低于阈电位,兴奋性、传导性、自律性、收缩性均降低,导致心率减慢甚至心搏停止。轻度高钾血症时,患者可有手足感觉异常、疼痛、肌肉轻度震颤等症状;严重高钾血症则可导致四肢软弱无力、腱反射消失甚至驰缓性麻痹。同时,高钾血症可导致代谢性酸中毒,表现为尿液呈碱性。[1] 对于高钾血症,最简便、最有效、最快捷的检查方法就是心电图检查,因为此病在临床症状表现不明显时,心电图就早已出现了显著的改变。不同程度的高血钾在心电图上有不同的特征表现,表现为P 波低平或消失、T波高尖和QRS波群增宽。[2]所以,心电图检查是临床诊断高钾血症的最具重要价值的检查方法,且具有对假性高血钾

的判别作用。它比血清钾的测定更为准确、便捷、无创,且可重复监测。 在高钾血症的治疗中,葡萄糖酸钙被用作心脏保护剂。虽然它并不能影响血液中钾离子的浓度,但它能够降低心肌细胞的兴奋度,从而降低发生心律失常的可能性。 【实验目的】 学习用家兔建立高钾血症模型,使用MedLab生物信号采集处理系统监测家兔正常时、高血钾时以及给予解救药后的心电变化并采集心电图,观察高钾血症时家兔的病理生理学表现。 【实验材料】 1、实验动物:家兔一只 2、实验器材:兔手术台,手术器械1套,心电针形电极,MedLab 生物信息采集处理系统。 3、实验药品:20%乌拉坦、l0%氯化钾溶液、10%葡萄糖酸钙溶液 【实验步骤】 1、取家兔1只,称重并记录下体重。用20%乌拉坦按2ml/kg进行麻醉;然后进行气管插管保持呼吸通畅,颈外静脉插管,开通颈外静脉

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功能学实验家兔高钾血症实验报告 一.实验目的 学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化, 了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。 二.实验动物 未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为 2.00kg。 三.实验过程 1?取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。 2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。 3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。分离3-4cm 长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。 4. 于未滴注KCI之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。 5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电 图波形。 6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCI溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。 7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。 8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。从心室第四次抽取血液。 9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min ,取血清100ul ,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。 四.实验器材及注意事项 实验器材: 肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物 手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮 针三支,输液装置一套,心电针型电极 注意事项: 1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药, 稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端,防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。

实验性高钾血症及其治疗-实验报告-(2)

实验性高钾血症及其治疗-实验报告-(2)

实验性高钾血症及其治疗 【实验目的】 1. 观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 2. 了解血钾进行性升高的不同阶段,高血钾对心肌细胞的毒性作用。 3. 了解高钾血症的基本治疗方法和抢救。 【实验原理】 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症(正常值:3.5~5.5mmol/L)。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏,可使心肌动作电位和有效不应期缩短,传导性、自律性、收缩性降低,兴奋性则呈双相变化:轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失,心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;②T波高尖:高钾血症早期即可出现,严重高钾血症时可出现正弦波,此时,已迫近室颤或心室停搏;③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性;②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。 本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定 血钾浓度,了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 【实验对象】 家兔,体重2~3kg,雌雄不限。 【实验药品与器材】 20%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥钠),2%、10%氯化钾溶液、10%氯化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液,葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素),肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水),手术器械、注射器、头皮针、取血器、生物信号采集处理仪、电解质测定仪。 【实验观察指标】 血钾浓度、心电图变化、呼吸频率、幅度和节律。 【实验方法与步骤】 1. 称重、麻醉和固定动物家兔称重后,用20%氨基甲酸乙酯5ml/kg或3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg 从耳缘静脉缓慢注入。麻醉后,将动物仰卧位固定在实验台上,颈前部备皮。 2. 分离颈总动脉按家兔血管常规分离方法分离颈总动脉,插入导管取血0.5~1ml测定实验前的血钾浓度。 3. 心电描记将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按左前肢(黄),右前肢(红),左后肢(绿) ,右后肢(黑)的顺序连接,依生物信号记录仪使用方法描记实验前的心电图波形存盘,待实验结束后打印分析。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将右前肢电极插在下颏部皮下,左前肢的电极插在胸壁上相当于心尖部位的皮下。这样可较早发现高血钾家兔的心电图异常波形。 4. 氯化钾溶液注入方法从耳缘静脉滴入2%氯化钾(15~20滴/min)。 5. 观察记录心电图在静脉滴注氯化钾的过程中,观察生物信号采集处理仪显示器上心电图波形的变化。出现P波低压增宽、QRS 波群低压变宽和高尖T波时,描记存盘。同时取血0.5~1ml测定血钾浓度。 6. 实施抢救当出现心室扑动或颤动波形后,立即停止滴注氯化钾,并迅速准确地由另外一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10%氯化钙2m1/kg,或4%碳酸氢钠5m1/kg,或葡萄糖-胰岛素溶液7m1/kg)。如果短时间内无法快速输入抢救的药物,救治效果不佳。 待心室扑动或颤动波消失,心电图基本恢复正常时,再由颈总动脉采血测定救治后的血钾浓度。 7. 注入致死剂量的l0%氯化钾(8m1/kg),开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。

实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救 一、实验目的 (1)掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 (2)观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。 (3)自行设计和实施抢救治疗方案。 (4)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。 二、实验动物、药品与器材 1.动物家兔,雌雄不拘,体重2.0~3.0 kg。 2.药品 2.5 %戊巴比妥钠溶液,肝素生理盐水溶液(125U肝素/ml生理盐水),2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液,10%氯化钙溶液,4 %碳酸氢钠溶液,葡萄糖胰岛素溶液(每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素)。 3.器材计算机实验系统,心电记录与转换设备,一般手术器械,静脉输液装置,5 ml、l0 ml、20ml注射器,小儿头皮针,抗凝试管。 三、观察指标 精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛),呼吸频率、深度和节律,心电图变化,血浆钾浓度。 四、方法与步骤 1.动物的麻醉与手术动物称重后,用2.5 %戊巴比妥钠,按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘静脉缓慢注入。注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化,防止麻醉过深。麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。 颈部剪毛,沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm,分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。颈动脉导管用于取血;颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,缓慢输入生理盐水(5~10滴/min),以保持管道通畅。 2.测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml,用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。 3.心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。导联线按右前肢(红)、左前肢(黄)、左后肢(蓝)、右后肢(黑)的顺序连接,通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将胸导联电极插入胸部皮下,将头部导联电极插入下颏部皮下,将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。这样记录的心电图高大清晰,高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。 4.高钾血症的复制通过颈外静脉和输液装置,缓慢滴注2%的氰化钾生理盐水溶液,同时密切观察和记录心电图变化。出现P波低平、增宽,QRS波群低压变宽和高尖T波后,立即取血1 ml作血钾测定,并开始实施抢救。 如果用2%的氯化钾住理盐水溶液滴注不出现典型心电图改变,可改用5%的氯化钾生理盐水溶液滴注,并密切观察,及时记录。 5.高钾血症的抢救在滴注氯化钾生理盐水溶液之前,必须选择准备好抢救药物(10%氯化钙2 ml/kg或4 %碳酸氯钠5ml/kg,或葡萄糖胰岛素溶液7ml/kg),并用头皮针准备好耳缘静脉输注通道。在心电图出现典型高血钾改变后立即实施抢救,通过耳缘静脉快速

病理生理学考试-- 病理生理学考试--急性高钾血症及其抢救治疗

急性高钾血症及其抢救治疗 05影像一班叶枝盈 0501070012 实验同学:孙伟奇赵静徐步化叶枝盈 指导老师:金可可 摘要 目的: 1. 掌握家兔高钾血症模型的复制方法 2. 观察高钾血症家兔心电图变化的特征 3. 了解高血钾对心肌细胞的毒性作用 4. 自行设计和实施抢救治疗方案 方法:制备高血钾家兔模型,并分别用胰岛素+葡萄糖、葡萄糖酸钙、NaHCO3和速尿进行抢救。结果:高钾血症时,心电图可见家兔心律失常,P波低平、增宽,QRS群低压变宽,高尖T 波,S波加深;并且可见家兔呼吸缓慢,瞳孔放大,眼球突出,紫绀等现象。 结论:血中钾浓度升高对心脏有毒性作用,包括降低心肌兴奋性、自律性、传导性、收缩性,且钾浓度升高速度越快,毒性作用越大。静脉推注速尿和葡萄糖酸钙溶液,静脉滴注葡萄糖+胰岛素和碳酸氢钠都对缓解高血钾症有一定的作用。 关键词:高血钾、速尿、NaHCO3、葡萄糖酸钙、胰岛素+葡萄糖 Abstract Goal: 1.Grasping domestic rabbit hyperkalemia model duplication method 2.Observes hyperkalemia domestic rabbit electrocardiogram change the

characteristic 3.Understands hyperkalemia to the cardiac muscle cell toxic effect 4.Independently designs and the implementation rescue treatment plan Method: Prepares hyperkalemia the domestic rabbit model, and uses the insulin + glucose, the calcium gluconate, NaHCO3 and the furosemide separately carries on the rescue. Results: When hyperkalemia sickness, the electrocardiogram obvious domestic rabbit arrythmia, the P wave low and level, increases the width, the QRS group low pressure broaden, tall T the wave, the S wave deepening; And the obvious domestic rabbit breath is slow, mydriasis, protruding eyeballs, purple dark purple and so on phenomena. Conclusion: In the blood the potassium density ascension to the heart virose function, including reduces the cardiac

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