2008 实验动物常用镇静、麻醉、止痛药剂参考剂量表
實驗動物常用鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表 -2008 周京玉
使用說明:
1.以下內容為國內常用實驗動物之鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表。
2.本表內容僅供研究人員參考用, 實際劑量視實驗動物品種、品系、性別、年齡、生理狀況、
飼養條件、實驗需求而調整之。
3.由於多數藥劑屬管制藥品, 研究人員需先取得相關證照後使用。人員不得為了迴避管制藥品
相關法令而選擇使用非管制類藥劑, 除非該藥劑有科學研究之需求、並能提供充分的的實驗依據供動物實驗管理小組審核。
4.關於藥物的選擇、投藥方式等, 建議與獸醫師商討。如需進行外科手術, 動物必須進入手術
期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度（眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射）, 再進行手術。
5.CO2+ 10-50%O2 混合氣體其作用時間較短，且因兩種氣體密度不同，易造成O2在鋼瓶上
層、CO2在底部，導致氣體混合不均，需注意。
6.AVERTIN需經動物實驗管理委員會審查同意，確定有其科學研究之需求與依據、並且無其
他替代藥物可使用時，才得以使用本藥劑。如製作及保存得宜，於4℃避光冷藏可保存4個月，但是如果製作或儲藏時未適當地避光，將使動物致命，因此建議新鮮泡製使用，並於每次使用前確認其pH值＞5。本藥劑由於對腹腔刺激性強，不得重複注射於同一隻動物。
7.有些藥物如Pentobarbital、ketamine等，當靜脈注射藥劑不慎漏出血管外時，建議以生理
食鹽水稀釋5﹪lidocaine後注射至藥劑洩漏周圍組織，以減低動物的疼痛並降低組織潰爛或壞死的後遺症。
8.非類固醇類止痛藥（NSAID）對狗和貓的副作用大，建議使用前與獸醫師商討。
9.由於非人類靈長類（NHP）品種差異性大, 本劑量表以Rhesus monkey (M.Mulatta) 為對
象撰寫。
10.參考資料:
1)Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. Dennis F. Kohn.et.al.,
1997.Academic Press.
2)Lab Animals. (2003) 37 (Suppl.1) BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW Joint Working
Group on Refinement.
3)NIH Anesthesia and Analgesia Fornulary. 2005.
表一、小鼠（MOUSE）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑劑 量 投藥方式備 註 動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Atropine 0.02-0.05mg/kg IM,SC
2 Diazepam(Valium?) 5mg/kg IP
3 Acetylpromazine 0.75mg/kg IP
4 Ketamine 20-44mg/kg IM
5 Terazol?,Zoletil? 80-160mg/kg IM,IP
6 Zoletil/Xylazine
7 CO2+ 10-50%O2 混合氣體 To effect IH
動物麻醉：進行侵略性實驗、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 50-90mg/kg IP 1.品系差異性大, 需注意
2.建議稀釋後使用
2 Thiopental 50mg/kg IP
3 Ketamine 50-200mg/kg
40-60mg/kg IP
IM
建議使用於minor surgery
4 Ketamine/Xylazine 40-85mg/kg K + 5-21mg/kg X
90-120mg/kg K+5mg/kg X IM,IP
IM,IP
1.Yohimbine(1-2mg/kgIP),Tolazoline(20mg/
kg IP)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1/3 ketamine劑量
5 Ketamine/Xylazine 1.0ml K (100mg/ kg)＋0.5ml X
(20mg/ml)＋8.5ml注射用水混
合, 0.1ml/10g
IP
6 Ketamine/Medetomidine 0.38ml K (100mg/ kg)+0.5ml
M(1mg/ml) + 4.12ml注射用水
混合, 0.1ml/10g IP Atipamezol (1mg/kgSC)為Medetomidine結抗劑
7 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1
注射用水:2
Midazolam:1混合,
0.1ml/10g
IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為結抗
劑
8 Tribromoethanol (Avertin) -
等量混合Tribromyl ethyl alcohol 和
Tertiary amyl alcohol (1.2%
dilution) 250mg/kg
(0.2ml/10g)
IP ICR mice建議使用2.5% 400mg/kg
9 Halothane, Isoflurane To effect IH 抽氣櫃內或通風良好處使用
10 初生仔鼠（尚未長毛者）麻醉：
Pentobarbital 5mg/kg, IP
Halothane
低溫麻醉
1.將仔鼠放入乳膠手套內,或者放入紙為內襯的玻璃試管裡,浸入碎冰塊(或冰水)中
2.仔鼠逐漸呈現倦怠及停止行動,可提供約10分鐘的操作時間。如需較長時間的麻醉,將仔鼠放置乳膠覆蓋的冰袋上操作
3.操作中全程使用冷光照明,勿使用可能發熱的照明燈,以免仔鼠恢復體溫與意識
4.手術操作完畢,動物至於33℃保溫箱或有巢料片的飼育盒保溫, 30-60分鐘左右後仔鼠將甦醒
止痛藥
1 Morphine 5-10mg/kg, q2-4h SC,IP
2 Oxymorphine 0.15mg/kg, q4h IM
3 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 2.5-5mg/kg, q2h SC
4 Buprenorphine(Buprenex?) 2.0mg/kg,, q12h SC,IP
5 Ketorolac 0.7-10mg/kg, q24h PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
表二、大鼠（RAT）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式備 註 動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Atropine 0.04-0.1mg/kg IM,SC
2 Diazepam(Valium?) 0.5-15mg/kg IP
3 Ketamine 22-50mg/kg IM
4 CO2 + 10-50%O2 To effect IH
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 30-40mg/kg
30-60mg/kg IV
IP
1.以低卡路里飼料飼養的公鼠需使用較高劑量
2.重複注射時, 會逐漸產生抗藥性
2 Thiopental(2.5%) 30-100mg/kg IP
3 Ketamine 100-200mg/kg
50-100mg/kg IP
IM
建議使用於minor surgery
4 Ketamine/Xylazine 40-80mg/kgK+5-10mg/kgX IM,IP 1.Yohimbine(1-2mg/kgIP),Tolazoline(20mg/kgI
P)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1/3 ketamine劑量
5 Terazol?,Zoletil? 20-40mg/kg
20mg/kg IP
IM
測量麻醉深度之檢查如眼瞼反應、腳趾、喉頭反
射等, 在使用此藥劑時不適用
6 Zoletil/Xylazine 20-40mg/kgZ+5-10mg/kgX IP
7 Ketamine/Medetomidine 60-75mg/kgK
+0.25-0.5mg/kgM
SC,IP
8 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1
注射用水:2
Midazolam:1混合,
2.7-4.0ml/kg
IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為結抗劑
9 Chloral hydrate（5%） 300-500mg/kg IP 1.需經動物實驗管理委員會審查同意,確定有其
科學研究之需求與依據、並且無其他替代藥物
可使用時,才得以使用本藥劑
2.此藥劑對腹腔刺激性強,易造成腹膜炎及胃腸
道異常蠕動,需注意
1
Halothane, Isoflurane To effect IH 抽氣櫃內或通風良好處使用
1 1 初生仔鼠（尚未長毛者）麻醉：
Pentobarbital 5mg/kg, IP
Halothane
低溫麻醉
1.將仔鼠放入乳膠手套內,或者放入紙為內襯的玻璃試管裡,浸入碎冰塊(或冰水)中
2.仔鼠逐漸呈現倦怠及停止行動,可提供約10分鐘的操作時間。如需較長時間的麻醉,將仔鼠放置乳膠覆蓋的冰袋上操作
3.操作中全程使用冷光照明,勿使用可能發熱的照明燈,以免仔鼠恢復體溫與意識
4.手術操作完畢,動物至於33℃保溫箱或有巢料片的飼育盒保溫, 30-60分鐘左右後仔鼠將甦醒
止痛藥
1 Morphin 1.5-6mg/kg, q2-4h SC
2 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 2.5-5mg/kg, q2h SC
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.01-0.05mg/kg SC,IP
4 Ketorolac 3-5mg/kg, q12-24h
1 mg/kg, q12-24h PO IM
5 Carprofen 5mg/kg, q12h SC
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
1 Atropine 0.1mg/kg IP,IM,SC
2 Ketamine 22-44mg/kg IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 50-90mg/kg IP 1.麻醉深度上個體差異大
2.會逐漸產生抗藥性
2 Ketamine/Xylazine 50-200mg/kg K+
10mg/kgX IP 1.Yohimbine(1-2mg/kgIP),Tolazoline(20mg/kgIP)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1/3 ketamine劑量
3 Terazol?,Zoletil? 50-80mg/kg IM,IP
4 Zoletil+Xylaxine 20-30mg/kgZ+10mg/kgX IP 測量麻醉深度之檢查如腳趾反射, 在使用此劑量
時不適用, 需注意
5 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1
注射用水:2
Midazolam:1混合,
4ml/kg
IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為結抗劑
6 Halothane、Isoflurane To effect IH 抽氣櫃內或通風良好處使用 止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 1-5mg/kg, q2-4h SC,IM
2 Buprenorphine(Buprenex?) 0.05-0.1mg/kg, q8-12h SC,IM
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
1 Atropine 0.1mg/kg IP,IM,SC
2 Ketamine 44-100mg/kg IM
3 Ketamine/Xylazine 50mg/kg K+ 2mg/kgX IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 36-100mg/kg IP
2 Ketamine 150-200mg/kg IP
3 Terazol?,Zoletil? 60mg/kg IM
4 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1
注射用水:2
Midazolam:1混合,
8ml/kg
IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為結抗劑
5 Tribromoethanol (Avertin) -
等量混合Tribromyl ethyl alcohol 和
Tertiary amyl alcohol (1.25% dilution)
250-325mg/kg IP
6 Halothane、Isoflurane To effect IH 抽氣櫃內或通風良好處使用 止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.05-5mg/kg, q2-4h SC
2 Buprenorphine(Buprenex?) 0.05-1mg/kg, q8-12h SC,IM
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
表五、天竺鼠（GUINEA PIG）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式備 註
動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Atropine 0.05mg/kg SC
2 Ketamine 22-30mg/kg IM 肌肉注射後易出現自殘行為及肌肉潰爛, 需注
意
3 Diazepam 2.5-5.0mg/kg IM,SC,IV
4 Acetylpromazine 5-10mg/kg IM
5 Terazol?,Zoletil? 10-80mg/kg IM,IP 鎮靜時間長
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 15-40mg/kg IP
2 Thiopental 20mg/kg IV
3 Ketamine/Xylazine 44mg/kg K+5-13mg/kgX
27mg/kgK+0.6mg/kgX, 配合
局部投予 0.5ml 1%
lidocaine +1:200,000
epinephrine IM
IM
1.Yohimbine(1-2mg/kgIP),Tolazoline(20mg/kgI
P)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1/3 ketamine劑量
4 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam Fentanyl/Fluanisone :1
注射用水:2
Midazolam:1混合,
8ml/kg
IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate為結抗劑
5 Terazol?,Zoletil? 60mg/kg, 配合局部投予
0.5ml 1% lidocaine +
1:200,000 epinephrine
IM,IP 建議使用於minor surgery
6 Halothane、 Isoflurane To effect IH 1.剛吸入藥劑時天竺鼠易憋氣, 需注意
2.抽氣櫃內或通風良好處使用
止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.25-0.4mg/kg SC,IV
2 Morphine 10mg/kg, q2-4h SC,IM
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.05mg/kg, q8-12h SC
4 Aspirin 86mg/kg PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
註: 天竺鼠的盲腸可能影麻醉響藥物的吸收及效應。
表六、兔子（RABBIT）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式備 註
動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Glycopyrrolate 0.1mg/kg IM 兔子有atropine水解脢, 因此替代使用另一
種anticholinergics
2 Ketamine 15-50mg/kg IM 肌肉注射後易出現自殘行為及肌肉潰爛
3 Ketamine/Acetylpromazine(10:1) 15-50mg/kg IM 以Ketamine劑量計算之
4 Diazepam 5-10mg/kg IM,IV
5 Acetylpromazine 1.0-10mg/kg IM,SC,IV
6 Xylazine 5-10mg/kg IM
7 Butorphanol/ Acetylpromazine 1mg/kg B
1mg/kg A SC SC
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental(2.5%) 50mg/kg IV 需緩慢注射
2 Pentobarbital(3%) 15-40mg/kg IV 需緩慢注射
3 Pentobarbital/Chlorpromazine 先注射2mg/kg C, 5-10分鐘後注射
20-30mg/kg P IM IV
4 Pentobarbital/Xylazine 先注射5mg/kg X, 5-10分鐘後注射
11.8-28.4mg/kg P SC,IM IV
5 Ketamine/Xylazine 35-50mg/kgK+5-10mg/kgX IM 1.Yohimbine(0.2mg/kgIV)為Xylazine結抗
劑
2.如需追加劑量, 使用1/3
ketamine/Xylazine劑量
6 Ketamine/Xylazine/Acetylpromazin
e 先注射5-10mg/kgX,0.75mg/kg A ,
5-10分鐘後注射35-50mg/kg K
IM
7 Ketamine/Midazolam 先注射1mg/kg M, 5-10分鐘後注射
25mg/kg K
IM
8 Ketamine/Diazepam 先注射5-10mg/kg D, 5-10分鐘後注
射 15-50mg/kg K
IM
9 Ketamine/ Butorphanol/
Acetylpromazine 先注射0.75mg/kg A, 0.1mg/kg B,
5-10分鐘後注射35mg/kg K
IM
1 0 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM)/
Midazolam
先注射0.3mg/kg
Fentanyl/Fluanisone,
再注射0.5-2mg/kg M
IM Naloxone(0.005,0.01,0.1mg/kgIV),
Doxapram(5mg/kg) 皆可刺激呼吸反應
1 1 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.剛吸入藥劑時兔子易憋氣, 需注意
2.抽氣櫃內或通風良好處使用
1 2 Ketamine/Xylazine/Isoflurane 先肌肉注射35mg/kg K +5mg/kgX,
再以Isoflurane維持麻醉
IM
IH
止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic
?) 0.1-1.5mg/kg, q4h
1.0-7.5mg/kg, q4h
IV
SC,IM
2 Morphine 5mg/kg, q2-4h SC,IM
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.02-0.1mg/kg, q8-12h SC
4 Flunixin meglumine(Banamine TM) 1.1mg/kg, q12h SC,IM
5 Ketoprofen 3mg/kg, q12h IM
6 Carprofen 1.5mg/kg, q12h PO
7 Aspirin 500mg/kg PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥 註:
1.兔子的盲腸可能影響麻醉藥物的吸收及效應。
2.兔子在恐懼或緊張時會停止動彈, 呈現假死現象, 需與藥物反應區別之。
1 Atropine 0.02-0.05mg/kg SC,IM
2 Diazepam(Valium TM) 1-5mg/kg
0.2-0.6mg/kg IM IV
3 Acetylpromazine 0.055-0.11mg/kg IM,SC,IV
4 Xylazine 1-2mg/kg IM
5 Medetomidine 0.1-0.8mg/kg SC,IM,IV
6 Terazol?,Zoletil? 6-12mg/kg IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental 10-35mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
2 Pentobarbital 20-30mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
3 Ketamine/Xylazine 先注射1-2mg/kgX , 5-10分
鐘後注射10-25mg/kgK IM 1.Yohimbine(0.2mg/kgIV)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1-2mg/kg ketamine
IV, 或1/3-1/4原劑量Ketamine IM
4 Ketamine/Midazolam 先注射0.5mg/kg M, 5-10分
鐘後注射10mg/kg K
IV
5 Ketamine/Diazepam 先注射0.5mg/kg D, 5-10分
鐘後注射10mg/kg K
IV
6 Ketamine/ Acetlypromazine 先注射0.1mg/kg A, 5-10分
鐘後注射2-4mg/kg K
IV 7 Terazol?,Zoletil?/Xylazine 8mg/kg Zoletil+0.5mg/kg X IM
8 Terazol?,Zoletil? 6-10mg/kg
3-7mg/kg IM
IV
2-3mg/kg IV 追加麻醉
9 Propofol/ Isoflurane 先靜脈注射6mg/kg P , 再以
Isoflurane維持麻醉 IV
IH
可長時間麻醉
1 0 Thiopental或Thiamylal/ Isoflurane 先靜脈注射8-12mg/kg T ,
再以Isoflurane維持麻醉
IV
IH
可長時間麻醉
1 1 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
1 2 Halothane / Nitrous Oxide
(50%O2+50%N2O)
To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.01-0.02mg/kg, q12h SC,IM
2 Morphine 0.5-5mg/kg, q2-4h SC,IM
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.01-0.02mg/kg, q12h SC,IM
4 Flunixin meglumine(Banamine TM) 0.5-2.2mg/kg, IM,IV
5 Carprofen(Rimadyl TM) 1-2mg/kg, q12h PO
6 Aspirin 10-20mg/kg, q8h PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
1 Atropine 0.02-0.05mg/kg SC,IM
2 Diazepam(Valium TM) 1mg/kg IV
3 Acetylpromazine 0.055-0.11mg/kg IM,SC,IV
4 Xylazine 0.04-0.9mg/kg IM
5 Ketamine 11mg/kg IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental 8-12mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
2 Pentobarbital 20-30mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
3 Ketamine/Xylazine 先注射1mg/kgX , 5-10分鐘
後注射10-15mg/kgK IM 3.Yohimbine(0.2mg/kgIV)為Xylazine結抗劑
4.如需追加劑量, 使用1-2mg/kg ketamine
IV, 或1/3原劑量Ketamine IM
4 Ketamine/Diazepam 先注射0.5-1mg/kg D, 5-10
分鐘後注射10mg/kg K
IV
5 Terazol?,Zoletil? 9-10mg/kg
3-7mg/kg IM
IV
2-3mg/kg IV 追加麻醉
6 Thiopental或Thiamylal/ Isoflurane 先靜脈注射8-12mg/kg T ,
再以Isoflurane維持麻醉 IV
IH
可長時間麻醉
7 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
8 Halothane/ Nitrous Oxide
(50%O2+50%N2O) To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.055-0.11mg/kg, q6-12h SC
2 Morphine 0.1mg/kg SC,IM 貓對此類藥劑非常敏感，易造成過度興奮反
應，使用時需注意
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.01-0.02mg/kg, q12h SC,IM
4 Flunixin meglumine(Banamine TM) 0.5-2.2mg/kg, IM,IV
5 Oxymorphine 0.4-1.5mg/kg,q6h SC,IM,IV
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
1 Atropine 0.02-0.05mg/kg SC,IM
2 Diazepam(Valium TM) 1-2mg/kg IM
3 Acetylpromazine 0.2-0.5mg/kg IM,SC
4 Xylazine 1mg/kg IM,SC
5 Ketamine 10-35mg/kg IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Pentobarbital 30-50mg/kg IP
2 Ketamine/Xylazine 1-4mg/kgX +20-30mg/kgK IM 1.Yohimbine(0.5mg/kgIM)為Xylazine結抗
劑
2.如需追加劑量, 使用1-2mg/kg ketamine
IV, 或1/3原劑量Ketamine IM
3 Terazol?,Zoletil? 9-10mg/kg
3-7mg/kg IM IV
4 Terazol?,Zoletil?/ Ketamine/Xylazine 3mg/kg Z + 2.4mg/kg K+
0.6mg/kg X
IM
5 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
6 Halothane/ Nitrous Oxide
(50%O2+50%N2O) To effect IH 1.可長時間麻醉
2.於通風良好處使用
止痛藥
1 Oxymorphine 0.4-1.5mg/kg, q6h SC,IM,IV
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
1 Atropine 0.05mg/kg SC,IM
2 Diazepam(Valium TM) 0.5-10mg/kg
0.44-2mg/kg IM IV
3 Acetylpromazine 1.1-2.2mg/kg IM
4 Xylazine 2mg/kg IM
5 Midazolam 0.1-0.5mg/kg IM,IV
6 Terazol?,Zoletil? 5-7mg/kg IM
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental 6.6-30mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
2 Pentobarbital 20-40mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
3 Ketamine/Xylazine 先注射2mg/kg X , 5-10分鐘
後注射20mg/kg K IV
IM
1.Yohimbine(1mg/kgIV)為Xylazine結抗劑
2.如需追加劑量, 使用1-2mg/kg ketamine
IV, 或1/3-1/4原劑量Ketamine IM
4 Ketamine/Medetomidine 先注射0.2mg/kg M, 5-10分
鐘後注射10mg/kg K IM Atipamezole(1mg/kgIV) 為Medetomidine結抗劑
5 Ketamine/Diazepam 先注射2mg/kg D, 5-10分鐘
後注射15mg/kg K
IV
6 Ketamine/ Midazolam 先注射0.5mg/kg M, 5-10分
鐘後注射33mg/kg K
IM
7 Ketamine/ Acetlypromazine 先注射11mg/kg A, 5-10分鐘
後注射33mg/kg K
IM
8 Terazol?,Zoletil? 2.0-8.8mg/kg IM 1-2mg/kg IV 追加麻醉
9 Terazol?,Zoletil?/Xylazine 先注射2mg/kg X , 5-10分鐘
後注射4.4mg/kg Zoletil
適合吸入性麻醉前之誘導麻醉
1 0 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.誘導麻醉後使用
2.可長時間麻醉
1 1 Halothane、Isoflurane / Nitrous Oxide
(50%O2+50%N2O)
To effect IH 1.誘導麻醉後使用
2.可長時間麻醉
1 2 非存活手術用組合 麻醉前給藥：Atropine0.5mg/kg IM, Ketamine 33mg/kg IM, Acepromazine 1.1mg/kg IM
誘導：Pentobarbital 20-40mg/kg IV 或 Thiopental 6.6-25mg/kg IV
麻醉維持：Pentobarbital 5-15mg/kg/hr IV或 Thiopental 3.0-6.0mg/kg/hr IV
1 3 存活手術用組合 麻醉前給藥：Atropine0.05mg/kg IM, Ketamine 33mg/kg IM, Acepromazine 1.1mg/kg
IM
誘導：Isoflurane（4-5﹪）面罩
麻醉維持：Isoflurane （0.5-20.﹪）/ Nitrous Oxide (50%O2+50%N2O)
1 4 Cardiopulmonary Bypass用組合 麻醉前給藥：Fentanyl 30-50μg/kg IV 或 Sufentanyl 7-15μg/kg IV
誘導：Fentanyl 50-100μg/kg/hr IV 或 Sufentanyl 10-30μg/kg/hr IV
麻醉維持：Isoflurane（0.25-0.5﹪）
止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.1-0.3mg/kg, q4-6h IM
2 Meperidine 2-10mg/kg, q4h IM
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.05-0.1mg/kg, q8-12h IM
4 Oxymorphine 0.15mg/kg, q4h IM
5 Aspirin 10mg/kg, q4-6h PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
表十一、反芻動物（RUMINANTS）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式備 註
動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Atropine 0.13mg/kg SC,IM
2 Xylazine 0.05-0.3mg/kg SC,IM Yohimbine(0.2mg/kg IV),
Tolazoline(1.5mg/kg IV)為Xylazine結抗劑
3 Diazepam(Valium TM) 0.2-0.4mg/kg IV
4 Acetylpromazine 0.05-1.0mg/kg SC,IM,IV靜脈注射選擇低劑量
5 Medetomidine 0.01mg/kg IV Atipamezole(0.02mg/kgIV) 為
Medetomidine結抗劑
6 Midazolam 0.4-1.3mg/kg IV Yohimbine(0.2mg/kg IV),
Tolazoline(1.5mg/kg IV)為Xylazine結抗劑動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental 10-25mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
2 Pentobarbital 20-40mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
3 Ketamine/Xylazine 先注射0.1mg/kg X , 5-10分鐘
後注射2.2-7.5mg/kg K IV
IV
Yohimbine(0.2mg/kg IV),
Tolazoline(1.5mg/kg IV)為Xylazine結抗劑
4 Ketamine/Medetomidine 先注射0.02mg/kg M, 5-10分鐘
後注射0.5mg/kg K
IV
5 Ketamine/Diazepam 先注射0.1-0.375mg/kg D, 5-10
分鐘後注射2.2-7.5mg/kg K
IV
6 Xylazine/Butorphanol/ketamine 5ml(20mg/ml) X+1ml B +注射
用水4ml, 0.05ml/kg IV,
再給予1 ml (100ml)Ketamine IV IM
7 Terazol?,Zoletil? 4mg/kg IV
8 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.誘導麻醉後使用
2.可長時間麻醉 止痛藥
1 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.1-0.3mg/kg IV
2 Meperidine 5mg/kg IV
3 Buprenorphine(Buprenex?) 0.005mg/kg, q12h SC
4 Xylazine 0.05mg/kg IV
5 Phenylbutazone 4-8mg/kg
2-5mg/kg PO IV
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
表十二、非人類靈長類（NONHUMAN PRIMATES）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式備 註
動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用
1 Atropine 0.02-0.05mg/kg SC,IM
2 Xylazine 0.5-2.0mg/kg IM Yohimbine(0.2mg/kg IV),
Tolazoline(1.5mg/kg IV)為Xylazine結抗劑
3 Diazepam(Valium TM) 0.2-0.4mg/kg IV
4 Terazol?,Zoletil? 4-6mg/kg IM
5 Ketamine 5-20mg/kg IM 可進行 TB test, 臨床檢查, 抽血採樣等
動物麻醉：進行侵略性實驗步驟、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用
1 Thiopental 15-20mg/kg
5-7mg/kg IV
IV
前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
誘導麻醉用
2 Pentobarbital 20-30mg/kg IV 前1/2劑量迅速注射, 後1/2劑量緩慢注射
3 Ketamine/Xylazine 先注射0.25-2mg/kg X , 5-10分
鐘後注射7-10mg/kg K
IM Yohimbine(0.05mg/kg IV)為Xylazine結抗劑
4 Ketamine/Midazolam 先注射0.05-0.15mg/kg M, 5-10
分鐘後注射15mg/kg K
IV 建議使用於Minor surgery
5 Ketamine/Diazepam 先注射1mg/kg D, 5-10分鐘後
注射15mg/kg K
IV 建議使用於Minor surgery
6 Terazol?,Zoletil? 4-6mg/kg IM 建議使用於Minor surgery
7 Halothane、Isoflurane To effect IH 1.誘導麻醉後使用
2.可長時間麻醉
8 Halothane、Isoflurane / Nitrous Oxide
(50%O2+50%N2O) To effect IH 1.誘導麻醉後使用
2.可長時間麻醉
止痛藥
1 Morphine 1-2mg/kg, q4h SC,IM
2 Oxymorphine 0.15mg/kg, q4-6h IM
3 Butorphanol tartrate (Torbugesic?) 0.025mg/kg, q3-6h IM
4 Meperidine 2mg/kg, q4h IM
5 Buprenorphine(Buprenex?) 0.01-0.03mg/kg, q8-12h IM
6 Aspirin 10-20mg/kg PO
7 Naproxen 10mg/kg, q12h PO
8 Acetaminophen 10mg/kg, q8h PO
IV:靜脈注射，IM:肌肉注射，SC:皮下注射，IP:腹腔注射，PO:口服，IH:吸入性，qXh:每X小時投藥
表十三、其他實驗動物之鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
動 物 藥劑及劑量 備 註
1 Fish
(魚類) MS222, 50mg/liter 作為鎮靜
MS222, 100mg/liter作為麻醉
需分別準備麻醉用水槽和甦醒用水槽
確認水槽內含氧量足夠
添加藥物使用後之廢水須以化學廢棄物處理
2 Fish
(魚類) Benzocaine, 20-30mg/liter 作為鎮靜
Benzocaine, 50mg/liter 作為麻醉
同上
3 Fish
(魚類)
Etomidate, 0.05-0.5mg/liter 運輸時鎮靜用 非手術麻醉用
4 Invertebrates
(無脊椎動物) Halothane, 5-10% 陸棲品種 MS222, 100mg/liter水棲品種
5 Toads
(蟾蜍) MS222, 1-3g/liter 浸泡麻醉, 以沾有 MS222的布
料遮蓋身體維持麻醉
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
麻醉及甦醒中皮膚表面隨時保溼
浸泡時注意溺水
於室溫甦醒, 約需3-6小時, 期間隨時保溼
6 Frogs &
Salamanders
(青蛙、蝾) MS222, 0.5-2g/liter, 浸泡麻醉, 以沾有 MS222
的布料遮蓋身體維持麻醉
同上
7 Tadpoles&
Newts
(蝌蚪、蠑嫄) MS222, 200-500mg/liter, 浸泡麻醉, 以沾有
MS222的布料遮蓋身體維持麻醉
同上
8 Crocodlilians
(鱷) Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻醉
Terazol 15mg/kg IM 作為簡易操作
9 Turtles
(烏龜) Ketamine 20-40mg/kg IM 作為保定及誘導麻醉 Terazol 5-25mg/kg IM 作為保定 Isoflurane, Halothane, 1-3% 維持麻醉
1 0 Lizards
(蜥蜴)
Ketamine 20-40mg/kg IM 作為保定
Terazol 10-30mg/kg IM
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
1 1 Snakes
(蛇)
Ketamine 50mg/kg IM 作為保定
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
1 2 Chickens&
Ducks
(雞、鴨)
Isoflurane, Halothane, 4-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
Butorphenol 1mg/kg IM 作為止痛
Bupivicaine, Phenylbutazone 軟膏作為局部止痛
劑
1 3 Pigeons
(鴿子)
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
Ketamine 20mg/kg + Xylazine 10mg/kg IM
1 4 Woodchucks
(土撥鼠)
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
Ketamine 35mg/kg + Xylazine 5mg/kg IM
1 5 Chinchillas
(灰鼠)
Isoflurane, Halothane, 3-5% 誘導, 1-3%維持麻
醉
Ketamine 40mg/kg + Xylazine 2mg/kg IM
摘譯自Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals.1997.
动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法： 吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。 1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。动物先兴奋后抑制，自行倒下。当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。 2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。
人与实验动物用药剂量换算
人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法 1．人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。一般说来，动物的耐受性要比人大，也就是单位体重的用药理动物比人要大。人的各种药物的用量在很多书上可以查得，但动物用药量可查的书较少，而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。因此，必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算：人用药量为1 ，小白鼠、大白鼠为25-50，兔、豚鼠为15-20，狗、猫为5-10 。 此外，可以采用人与动物的体表面积计算法来换算： （1）人体体表面积计算法计算我国人的体表面积，一般认为许文生氏公式（中国生理学杂志12:327,1937）尚较适用，即： 体表面积（m2）=0.0061×身高（cm）+0.0128×体重（kg）-0.1529 例：某人身高168cm，体重55kg，试计算其体表面积。 解：0.061 ×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2 （2 ）动物的体表面积计算法有许多种，在需要由体重推算体表面积时，一般认为Meeh-Rubner 氏公式尚较适用，即： 式中的K 为一常数，随动物种类而不同：小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、 猴11.8、人10.6（上列K 值各家报导略有出入）。应当指出，这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值，不一定完全符合于每个动物的实测数值。 例：试计算体重1.50kg 家兔的体表面积。
实验用狗的体重一般在 10kg 左右，其体表面积（ A ）为： 2．人及不同种类动物之间药物剂量的换算 1）直接计算法 即按： 例：某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为 250mg/kg ，试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。 解：实验用大白鼠的体重一般在 200g 左右，其体表面积（ A ）为： 250mg/kg 的剂量如改以 mg/m 2 表示，即为：
实验动物的麻醉方法
实验动物麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程屮所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验屮服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5 % 1%；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用 1 %?2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉， 也可用0. 25 %-0. 5 %溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醯乙瞇吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙瞇局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程屮要注意。但总起来说乙醛麻醉的优点 多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期岀现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20- 30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重5-10mg）及阿托品（每公斤体重0. lmg）。盐酸吗啡可降低屮枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醯用量及避免乙醸麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醸刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醯，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程屮， 仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程屮，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔 突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能 无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80-100mg/kg体重，静脉注射70-120mg/kg体重（一般每公斤体重给70-80mg即可麻醉，但有的动物要100-120mg才能麻醉，具体用量可根据各个动物的敏感性而定）。兔腹腔注射150-200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使 用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1-3% 生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注 射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg体重，腹腔注射 40 ^45mg/kg 体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配，常用浓度为 5%o此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快， 一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的麻醉深度。
实验动物的麻醉方法
实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg 才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放臵1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快，一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的
实验动物给药剂量计算方法
（）动物给药量的确定 在观察一药物的作用时，应该给动物在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题剂量太小，作用不明显，剂量太，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量：1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一应用剂量，一般可取1/10-1/5。 4．确定剂量后，如第一次实验的作用不明显，动物也没有中毒的表现（体重下降、精神不振、活动减少或其他症状），可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则应慎重分析。 动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量（ml），以便给药。
例2：计算给体重23g的小白鼠，注射盐酸吗啡15mg/kg重，溶液浓度为0.1%，应注射多少m l？ 计算方法：小白鼠每kg体重需吗啡的量为15mg，则0.1%盐酸吗啡溶液的注射量应为15ml/kg 体重，现小白鼠体重为23g，应注射0.1%盐酸吗啡溶液的用量=15×0.023=0.345ml。 （三）人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法 1．人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。一般说来，动物的耐受性要比人大，也就是单位体重的用药理动物比人要大。人的各药物的用量在很多书上可以查得，但动物用药量可查的书较少，而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。因此，必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算：人用药量为1，小白鼠、大白鼠为25-50，兔、豚鼠为15-20，狗、猫为5-10。 此外，可以采用人与动物的体表面积计算法来换算： （1）人体体表面积计算法计算我国人的体表面积，一般认为许文生氏公式（中国生理学杂志1 2:327,1937）尚较适用，即： 体表面积（m2）=0.0061×身高（cm）+0.0128×体重(kg)-0.1529 例：某人身高168cm，体重55kg，试计算其体表面积。 解：0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2 （2）动物的体表面积计算法有许多种，在需要由体重推算体表面积时，一般认为Meeh-Rubn er氏公式尚较适用，即： 式中的K为一常数，随动物种类而不同：小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家报导略有出入)。应当指出，样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值，不一定完全符合于每个动物的实测数值。 例：试计算体重1.50kg家兔的体表面积。
实验动物麻醉
实验动物麻醉 所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。 包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。 使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。 2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。 3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。 4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。 5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。注射前3小时应限制饮水。 6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。 7．手术过程中如实验动物大量失血，应补充大约3倍失血体积的0.9%生理盐水。 肌肉舒张剂 肌肉舒张剂必须与全身麻醉同时使用。如需使用肌肉舒张剂，必须在实验动物研究方案中予以详细说明，并得到实验动物管理委员会的批准。 止痛剂 不同动物疼痛持续时间不同，因此应密切观察实验动物的行为等指标。对创口较大的手术，至少在术后48小时内应给予实验动物适当的止痛剂，对较小的手术，至少在术后24小时内应给予实验动物适当的止痛剂。如24小时或48小时后实验动物表现出明显的疼痛，应持续给药，并应与兽医讨论实验动物是否存在其它的健康问题。通常同时给予两种以上不同的止痛剂有更好的效果，如鸦片类止痛剂与非类固醇类消炎药共同使用。在手术前提前使用止痛剂也有助于帮助实验动物减轻疼痛感，并可减小麻醉剂和止痛剂的使用剂量。
动物实验给药剂量换算
动物实验给药剂量换算 医学 2009-02-19 14:24 阅读672 评论2 字号：大中小 关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的 问题。分以下几点来探讨这个问题。 第一、等效剂量系数折算法换算 第二、体表面积法换算 第三、系数折算法与体表面积法的比较 第四、系数折算法的相对误差 第五、小孩与成人的剂量换算 第六、少常用实验动物剂量间的换算 第七、不同给药途径间的剂量换算 第八、LD50与药效学剂量间的换算 我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候，差不多是来源于 两条途径： 一是查文献，参考别人使用的剂量。有时有现成的，可直接用。有时没有我们所用动物的剂量，但有其它实验动物的。也有的是有临床用量的，但没有实验动物的。这样，我们就得进行换算。这是我们今天要谈的这种方法。 另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算，以期采用合适的剂量。一般参考数据是LD50。至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量，众说纷纭。这个我们再另题讨论。 下面我来说一说用第一种方法进行如何换算。
目前我们大多数人用的方法，是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。在其附录中有一个表，列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。这个表，几乎被药理专业的人们奉为经典，一直在科研中沿用。 表如下所示： screen.width-333)this.width=screen.width-333" align=absMiddle border=0> 请注意最后一行，这个就是我们通常用到的。把人的临床剂量转换为实验 动物的剂量。 试着换算一个。 如：人的临床剂量为X mg/kg ,换算成大鼠的剂量： 大鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.018/200g＝X mg/kg×70kg×0.018/0.2kg ＝6.3 X mg/kg. 这也就是说，按单位体重的剂量来算，大鼠的等效剂量相当于人的6.3倍。 在这里，我们要看到每种动物的体重（包括人），在上表中以蓝色显示的。还要注意到折算系数，也就是表中以红色所示的。将人的剂量转换成哪种动物的，就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数，将剂量乘以折算系数，再乘上人的体重与那种动物体重的比值。注意体重的单位要化成一致。这个折算系数是以上表中蓝色所示的标准体重计算得来的。 依此类推，我们可以算出小鼠、豚鼠等其它动物剂量与人的比值。 小鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.0026/20g＝X mg/kg×70kg×0.0026/0.02 kg＝9.1 X mg/kg. 豚鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.031/400g＝X mg/kg×70kg×0.031/0.4kg ＝5.42 X mg/kg. 兔的剂量＝X mg/kg×70kg×0.07/1.5kg ＝3.27 X mg/kg.
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
K2MG-E《专业技术人员绩效管理与业务能力提升》练习与答案 一．经口给药法 (一)灌胃法 此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的·种常用给药法。 1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。 2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。 (二)口服法 口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。 二、注射给药法 (一)皮下注射 皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，
右手持注射器，使针头水平刺入皮下。推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。 (二)肌肉注射 肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。 (三)腹腔注射 给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。免、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，使其腹部朝上，实验者即可进行操作。注射位置为：家兔下腹部近腹白线左右两侧1cm处，犬脐后腹白线两侧边1—2cm处进行腹腔注射。 (四)静脉注射 1、大鼠和小鼠：常采用尾静脉注射。注射时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内，尾部用45—50℃的温水浸润几分钟或用75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化。以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入，注入药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。 2、豚鼠：可采用前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉注射或耳缘静脉注射。
实验动物的麻醉
八、实验动物的麻醉 在一些动物实验，特别是手术等实验，为减少动物的挣扎和保持其安静，并便于操作，常对动物采用必要的麻醉。由于动物种属间的差异等情况，所采用的麻醉方法和选用的麻醉剂亦有不同。 (一)常用的麻醉剂 动物实验中常用的麻醉剂分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。 1．挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。乙醚吸入麻醉适用于各种动物，其麻醉量和致死量差距大，所发安全度亦大，动物麻醉深度容易掌握，而且麻后苏醒较快。其缺点是对局部刺激作用大，可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多，再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动，并且容易引起窒息，故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看，以防麻醉过深而出现上情况。 2．非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多，包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。这些麻醉剂使用方便，一次给药可维持较长的麻醉时间，麻醉过程较平衡，动物无明显挣扎现象。但缺点是苏醒较慢。 3．中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂，但由于其作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想，故在使用过程中不能得到普及，因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。 （二）动物的麻醉方法 1．全身麻醉 （1）吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻药。本法最适于大、小鼠的短期操作性实验的麻醉，当然也可用于较大的动物只是要求有麻醉口罩或较大的玻璃箱罢了。由于乙醚燃点很低，遇火极易燃烧，所以在使用时，一定要远离炎源。 （2）腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射麻醉，操作简便，是实验室最常采用的方法之一。腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠，较大的动物如兔、狗等则多用静脉给药进行麻醉。由于各麻醉剂的作用长短以及毒性的差别。所以在腹腔和静脉麻醉时，一定控制药物的浓度和注射量（见表11-6）。
教科版科学四年级下册《动物的卵》公开课教案附实验观察记录单
动物的卵 一、教学目标 科学概念： 1、认识到很多动物都要产卵，且卵有相似的基本构造。 2、知道卵在合适的条件下会发育成动物。 3、知道青蛙、鸡这样繁殖后代的方式叫做卵生，靠卵繁殖后代的动物叫卵生动物。 过程与方法： 1、让学生经历一次对动物的卵进行观察和探究的过程。 2、在观察的基础上能对研究的问题进行推测，并通过进一步的观察和查阅资料寻找证据。 情感态度价值观： 培养乐于探究动物繁殖奥秘的兴趣，感受自然界生命的多样性和延续行。 二、教学重点 1、认识到很多动物都要产卵，且卵有相似的基本构造。 2、知道青蛙、鸡这样繁殖后代的方式叫做卵生，靠卵繁殖后代的动物叫卵生动物。 三、教学难点：让学生经历一次对动物的卵进行观察和探究的过程。 四、教学准备： 1、电脑课件：各种各样动物的繁殖活动图片、各种动物的卵的图片、鸡蛋的知识及小鸡的孵化过程影片、青蛙卵的发育繁殖过程影片。 2、学生收集关于动物卵的知识的资料。 3、教师为每组准备鹅蛋、鸭蛋、乌鸡蛋、鹌鹑蛋各1枚，2枚生鸡蛋、半个熟鸡蛋，小盘子一个，放大镜一个. 五、教学过程： （一）观图激趣，质疑引入 师：春天到了，植物们忙着发芽生长，刚过夏天就开始孕育果实、种子，繁殖后代。动物们也不甘落后，同学们看！它们在做什么？（电脑课件：动物繁殖图片） 对了，这些小动物们都在为繁殖他们的后代而努力， 你知道动物用什么方式繁殖后代吗？（胎生、卵生） 哪些动物是用蛋（卵）生吗？（归类） 师：科学家把动物的蛋叫做卵。（科学家把我们平时说的‘蛋’叫做卵，学生怎么说你都可以接话题）今天我们就来研究动物的卵。 板书: 动物的卵 （二）观察探究、探索真相。 1、观察动物的卵： （1）出示脑课件：各种动物的卵的图片：一起来看看，卵是什么样的 师：你能说说它们有什么不同和相同的地方？ 学生：观察后汇报观察结果：1、都是圆形的；2、有的透明有的不透明；3、颜色不同……） 问：这些卵有哪些不同呢？（此句为环节转换） 你能猜到是什么原因造成卵的差别这么大呢？（动物种类不同）
实验动物用药剂量计算
[组图]人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法热荐★★★ 人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法 作者：佚名文章来源：医用实验动物学点击数：11030 更新时间：2008-8-13 15:25:07 1．人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。一般说来，动物的耐受性要比人大，也就是单位体重的用药理动物比人要大。人的各种药物的用量在很多书上可以查得，但动物用药量可查的书较少，而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。因此，必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算：人用药量为1，小白鼠、大白鼠为25-50，兔、豚鼠为15-20，狗、猫为5-10。 此外，可以采用人与动物的体表面积计算法来换算： （1）人体体表面积计算法计算我国人的体表面积，一般认为许文生氏公式（中国生理学杂志 12:327,1937）尚较适用，即： 体表面积（m2）=0.0061×身高（cm）+0.0128×体重(kg)-0.1529 例：某人身高168cm，体重55kg，试计算其体表面积。 解：0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2 （2）动物的体表面积计算法有许多种，在需要由体重推算体表面积时，一般认为Meeh-Rubner氏公式尚较适用，即： 式中的K为一常数，随动物种类而不同：小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家报导略有出入)。应当指出，这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值，不一定完全符合于每个动物的实测数值。
例：试计算体重1.50kg家兔的体表面积。 2．人及不同种类动物之间药物剂量的换算 （1）直接计算法即按： 例：某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为250mg/kg，试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。解：实验用大白鼠的体重一般在200g左右，其体表面积（A）为： 250mg/kg的剂量如改以mg/m2表示，即为： 实验用狗的体重一般在10kg左右，其体表面积（A）为：
实验动物的麻醉方法知识
实验动物的麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成 0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物 神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。并施行必要的人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法：大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续2-4小时，所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～3%生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重，腹腔注射40～45mg/kg体重，大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。但动物个体间差异颇大。用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。镇痛效果差，恢复时间长，尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。近来使用日趋减少。
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法标准化管理部编码-[99968T-6889628-J68568-1689N]
一．经口给药法 (一)灌胃法 此法给药剂量准确，是借灌胃器将直接灌到动物胃内的·种常用给药法。1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。 2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。 (二)口服法 口服给药是把混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。 二、注射给药法
(一)皮下注射 皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下。推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。 (二)肌肉注射 肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。(三)腹腔注射 给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。免、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，使其腹部朝上，者即可进行操作。注射位置为：家兔下腹部近腹白线左右两侧1cm处，犬脐后腹白线两侧边1—2cm处进行腹腔注射。(四)静脉注射
生物课堂观察记录表单
生物课堂观察记录表单 作业3-2:“国培”课堂观察记录表单 提交日期: ,,,？年,月10日学生物年七教材人教版课生物与环境组科级版本题成的生态系统观察视角二、怎么教观察者: 朱然俊网络班级台山市初中生物,班学员朱然俊 观察视点观察记录 主要是通过图片观察，获取信息，将日常知识片段整理，1.先学后教:能否通过预学～暴 形成生物学的系统知识露学习中的问题, 通过问题情境，完成了教学目标，使学生获得有关生态系2.以学定教:能否针对学生的问 统的概念，以及食物链和食物网的概念题有效教学, 课堂主要以启发式的提问展开教学，引领学生形成新概念 3.课堂提问:启发式提问的次数～ 无效提问的次数, 采用多媒体课件，教师的示范性的实验操作没有出现 4.示范操作:教师能否示范高水 平操作行为, 通过板书示范食物链的书写 生态系统的概念解析，训练题型多样 5.变式训练:能否分层设计变式 训练题, 没有出现分层的训练题 概念出现后，及时检测，测评学生概念是否当堂掌握。 6.当堂检测:能否当堂检测学习通过“动物园是否是一个生态系统,”这一问题，来检测学效果～及时反馈回授, 生对生态系统的理解，进行反馈检测学生确实掌握了这一
概念 通过图片和实例分析形成食物链和食物网的概念， 7.平衡教学:能否将探究式教学 与有意义接受式教学相结合, 本课的推进可以看出，教师的专业素养很扎实，学生的学补充视点: 习注意力一直很强，一般常态课很难达到 课堂时间布局不太合理，分析概念的时间略多，课堂小结 没有进行。学生回答问题，思考的时间太短，学生回答时， 不停的被教师打断，不利于学生的问题暴露教学改进建议:
2008 实验动物常用镇静、麻醉、止痛药剂参考剂量表
實驗動物常用鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表 -2008 周京玉 使用說明: 1.以下內容為國內常用實驗動物之鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表。 2.本表內容僅供研究人員參考用, 實際劑量視實驗動物品種、品系、性別、年齡、生理狀況、 飼養條件、實驗需求而調整之。 3.由於多數藥劑屬管制藥品, 研究人員需先取得相關證照後使用。人員不得為了迴避管制藥品 相關法令而選擇使用非管制類藥劑, 除非該藥劑有科學研究之需求、並能提供充分的的實驗依據供動物實驗管理小組審核。 4.關於藥物的選擇、投藥方式等, 建議與獸醫師商討。如需進行外科手術, 動物必須進入手術 期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度（眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射）, 再進行手術。 5.CO2+ 10-50%O2 混合氣體其作用時間較短，且因兩種氣體密度不同，易造成O2在鋼瓶上 層、CO2在底部，導致氣體混合不均，需注意。 6.AVERTIN需經動物實驗管理委員會審查同意，確定有其科學研究之需求與依據、並且無其 他替代藥物可使用時，才得以使用本藥劑。如製作及保存得宜，於4℃避光冷藏可保存4個月，但是如果製作或儲藏時未適當地避光，將使動物致命，因此建議新鮮泡製使用，並於每次使用前確認其pH值＞5。本藥劑由於對腹腔刺激性強，不得重複注射於同一隻動物。 7.有些藥物如Pentobarbital、ketamine等，當靜脈注射藥劑不慎漏出血管外時，建議以生理 食鹽水稀釋5﹪lidocaine後注射至藥劑洩漏周圍組織，以減低動物的疼痛並降低組織潰爛或壞死的後遺症。 8.非類固醇類止痛藥（NSAID）對狗和貓的副作用大，建議使用前與獸醫師商討。 9.由於非人類靈長類（NHP）品種差異性大, 本劑量表以Rhesus monkey (M.Mulatta) 為對 象撰寫。 10.參考資料: 1)Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. Dennis F. Kohn.et.al., 1997.Academic Press. 2)Lab Animals. (2003) 37 (Suppl.1) BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW Joint Working Group on Refinement. 3)NIH Anesthesia and Analgesia Fornulary. 2005.
动物实验给药量
动物实验基础知识系列之一：剂量换算 关于剂量换算的问题 最近不少战友询问关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的问题。 这个问题对学习药理的战友来讲，可能是非常熟悉了。但对于非药理专业但又需做药理实验的战友来说，仍然是令人困扰的问题。 下面我们分以下几点来探讨这个问题。 第一、等效剂量系数折算法换算 第二、体表面积法换算 第三、系数折算法与体表面积法的比较 第四、系数折算法的相对误差 第五、小孩与成人的剂量换算 第六、少常用实验动物剂量间的换算 第七、不同给药途径间的剂量换算 第八、LD50与药效学剂量间的换算 下面我来简单说一下这个问题。 我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候，差不多是来源于两条途径： 一是查文献，参考别人使用的剂量。有时有现成的，可直接用。有
时没有我们所用动物的剂量，但有其它实验动物的。也有的是有临床用量的，但没有实验动物的。这样，我们就得进行换算。这是我们今天要谈的这种方法。 另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算，以期采用合适的剂量。一般参考数据是LD50。至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量，众说纷纭。这个我们再另题讨论。 下面我来说一说用第一种方法进行如何换算。 目前我们大多数人用的方法，是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。在其附录中有一个表，列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。这个表，几乎被药理专业的人们奉为经典，一直在科研中沿用。 表如下所示： 请注意最后一行，这个就是我们通常用到的。把人的临床剂量转换为实验动物的剂量。
试着换算一个。 如：人的临床剂量为X mg/kg , 换算成大鼠的剂量： 大鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.018/200g＝X mg/kg×70kg×0.018/0.2kg＝6.3 X mg/kg. 这也就是说，按单位体重的剂量来算，大鼠的等效剂量相当于人的6.3倍。 在这里，我们要看到每种动物的体重（包括人），在上表中以蓝色显示的。还要注意到折算系数，也就是表中以红色所示的。将人的剂量转换成哪种动物的，就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数，将剂量乘以折算系数，再乘上人的体重与那种动物体重的比值。注意体重的单位要化成一致。这个折算系数是以上表中蓝色所示的标准体重计算得来的。 依此类推，我们可以算出小鼠、豚鼠等其它动物剂量与人的比值。小鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.0026/20g＝X mg/kg×70kg×0.0026/0.02kg＝9.1X mg/kg. 豚鼠的剂量＝X mg/kg×70kg×0.031/400g＝X mg/kg×70kg×0.031/0.4kg＝5.42 X mg/kg. 兔的剂量＝X mg/kg×70kg×0.07/1.5kg ＝3.27 X mg/kg. 猫的剂量＝X mg/kg×70kg×0.078/2.0kg＝2.73 X mg/kg. 猴的剂量＝X mg/kg×70kg×0.06/4.0kg＝1.05 X mg/kg. 狗的剂量＝X mg/kg×70kg×0.32/12kg ＝1.87 X mg/kg.
初学者应该懂的麻醉方法
生理学实验动物的麻醉方法 [ 2006-12-26 10:06:00 | By: mch40911 ] （一）使用挥发性麻醉药 1．乙醚、吗啡合并麻醉方法乙醚麻醉的优点：深度易于掌握，比较安全，麻醉后恢复比较快。缺点：需要专人管理，麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激性，需在麻醉前给一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉）。通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸吗啡或硫酸吗啡（每公斤体重5-10毫克）及阿托品（每公斤体重0.1 mg）2．氯仿、乙醚合并麻醉方法氯仿作吸入麻醉药，其麻醉作用比乙醚大，诱导期及兴奋期都极短，吸入气体中含1-2%容量的氯仿即能使动物麻醉，达到外科麻醉期容易，但也易转入延髓麻醉期而危及生命。其麻醉剂量及致死量较为接近，使用时应加以注意。一般与乙醚混合成1：1或1：2比例进行麻醉。麻醉方法基本同乙醚。（二）使用非挥发性麻醉药 1．苯巴比妥钠：该药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量下对动物呼吸、血压和其他功能无多大影响。通常在实验前0.5-1h用药。使用剂量和方法为狗、猫腹腔注射80-100mg/kg，静脉注射70-120mg/kg；家兔腹腔注射15 0-200mg/kg。2．戊巴比妥钠：此药麻醉时间不很长，一次给药有效时间可延续3-5小时，所以十分适合一般实验要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用。用时配成1-3%生理盐水溶液，配好的药液的常温下放置1 -2个月不失药效。静脉或腹腔注射后很快进入麻醉期。使用剂量为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg，腹腔注射40-45mg/kg，皮下注射40-50mg/kg。大小鼠静脉或腹腔注射35-50mg/kg. 3．氨基甲酸乙酯：此药是比较温和的
动植物观察记录
蒜生长的观察记录 2014年10月20日 今天妈妈在菜市场买了一塑料袋大蒜。我想：这么多，反正好长时间才能吃完，为什么不拿一瓣大蒜去做发芽实验呢？于是，我拿了挑了一瓣大小中等、健康的大蒜，放在平地碗中，杯子里适当加了一些清水，放在餐厅的桌子上，开始观察。 2014年10月26日 下午放学后，回家的第一件事就是观察：大蒜有没有什么变化？只是发现泡大蒜的清水变得浑浊了，有点泛黄泛黄的，还有些刺鼻的大蒜味。 清水变浑浊这个问题我觉得很奇怪，便上网查资料，资料上讲：清水之所以那么浑浊，是因为大蒜在清水里泡了一整天，清水把大蒜的味道和颜色吸收了，大蒜的外皮和底部有些物质溶进水中，所以清水才会那么浑浊不清。并且不需要换新水，这种浑浊的水的营养价值很高，这样的话，蒜苗才能更快的成长。 大蒜在水中贪婪地吸收着水分，像一个花苞一样，总觉得比原来胖了一些。 2014年11月1日
早晨起来，路过餐厅时，眼前的景象不禁令我大吃一惊：大蒜终于发芽了。我盼星星盼月亮终于盼到了这一天！小芽从大蒜的尖上冒出来，一两个绿中透黄。 但是，我发大蒜下没有长根！一般的植物都是先长根后发芽，而大蒜为什么这么“另类”呢？原来，大蒜芽很长的时候，根还是很短，这时的营养靠块茎自身胚芽供给。 啊！大蒜多么“与众不同”，神奇啊！ 2014年11月6日 不经意之间发现小蒜苗长得真快呀！呀！眨眼工夫，就窜了那么高，用尺子量了一下最高的4厘米，蒜苗尖微微泛着黄色，这时突然发现，大蒜下冒出了根！大蒜根为弦线状须根，黄白色、无根毛，根长0.5-1厘米不等，这些根就像柔滑的丝带，装饰着成长的蒜苗显得大蒜可爱又生动。 我很奇怪，为什么大蒜生长得这么快？原来，大蒜每年6月收获，在炎热的夏季进行休眠，到了潮湿而温暖的气候，就会从休眠中醒来,发芽生长，开始新一轮的生长周期。这是蒜在适应环境过程中形成的生长习性。 2014年11月11日 一早起床，我看见大蒜最长的有14厘米了，而且有一两个蒜苗长出了两三个叶子了。