动物生理学实验指导

绪言

动物生理学是一门实验性学科。因此学习动物生理学必须通过做一定的实验，才能更好地理解和掌握生理学的基本理论知识和知识。是生理学教学中的一个重要组成部分。一．实验课的目的

生理学实验是以活的动物或人体为对象和材料进行实验，以此来了解和获得生理学知识的科学方法。通过实验可以验证、巩固和加深课堂中生理学基本理论和知识。同时，可通过生理实验，初步掌握生理学实验的基本技能和基本操作。培养学生的科学思维方法和严肃的科学实验态度。通过实验训练，可提高学生对各种生理现象的观察分析能力，以及解决问题的能力。同时还可以培养学生的独立思考能力。

二．实验课的要求

实验前，必须详细阅读实验指导，了解实验目的、原理和基本操作步骤。并结合其基本理论，做到充分理解，心中有数。并能预测实验的正确结果和可能出现的问题。

实验过程中，实验器材力求安放整齐，布局合理，便于操作。同时要保持桌面清洁。随时清除实验中的污物。公用仪器、药品等不得随意挪动。要爱护仪器。节省实验动物和药品。实验中还应注意实验分工交换，人人动手，使每个学生都有学习各种操作的机会。

实验时要认真、仔细、耐心地观察实验中出现的现象，并如实记录。同时应对各种变化的原因进行分析和处理。另外仪器发生故障应及时报告。不得自行拆动。实验用品损坏也应及时报告和登记。

实验后，将所用物品及器材进行整理和清洗。实验用过的动物处死后，放在指定处。最后要认真写出实验报告，及时上交。

三．实验结果的处理

实验过程所得的结果都要分析和整理。凡是属于测量性质的结果，如高低、长短、快慢、轻重、多少等，均应以正确的单位和数值定量。凡有曲线记录的实验应尽量用曲线记录实验结果，并在曲线上标明各个变化。如刺激标记，时间标记等。有些结果为了比较和分析之便，可用表格或绘图表示。制表时要全面而又简单明确。绘图时应标出各坐标的意义。非连续变化可用柱形图表示。

例如：对几个（组）实验对象，分别进行同样系列的实验观察所得结果，最宜制成表格。通常表格要有一“标题”即表格名称。用以说明表格的内容。表左端为“主栏”，填写实验对象或代号，右端为“宾栏”填写观察项目和结果。表格要有“顶线”和“底线”，即最上面和最下面的横线。表的左右两端不必划线。表内需注释说明时，用“*”等注角，在表外附注。

若对变量分布、对比、构成、变异、动态等的结果，可用平面几何图来表达。这种表现

生动确切，一目了然。常用有条图，圆面图，自然线图和点图等。条图和圆面图只能表达没有连续性变化的数据。线图则可显示连续变化的趋势和相关规律。

四．实验报告的写作要求

每一次实验后，每人均要写出每一次实验内容的实验报告，要求统一格式的实验报告本填写。报告要在实验后定时完成。以便下次实验时由教师总结和讨论其中的问题。

实验报告的格式：

1．实验号和题目：标出实验序号和实验的名称。同时填写实验时间。

2．实验目的：简单扼要写出实验目的。

2．实验原理：简单扼要写出设计该实验的理论依据。

3．实验材料和设备：简单描述实验所用的动物、仪器、设备等。

4．实验方法与步骤：简单叙述实验所用方法和实验步骤。必要时，可用实验装置图来表示。

5．实验结果：是实验中最重要的内容，主要是整理实验中的记录结果。若是描记曲线，需找出能客观而概括反映实验结果的部分，加以拼接整理后，打印、粘贴在实验报告中的适当位置，并加以标注。

6．讨论和结论：以实验结果为依据，分析和讨论其生理学意义。若实验结果与预期结果不同，则应分析造成这种结果的可能原因。若实验结果正确，则要简明总结这一实验所能验证的概念或理论，作为实验结论。未能充分证实的结果，不能列入结论中，讨论和结论都是有根据的，不能随意推测，应严肃对待。

五．实验动物规则

1．不得随意在动物体上实验，更不得随意杀死动物。

2．对动物实验时，尽量使动物不感到疼痛，应适当地给以麻醉，并注意细心操作。

3．实验结束后，除特殊要求外，必须尽量无痛地处死动物。

4．对待动物，无论是实验还是抓取，都要使动物的不适减少到最低限度。

六．实验室守则

1．遵守学习纪律，按时到达实验室。有事须请假，并在以后补做。

2．实验室内保持安静，认真实验，不得进行任何与实验无关的谈话或活动。

3．各组的仪器和用品由本组使用，不得随意调换，如遇损坏或丢失，应及时报告。

4．节约实验器材和用品，包括实验动物。要爱护公共财物，爱护实验动物。

5．保持实验室整洁，随时清除污物。不必要的物品不得带入实验室。实验结束后。各组将自己使用的器材、用品清洗干净，仪器收拾妥当，经清点数量后放回原处。经教师允许方可离开实验室。

6．按组依次值日。

实验1 生物信号采集处理系统的原理及使用方法

【实验目的】

1.了解《生物信号采集系统》的基本原理，熟练掌握系统的操作方法。

2.认识实验仪器的刺激系统、引导换能系统、信号调节放大系统、显示记录系统以及

生命维持系统，熟悉其中各种设备的结构、功能及使用方法。

【实验原理】

在动物生理学实验中，各种现象均需要进行记录，以便观察、测量和分析。传统的显示记录设备为记纹鼓、二（四）道生理记录仪和示波器等仪器。目前，计算机生物信号采集系统以其完备的功能和强大的后处理能力，在动物生理实验中取代传统记录设备得到了广泛的应用。

生物信号采集处理系统是应用大规模集成电路、计算机硬件和软件技术开发的一种集生物信号的放大、采集、显示、处理、存储和分析的电机一体化仪器。具有刺激器、放大器、示波器、记录仪和分析处理等多种仪器的组合功能。广泛应用于生理学、药理学和病理生理学等方面的教学与科研实验。

目前我国的计算机生物信号采集处理系统多达十余种，其发展程度取决于PC机技术水平，现阶段多以采用Windows为操作系统为主界面、并以USB技术为硬件安置方式的四通道生物信号采集系统为主。

计算机生物信号采集处理系统由硬件和软件两大部分组成。硬件主要完成对各种生物电信号（如心电、肌电、脑电）与非电生物信号（如血压、张力、呼吸）的采集。并对采集到的信号进行调理、放大，进而对信号进行模／数（A/D）转换，使之进入计算机。软件主要用来对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及存盘、打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话（图1.1-1）。

图1.1-1 计算机生物信号采集处理系统的基本组成和工作原理

【材料与设备】计算机；LabTutor生物信号采集系统；指脉传感器；同学

【方法和步骤】

1．打开计算机，进入“LabTutor实验”，打开“LabTutor介绍”，按系统程序提示步

骤，了解、熟悉仪器设备及操作方法。并通过手指脉

搏实验，加深了解。

2. 连接计算机、PowerLab、指脉传感器及实验对

象(图1.1)。

3. 调整仪器，观察、记录指脉波形曲线。

【实验结果】

图1.1 手指脉搏实验装置连接打印指脉波形图，记录手指脉搏，详细的描述

PowerLab实际记录到的数据资料，以及在LabTutor显示的内容。

【思考题】

实验小组成员的测量结果是否一致？

实验2 感觉生理实验

【实验目的】

1.学习视力测定的方法和原理。

2.学习视野计的使用方法和视野的检查方法。

3.学习盲点的测定方法，证实盲点的存在。

4.了解色盲检查原理和方法。

5.了解声音的空气传导和骨传导途径，比较两种途径的特点。

6.通过破坏迷路，了解迷路在维持姿势平衡中的作用。

【实验原理】

1.视力又称视敏度，是指眼分辨物体细微结构的能力。以能分辨空间二点间最小距离为衡量标准。临床规定，当视角为1分时，能辨别出这两点，表示视力正常，视力表就是根据视角的原理制成的。常用的国际标准视力表就是以离表5m处，第10行字每一笔划两边发出的光线在眼球恰好形成1分视角。此时的视力就规定为1.0。这二点间距离约1.5mm。

2.视野就是单眼固定注视前方一点时所能看到的空间范围。通过视野计可测出视野。正常人单眼视野鼻侧和上侧较窄小，而颞侧和下侧较宽阔。在同一光亮条件下，白色视野最大，其次为黄、兰，再次为红色，绿色最小。所测视野可在视野图纸上绘成视野图。

3. 视网膜上能感光的成分只有视锥细胞和视杆细胞两种。在视网膜后部有一视神经的集中穿出部位，称视神经乳头。此处没有视锥和视杆细胞。因此外来光线成像在此处时，不能引起视觉，故称此点为生理盲点。根据物体成像规律，通过测定盲点投射区的位置和范围，可计算出盲点所在视网膜上的位置和范围。

4. 视觉三原色学说认为：视网膜上存在着分别对红、绿、蓝色光特别敏感的三种视锥细胞。如果缺乏某种视锥细胞或其对相应的色光敏感性下降，就会使辨别颜色的能力缺失或下降。这就称为色盲或色弱。色盲常见的有红色盲、绿色盲。全色盲很少见。色盲检查图就是根据不同颜色组成一定的图形、图案等，来鉴定色盲。色盲者不能辨认出某些图形或图案。

5. 声波经外耳、鼓膜和听小骨传至内耳，这是声音传导的主要途径，称为空气传导。声波也可经颅骨，耳蜗骨壁传入内耳，此途径称骨传导。骨传导的效果远较空气传导差。振

动音叉,先将其置于颅骨，然后再置于外耳道口处，就可区别出两种传导途径的特点。

6. 迷路包括前庭和半规管两个部分，它在维持肌紧张方面起着重要的作用。若将迷路破坏，则身体位置的改变将不能引起动物对肌紧张的反射性调节，而使姿势失去平衡。

实验2.1 视力测定

【实验器材】 视力表，遮眼板，指示棒，米尺。

【方法和步骤】

1．在光线充足的地方，使受试者距离视力表5m 远处时，视力表第10行字与眼同高。

2．用遮眼板遮住一眼，于5m 处分别检测单眼视力，受试者以能辨出主试者所指字母缺口方向为准。检测从上到下，直到辨不出字母缺口方向。记录能分辨行的视力。

【实验结果】

确定实验者的视力。

【思考题】

视力表的原理是什么？

实验2.2 视野的测定

【实验器材】 视野计，各色视标，视野图纸。

【方法和步骤】

1．视野计构造

视野计（图2.2－１）是安在支架上的一个半圆弧形金属板，它可绕水平轴作360度转,

图2.2－1 视野计 图2.2－2 左眼视野图

旋转的角度可从分度盘读出。圆弧外面有刻度，表示由该点射向视网膜周边的光线视轴所夹的角度。视野界限就以此角度表示。圆弧内面中央装有一固定的小圆镜。对面支架上有一托颌架，和一个眼眶托。托颌架可上下移动。

2．视野的测定

①受试者面对视野计而坐。将下颌放于托颌架上。眼眶下缘靠在眼眶托上，调整托架高度，使眼与弧架的中心点在同一水平。遮住一眼，另一眼凝视弧架中心的小镜。

②主试者从周边向中央缓缓移动紧贴弧架的白色标，直到受试者刚能看到为止。记下此时视标所在弧架上的度数。退回视标重复测试一次，得出一致结果后，将结果标在视野图中相应的经纬度上。同法再测出对侧的度数。

③将弧架依次转动45 o角，测定出不同经纬度上的度数，并记录到视野图相应位置。最后将得到的8个点连接成一曲线图。便得到了白色视野图。

④用同法测出该眼的红、绿色视野。

⑤用同法测另一眼白、红、绿色视野。

【实验结果】

粘贴实验者的视野图。

【思考题】

正常人对不同色标的视野范围不同，为什么？

实验2.3 盲点的测定

【实验器材】带“十”字白纸，黑色视标，铅笔，米尺，遮眼板。

【方法和步骤】

1．将带“十”字白纸贴在光线明亮均匀的墙上，受试者立于纸前，使右眼与“十”字相平行，距离为50cm。遮住左眼，右眼注视“十”字中点向被测眼的颞侧缓缓移动视标，当刚看不见视标时，在白纸上记下视标的位置。然后继续向颞侧移动视标，直至又看见为止。记录其位置。由所记二点之边线中点，沿各个方向向外缓移视标，找出并记录各方向则能看

动物生理学实验指导

生理学实验指导 广州中医药大学生理教研室

目录 编写说明 (2) 总论 (3) 一、绪言 (3) 二、常用仪器介绍 (4) 三、生理学实验常用溶液及配制方法 (17) 四、动物实验的基本操作技术 (19) 实验一反射弧分析 (30) 刺激与反应，兴奋与兴奋性 实验二 (30) 实验三 (31) 神经干动作电位的引导 实验四红细胞渗透脆性试验 (34) 实验五红细胞沉降率（血沉）试验 (34) 实验六影响血液凝固的因素 (35) 实验七 ABO血型鉴定 (36) 实验八蛙心兴奋传导系统分析 (37) 期前收缩和代偿间歇 实验九 (38) 实验十蛙心灌流 (41) 实验十一人体心电图、心音图、动脉搏动图同步描记 (43) 实验十二兔减压神经放电 (44) 实验十三蛙肠系膜微循环的观察 (45) 实验十四动脉血压的神经和体液调节 (46) 实验十五呼吸运动的调节 (47) (49) 实验十六、胸内负压的测定 实验十七兔膈肌放电 (49) 实验十八胃肠运动的观察 (51) 实验十九尿生成的影响因素 (52) 实验二十损毁小鼠小脑的观察 (54) 实验二十一小白鼠脊髓半横切的观察 (55) 实验二十二人体脑电观察 (55) 实验二十三自行设计实验 (56)

编写说明 生理学是一门实验性科学。生理实验课是生理学教学中的重要部分。生理 学实验教学除验证课堂讲授的理论内容外，着重培养学生的实验技能，并通过实 验培养学生科学的思维方法和科学的工作态度，提高学生的科学素质。 《生理学实验指导》是根据普通高等教育中医药类规划教材《生理学教学 大纲》而编写的。编写中既注意突出中医特色，也注意遵循科学性、系统性、逻 辑性及内容的先进性等基本原则。实验内容既有人体功能的检测，也有各种动物 实验。实验项目包括了细胞、分子水平；器官、系统水平；整体水平。既有微观 分析，又有宏观综合。实验技术既保留传统的研究方法，更加强电生理技术，尤 其是注重计算机在实验中的应用。为了提高学生综合分析的能力，《指导》还增 加了学生自行设计实验项目。 《指导》的实验项目共23项，教师应根据七年制和五年制本科生理教学计 划，尽量安排实施。 由于时间仓促和水平有限，《指导》若有不足之处，亟盼教师们和同学们提 出宝贵意见。 广州中医药大学生理教研室 2001.12

动物生理学实验设计

动物生理学实验设计 班级：09级生物技术本一班 小组成员：李水琴姚燕兵罗泉清龙伟雄 实验设计内容 一、课题名称：静脉注射和口服等量生理盐水对小白鼠尿量的影响 二、实验目的：通过对小白鼠注射和口服等量生理盐水，了解尿液生 成过程，进一步熟悉掌握肾小管的功能。 三、基本原理： 生理盐水对尿液的影响：加大了血液中水的含量,冲淡了血 液,增加人体的排尿量.肾脏为了维持体内水的平衡,通过生 成尿液来实现.尿的生成来源于血浆,通过肾小球的滤过,肾 小管的吸收,肾小管的徘汇和分泌这三个过程来完成.在这 三个过程中,除了生成尿液外,肾脏同时根据体内水分的多 少对尿量进行调节,而保持水的平衡,维持人的正常生活.

四、材料与用品：小白鼠数只、生理盐水200ml、25%氨基甲酸乙酯 溶液、纱布、棉线、注射器、试管、试管夹等五、注意事项： 1．实验前给小白鼠多喂些食物，或用导尿管向小白鼠胃中灌入40—50ml 清水，以增加其基础尿流量； 2．实验中需多次进行耳缘静脉注射，注射时应从耳缘静脉远端开始，逐步移近耳根。手术的创口不宜过大，防止动物的体温下 降，影响实验； 3．输尿管手术的难度较大，应注意防止导管被血凝块堵塞，或被扭曲而阻断尿液的流通。 六、方法与步骤： 1、小白鼠抓取、称重、麻醉：抓取3只体型相近、健康指数大致 一致的小白鼠称重，然后用25%氨基甲酸乙酯溶液（按1g/kg 或4ml/kg用量），从耳缘静脉注入，小白鼠麻醉成功后，使其仰卧并用绳固定在兔台上备用，并标号、记录数据； 2、分别对上述上三只小白鼠进行注射、口服30ml等量生理盐水 和空白对照处理；

3、在胱底部找到并分离两侧输尿管，在输尿管靠近膀胱处用细线 结扎，另穿一细线打松结备用，略等片刻，待输尿管充盈后，提起结扎细线，在管壁上用眼科剪剪一小斜口，从斜口向肾脏方向插入口径适当的预先充满生理盐水的输尿管插管，结扎固定，用试管收集尿液。 4、三小时后，每隔半小时，观察小白鼠尿量变化（滴/分），做 好记录，并绘制成曲线图观察。

动物生理学实验思考题

实验二：坐骨神经标本的制作 1、毁坏脑颅----单毁随。保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。 2、脑颅+脊髓----双毁随。排除中枢神经对腓肠肌的m 影响。 3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。 维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。 5、注意事项：用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。如果神经干结扎不好， 通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液，最好先泡一会. 实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细胞不产生任何影响。 最适刺激强度 有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从而形成局部电位 因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强 活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小的刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。因此，对于多细胞的组织来说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。坐骨神经和腓肠肌是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。以后随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度也相应增大，这种刺激强度超过阈值的刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉的收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度的刺激称为最大刺激。最大刺激引起的肌肉收缩称最大收缩（所有的肌纤维都收缩）。由此可见，在一定范围内，骨骼肌收缩的大小取决于刺激的强度，这是刺激与组织反应之间的一个普遍规律。 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 3两个刺激：刺激间隔小于单收缩的时程而大于不应期，则出现两个收缩反应的重叠，称为收缩的总和。 4串刺激：当后一收缩发生在前一收缩的收缩期，各自的收缩则完全融合肌肉出现持续的收缩状态，称为完全强直收缩。

动物生理学实验报告思考题答案

竭诚为您提供优质文档/双击可除动物生理学实验报告思考题答案 篇一：动物生理学实验报告 实验日期：年月日室温：大气压： 实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍 一、实验目的 掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。 二、实验原理 生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。 三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼

科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等2、生理仪器：生物信 息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等 四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途 五、实验结果及数据处理 六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地？生理学实验有什么 具体的要求和规则？ 答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么？ 答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。

人体解剖及动物生理学实验报告神经干复合动作电位

人体解剖及动物生理学实验报告 神经干复合动作电位 【实验题目】 神经复合动作电位 1、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）阈值和最大幅度的测定 2、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）传导速度的测定 3、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）不应期的测定 【实验目的】 确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的 1、临界值和最大值 2、传导速度 3、不应期（包括绝对不应期和相对不应期） 【实验原理】 神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号。多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经经外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。刺激强度越大，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP的幅度也就越大。与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。 阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。 动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。

神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。不应期的产生依赖于细胞膜上特定离子通道的特点，如钠、钾离子通道。 【实验方法】 1、制作蟾蜍坐骨神经干标本 （1）双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。注意保持神经湿润。 （2）将神经搭于标本盒内，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2，外周端接触记录电极R1-R5，之间接触接地电极。 （3）刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道A、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定 （1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。 （2）检查装置链接正确，确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。采用刺激强度1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为单刺激。选择“同步触发”，按下“开始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。 （3）降低刺激强度，确定CAP的阈电位。记录刺激阈值及CAP幅度（波峰与波谷之间的差值）。 （4）以0.05V或更小的间隔，逐渐增大刺激强度，观察CAP幅度的变化，同时，记录刺激电位及对应的CAP幅度，直到CAP达到稳定，即最大值（神经标本在正常生理活性时，1V 以内的刺激强度即可引起最大的CAP）。

动物生理学实验报告

专业班级：学号：姓名：同组人： 实验日期：年月日室温：大气压： 实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍 一、实验目的 掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。 二、实验原理 生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。 三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等 2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等 3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等 四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途 五、实验结果及数据处理 六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地生理学实验有什么具体的要求和规则 答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么 答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。 3、举例5种常用手术器械的名称、持握方法和用途。 4、举例3种生理学实验常用仪器设备的性能和主要用途。

人体及动物生理学实验报告二

实验题目：骨骼肌生理姓名：王超杰 合作者: 唐用 组别：第一组 日期：5月8日 室温：24.5℃

【实验目的】： 确定肌肉收缩的 A、阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系 B、三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期 C、刺激频率与收缩之间的关系 【实验方法】： 1、双毁髓法处死蟾蜍，剥离神经干保留腓肠肌和膝关节。结扎，保持湿润。将标本放入标 本盒内，连接张力换能器。在试验过程中注意标本休息，连接RM6240生物信号采集系统。 2、选择菜单栏刺激强度对骨骼肌的收缩的影响，更改相应数据，测量肌肉收缩的阈水平、 最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系 1)连接通道一，检查神经的活性，测试仪器是否正常工作 2)开始记录，可适当调零，开始刺激 3)当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录 4)应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩和其对应的最小刺激强度，记录下收 缩幅度，刺激和放大器的参数设置，绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线3、测量肌肉收缩的三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期 1)展开上一实验最大刺激强度对应的收缩，测量三个时期 2)复至少三次 3)计算平均值和标准差 4、测量刺激频率与收缩之间的关系 1)打开信号采集软件，关闭通道3 和4，保留通道1 和2，分别对应肌肉收缩信号和肌 肉动作电位信号。示波状态下修改参数设置：采集频率20kHz；通道1：通道模式为 张力，扫描速度400ms/div，灵敏度7.5g (可根据收缩幅度合理选择)，放大器时间常数 设为直流，滤波频率100Hz；通道2：通道模式为生物电，扫描速度400ms/div，灵敏 度2mv，放大器时间常数0.001s，滤波频率1kHz。刺激模式为串单单刺激，波宽1ms， 延时20ms，选择一定的刺激脉冲个数(10-60 个，避免让肌肉受到过多的刺激)和刺激 强度（阈上刺激强度即可，不必达到最大刺逐渐减小刺激间隔，直到第二个CAP开始 减小，进入相对不应期 2)开始记录，开始刺激 3)观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位 与收缩的关系，测量并记录不同频率引起肌肉收缩的幅度 【实验结果与讨论】：见附图一：Physiology Lab #4 Skeletal Muscle Physiology 实验A：测量肌肉收缩的阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系

动物生理学实验

?麻醉注意事项 ?1、麻醉前应正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。 ?2、密切观察动物麻醉状态及反应，以便准确判断麻醉深度。 ?3、如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量不宜超过原总用药量的五分之一。 ?4、麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意保温。 ?5、在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。 ?6、实验中注意液体的输入量及排出量，维持体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。 实验一血液的组成 [实验原理] 血液是由液态的血浆和悬浮于血浆中的血细胞组 成。血细胞占全血的体积比称为红细胞 压积，又叫红细胞比容。 要求与思考题 1.血浆与血清有哪些区别？ 血浆与血清的区别是不含纤维蛋白原，某些凝血因子以及血小板释放因子 实验二血红蛋白的测定 [实验原理] 由于血红蛋白的颜色，常随结合的氧量多少而改变，因而不利于比 色，但血红蛋白与稀盐酸作用后，能使亚铁血红素变成不易变色的棕色

的高铁血红蛋白，用水稀释后可与标准比色板比色，从而测得血红蛋白含量。 [注意事项] 1.血液和盐酸作用的时间不可少于10分钟，否则，血红蛋白 不能充分转变成高铁血红蛋白，使结果偏低。 2.加蒸馏水时，开始可以稍多加几滴，随后则不能过快，以 防稀释过头。 3.比色时最好在自然光下，而不应在黄色光下进行，以免影 响结果。 4.整个实验过程中均应注意避免起泡 实验三红细胞的脆性试验 [实验原理] 如环境渗透压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂， 释放血红蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液具有一 定的抵抗力，红细胞膜对低渗溶液的抵抗力越大，红细胞在 低渗溶液中越不容易发生溶血，即红细胞渗透脆性越小。 凡上层溶液开始微呈淡红色，而极大部分红细胞下沉，称开始溶血或最小抗力（红细胞的最小抵抗力）。 凡液体呈均匀红色，管底无红细胞下沉，则称完全溶血或最大抗力（红细胞的最大抵抗力） [注意事项]

动物生理学实验思考题

实验二:坐骨神经标本得制作 1、毁坏脑颅－－-—单毁随.保持静止,麻醉蟾蜍，减少痛苦. 2、脑颅+脊髓-—－－双毁随。排除中枢神经对腓肠肌得m 影响。 3、完整得标本:坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液得作用:它包括钾离子,钙离子、钠离子,氯离子,碳酸氢根与磷酸二氢根等等.维 持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定,保持内环境稳态，相当于机体中得组织液。 5、注意事项:用锌铜弓刺激时神经干要悬空,切勿接触其她物体。如果神经干结扎不好,通 电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。剥过皮得保本不可与皮肤，赃物接触 6、如何保持机能正常:1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液,最好先泡一会、 实验三四：骨骼肌单收缩与收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需得最小刺激强度,作为衡量组织兴奋性高低得指标. 强度小于阈值得刺激，称为阈下刺激;阈下刺激不能引起兴奋或动作电位,但并非对组织细胞不产生任何影响。? 最适刺激强度 有了阈刺激也就就是刺激导致得电位变化已经达到了阈电位，这样就会有动作电位得产生，从而形成局部电位 因为骨骼肌收缩就是许多神经纤维共同作用得结果，当刺激在一定范围内增大时,兴奋得神经纤维增多,多支配得骨骼肌肌纤维也会随之增多,收缩增强 活得神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小得刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示,阈值就是指在刺激作用时间与强度—时间变化率固定不变得条件下,能引起组织细胞兴奋所需得最小刺激强度，达到这种强度得刺激称为阈刺激。单一细胞得兴奋性就是恒定得，但就是不同细胞得兴奋性并不相同。因此,对于多细胞得组织来说,在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无"得关系.坐骨神经与腓肠肌就是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时,才能引起肌肉发生最微弱得收缩，这时引起得肌肉收缩称阈收缩(只有兴奋性高得肌纤维收缩).以后随着刺激强度得增加，肌肉收缩幅度也相应增大，这种刺激强度超过阈值得刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉得收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生最大收缩反应得最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度得刺激称为最大刺激.最大刺激引起得肌肉收缩称最大收缩（所有得肌纤维都收缩)。由此可见，在一定范围内,骨骼肌收缩得大小取决于刺激得强度,这就是刺激与组织反应之间得一个普遍规律. 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 ３两个刺激：刺激间隔小于单收缩得时程而大于不应期,则出现两个收缩反应得重叠，称为收缩得总与。 4串刺激:当后一收缩发生在前一收缩得收缩期，各自得收缩则完全融合肌肉出现持续得收缩状态，称为完全强直收缩。 5注意事项：为保持机能稳定，制作好标本后要在任氏液中浸泡１0分钟,试验过程中要不断滴加任氏液为避免肌肉过度疲劳，刺激要有间隔时间。

动物生理学实验指导(生院)

动物生理学实验指导 张素华编 动物科技学院生理实验室

第一部分实验总论 第一节绪论 一、实验目标与要求 通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强对事物进行观察、比较、分析和综合的能力。为此要求： 1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。 2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果，并联系讲授内容进行思考。 3.实验后须及时整理实验记录，分析实验结果，按照规定格式书写实验报告，按时交负责教师评阅。 二、实验报告书写要求 因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。书写要整洁，文字应简练、通顺。首先注明班级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨论。并要求： 1.实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实验报告上。 2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。如果出现非预期的结果时，应分析其可能的原因。实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的理论概要。

三、生理实验室规则 1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。 2.遵守学习纪律，保持实验室安静；严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。 3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。 4.各组应用的实验器材、物品，在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换；如遇机件不灵或损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。 5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。损坏物品应赔偿。 6.保持实验室整洁。公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。 7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。各小组轮流搞好实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开。

生理实验报告

人体解剖及动物生理学实验报告 实验名称神经干复合动作电位 姓名 学号 系别 组别 同组姓名 实验室温度 实验日期2015年4月23日

一、实验题目 蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP） A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定 B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定 C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定 二、实验目的 确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的 （1）临界值和最大值 （2）传导速度 （3）不应期（相对不应期、绝对不应期） 三、实验方法 蟾蜍坐骨神经标本的制作 1.双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经 干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。注意保持神经湿润。 2.将神经搭于标本盒内，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2， 外周端接触记录电极R1-R2，之间接触接地电极。 3.刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系 统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道1. A.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定 （1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上 的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。 （2）确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。采用较大的刺激强度，1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为但刺激。选择“同步触发”，按下“开 始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。

动物生理学实验指导书

生理学实验指导

目录 实验一神经生理实验 1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备 1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验 2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性 3.1 蛙心起搏点 3.2 心肌特性 实验四循环生理实验之蛙心灌流 4.1 蛙心灌流 实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素 5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素 实验六消化生理实验 7.1 胃肠运动的直接观察 7.2 小肠吸收和渗透压的关系 7.3 离体肠段运动描记 实验七泌尿生理实验 8.1 尿的分泌及其影响与调节 实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验（综合计划 07级）实验九肌肉生理实验 9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 9.2 肌肉的单收缩 9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和

实验一神经生理实验 年月日星期 1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备 目的和原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，它的离体组织所需要的生活条件又比较简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理，如：神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。 实验对象：蟾蜍或蛙 实验器材和药品：中式剪子，眼科剪，眼科镊，蛙板，玻璃分针（玻璃勾），探针，锌铜弓，培养皿，大头针，棉花，线，任氏液，纱布等。 实验方法： 1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙，用自来水冲洗干净。保定好，用探针从枕骨大孔垂直刺入，然后向前刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织，再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。此时蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表示脑脊髓破坏完全。 2、剪除躯干上部及内脏，提起蟾蜍的背部，在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱（见图），用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持中式剪刀，沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏（注意勿损伤坐骨神经），仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。

动物生理学实验讲义

动物生理学实验讲义 陈海燕 樊晓丽编 10-407 丽水学院生态学院 二○一七年二月

目录 第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制 1 1 手术器械及活体解剖技术 1 2 生理学常用实验仪器及用品 15 3 常用生理溶液的配制 22 第二部分 必做实验内容 第一章 人体的运动系统 实验1 人体全身骨骼和骨骼肌系统（基础性） 23 第二章 细胞的兴奋性与生物电现象 实验2 牛蛙坐骨神经腓肠肌标本制备（基础性） 25 第三章 神经系统与肌肉系统 实验3 不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响（基础性） 28 第四章 感觉器官 实验4 瞳孔反射和视野盲点测定 31 第五章血液与循环系统 实验5血型鉴定；血涂片的制作（基础性）34 实验6 蛙心搏动观察、心室期前收缩和代偿间歇实验（基础性） 36 第五章 呼吸系统 实验7 家兔呼吸运动的调节（综合性）39 第六章 循环系统 实验8 家兔动脉血压的神经-体液调节（综合性）42 附录 主要参考文献 46

第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制 第一节 手术器械及活体解剖技术 生理学实验是以活的动物或人体作为观察对象和实验材料的。在动物实验中，活体解剖技术对生理学实验的成败起着至关重要的作用。在实验过程中，学生应着重于学习、掌握些操作技术，以提高自己的动手能力。 生理学实验方法虽然多种多样，但一般可分为离体实验法和在体实验法两类。离体实验法是将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物体上取出，置于接近正常生理条件的人工环境中，以观察、研究其生理机能。如离体心脏的灌流、离体肠段的活动以及用坐骨神经-腓肠肌标本等实验。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。急性在体实验法是动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下，用手术的方法暴露某一器官，观察、研究其机能及变化规律。如在体心脏活动的观察、肾脏泌尿机能的研究等。只能在一定时间内进行观察研究，而且实验后动物不能存活。慢性实验法是在特定条件下，以完整而清醒的动物为对象的实验方法，可以在较长的时间内，连续地反复观察动物的某一生理机能。此法常需要先在动物体上施行某种无菌外科手术，如胃肠道瘘管术，或在机体的一定部位埋藏电极、或切除某一器官等，须待动物恢复健康后方可进行实验。这种实验花费时间较长，动物需要特殊的护理，在基础生理学实验中较少安排。 一、手术器械及其用途 （一）常用手术器械 根据生理学实验的需要，常用手术器械包括手术刀、手术剪、金冠剪、手术镊、眼科剪、蛙类毁髓针、玻璃分针等。 1．手术刀 主要用于切开皮肤或脏器。常用手术刀为刀柄和刀片组合式，也有刀柄和刀片相连的。根据手术的部位与性质，可以选用大小、形状不同的手术刀片。常用的执刀方法有 4 种（1）执弓式这是一种常用的执刀方法，动作范围广而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。 （2）执笔式此法用力轻柔而操作精巧，用于切割短小而精确的切口，如解剖神经、血管，作腹膜小切口等。 （3）握持式常用于切割范围较广、用力较大的切口，如切开较长的皮肤、截肢等。 （4）反挑式此法多使用刀口向弯曲面的手术刀片，常用于向上挑开组织，以免损伤

动物生理学实验思考题

实验二：坐骨神经标本的制作 1、毁坏脑颅 ----单毁随。保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。 2、脑颅+脊髓----双毁随。排除中枢神经对腓肠肌的m 影响。 3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。 维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。 5、注意事项：@用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。@如果神经干结扎不好， 通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。@剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触 6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液，最好先泡一会. 实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。 强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细 胞不产生任何影响。 最适刺激强度 有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从 而形成局部电位 因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经 纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强 活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小的 刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定 不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。 单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。因此，对于多细胞的组织来 说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。坐骨神经和腓肠肌是多细 胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌 肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收 缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。以后随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度也相 应增大，这种刺激强度超过阈值的刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉 出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉的收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生 最大收缩反应的最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度的刺激称为最大刺激。最大刺激 引起的肌肉收缩称最大收缩（所有的肌纤维都收缩）。由此可见，在一定范围内，骨骼肌收 缩的大小取决于刺激的强度，这是刺激与组织反应之间的一个普遍规律。 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 3两个刺激：刺激间隔小于单收缩的时程而大于不应期，则出现两个收缩反应的重叠，称为 收缩的总和。 4串刺激：当后一收缩发生在前一收缩的收缩期，各自的收缩则完全融合肌肉出现持续的收 缩状态，称为完全强直收缩。

动物生理学实验

实验一生理学常用器械的识别与使用 作者:陈锐来源:本站时间:2008-3-14 实验一动物生理学常用器械识别及使用 目的：识别常用器械，并掌握常用器械的正确使用方法。 实验内容：1. 动物生理学实验概述 2. 动物生理学实验常用仪器、设备 3. 动物生理实验常用手术器械 作业： 1.手术刀的执刀方法有哪几种？ 2.绘出持钳和松钳法的示意图？ 第1 章动物生理学实验概述 《生理学》是一门实验性学科，《生理学》的发展和它的每一项新理论的建立都借助于大量的动物实验，并获得了大量实验的支持。因此学习《动物生理学》必须亲自做一做实验，才能更好地理解和掌握它的基本理论。 1.1 动物生理学实验课的教学内容和目的 《动物生理学》是高等农业院校动物生产类（含畜牧、水产、名特经济动物养殖）、动物医学、生物和生物技术专业本科必修的专业基础课，它将在理论上和实验技能上为后续课程的学习打下必要的基础。 为了适应现代教育、教学思想，融传授知识和能力培养为一体，《动物生理学实验》课除了讲授经典的生理学实验外，还特别注重对学生的获取知识的能力；观察、分析问题的能力；科学研究的实事求是作风、严肃认真的工作态度和团结协作精神的训练和培养。因此《动物生理学实验》课拟使学生通过对经典生理学实验的学习，掌握《动物生理学实验》的仪器、设备的基本操作；熟悉和掌握《动物生理学实验》的基本技术；掌握观察、纪录实验结果和收集、整理、实验数据的方法。通过多个实验项目同时观察或综合性实验，进一步强化、规范实验操作、掌握实验方法；重点培养学生分析、综合和逻辑推理的能力。通过探索（研究）性实验设计的训练，使学生掌握实验设计的基本原理、原则；掌握撰写科学研究论文的基本方法。 1.2 动物生理学实验及其方法 动物生理学实验是利用一定的仪器设备和方法，人为地控制某些因素再现动物机体的某些生命活动过程，或将一些感官难以观察到的内在的、迅速而微小变化着的生命活动展现、记录下来，便于人们观察、分析和研究。 因为《动物生理学》是研究动物机体生命活动（机能）及其规律的一门科学，因此动物生理学实验的对象一般都是机能正常的“活体” ，而且这种“活体”的特征在动物机体的整体、器官、及细胞等不同水平上有不同的表现形式。 动物生理学实验的方法一般根据动物的组织器官是在整体条件下进行实验，还是将其解剖取下,置于人工环境条件下进行实验，可分为在体实验方法和离体实验方法。 1.3 动物生理学实验课的要求 1．3．1 实验前 （1）仔细阅读《动物生理学实验》中的有关内容，了解本次实验的目的、要求，充分理解本次实验的原理、熟悉实验项目、操作步骤和程序，了解实验的注意事项。 （2）结合实验阅读相关理论知识，必要时还需要查阅一定的资料，做到充分理解实验原理与方法，力求提高实验课的效果。

生理实验报告蟾蜍骨骼肌生理

人体解剖及动物生理学实验报告 实验名称蟾蜍骨骼肌生理 姓名 学号 系别 组别 同组姓名 实验室温度 实验日期2015年5月7日

一、实验题目 蟾蜍骨骼肌生理 A蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系 B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定） C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系 二、实验目的 确定蟾蜍骨骼肌收缩的 （1）阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线 （2）收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期 （3）刺激频度与肌肉收缩的关系 三、实验方法 1、蟾蜍坐骨神经-骨骼肌标本的制作及电路连接 1)双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神 经及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。神经端结扎后，剪去无 关分支后游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎 线留长。保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。注意保持神经肌肉湿润。 2)用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内， 保证神经、肌肉与电极充分接触。神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接 触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。 3)肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。注意连线尽量短，以减小阻 力。在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的 棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。 4)换能器插头接RM6240通道1。刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极 S1和S2，插头接刺激输出插口。如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所 搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道2。 2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定 A蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系

人体解剖及动物生理学实验报告蟾蜍骨骼肌生理

人体解剖及动物生理学实验报告蟾蜍骨骼肌生理

【实验题目】 蟾蜍骨骼肌生理 A蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系 B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定） C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系 【实验目的】 确定蟾蜍骨骼肌收缩的 （1）阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线 （2）收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期 （3）刺激频度与肌肉收缩的关系 【实验方法】 1、蟾蜍坐骨神经-骨骼肌标本的制作及电路连接 （1）双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神经及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。神经端结扎后，剪去无关分支后游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。 保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。注意保持神经肌肉湿润。 （2）用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。 （3）肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。注意连线尽量短，以减小阻力。在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。（4）换能器插头接RM6240通道1。刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接刺激输出插口。如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道2。

2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定 A蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系 （1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”，出现软件自动设置界面，各项参数已设置好，但需要将“采集频率”修改成“20kHz”，扫描速度仍然是“1.0s/div”。界面的采集通道默认为RM6240B面板上的通道1.刺激模式自动设置为强度递增刺激，起始强度为0.02V（可根据标本特性灵活选择）（2）检查装置连接正确后，点击“开始记录”，屏幕下出现扫描线，软件处于记录状态。（主义不要点击“开始示波”，在示波状态下，文件不能保存。）扫描线如偏离零点较远，需要调零：将换能器与标本盒的棉线放松，旋转换能器的调零钮，使基线恢复零点。 （3）将换能器连接的棉线拉直，如果基线偏移零位（肌肉被牵拉的程度会影响基线位置），不必去管（不必重新调零，测量时，将偏移量减去即可）。点击“开始刺激”，刺激器按一定时间间隔自动输出单个刺激方波，后一次比前一次强度递增。将“刺激标注”激活，显示出每次发放的刺激的强度。屏幕上应出现一系列由刺激触发的肌肉收缩曲线，同时可以观察到标本盒中肌肉的收缩。注意文件的保存（不要移动标本盒与换能器的位置，即肌肉被牵拉的程度保持固定。此要求也适用于ⅡB和ⅡC。）（4）当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录。 （5）应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩。并确定最大收缩所对应的最小刺激强度（即最适刺激强度）。记录下收缩幅度，刺激和放大器的参数设置。（注意在测量时。需将波形适当展开，确保测量数据更准确。） （6）绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线。 B单个肌肉收缩分析（确定潜伏期、缩短期、舒张期） （1）将ⅡA实验得到的最大刺激强度对应的收缩曲线展开，应用测量工具确定收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。 （2）至少测量三次。计算几次重复测量得到的三个时期的平均值和标准差。 C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系 （1）打开信号采集软件，关闭通道3和4，保留通道1和2，分别对应肌肉收缩信

动物生理学实验报告示范(总结报告范文模板)-呼吸运动调节

动物生理学实验报告示范——家兔呼吸运动的调节 [实验目的] 1、学习动物呼吸运动调节的实验方法。 2、观察各种因素对呼吸运动的影响，并分析其作用机理。 [实验对象] 家兔，体重2-3kg，公母不限。 [实验材料] BL-410生物机能实验系统、呼吸换能器、刺激电极；动物生理实验常用手术器械，兔手术台，气管插管，注射器，50cm橡皮管；生理盐水，2％戊巴比妥钠溶液等。 [实验步骤] 一、动物准备 1、动物麻醉与保定：以1ml/kg体重的2％戊巴比妥钠溶液耳缘静脉缓注射麻醉动物，取背位仰卧将实验动物保定于兔手术台，并剪去颈部的毛。 2、颈部手术与气管插管：以常规方法分别切开颈部皮肤，分离双侧颈迷走神经、穿线备用；作气管插管。

二、连接并调试BL-410生物机能实验系统以橡皮管将呼吸换能器与实验动物的气管插管相连，根据BL-410生物机能实验系统说明书，进入系统的“呼吸运动调节”实验项目，实时记录呼吸曲线。 [观察项目] 1．记录正常呼吸曲线，作为对照，认清曲线与呼吸运动的关系。 2．无效腔增加对呼吸运动的影响：在气管插管的一侧管连接一50cm的橡胶管，观察呼吸运动的影响。 3、吸入气中CO2浓度增加对呼吸运动的影响：观察高浓度CO2对呼吸运动的变化。 4．低氧对呼吸运动的影响：堵塞气管一侧管5s，观察呼吸运动的变化。 5．迷走神经在呼吸运动中的作用：首先以中等强度电刺激一侧完整的迷走神经，观察呼吸运动的变化；再分别剪断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；最后，分别电刺激一侧迷走神经的中枢端与外周端，观察呼吸运动的变化。 [结果及结果分析] 正常呼吸运动及各种因素作用后呼吸运动变化的曲线如下图。